Vegetal Animal Gráfico 1. Porcentaje de semillas que presentan las distintas especies de hongos antes de la siembra según lote de semilla. Separación

Transcripción

1 Vegetal Animal Efecto del tratamiento fungicida de la semilla de arroz sobre el establecimiento del cultivo en campo Introducción La semilla de arroz normalmente presenta parásitos fúngicos de diferente género y especie, cuya acción se manifiesta (en los casos menos graves) en la disminución de la capacidad germinativa de la semilla (Tiranelli, 1989). El desarrollo de enfermedades en la semilla está influenciado por las condiciones climáticas y el vigor que presentan las semillas (Ou, 1987). Junto con el rastrojo y las malas hierbas, la semilla de arroz es una de las fuentes de inóculo primario de enfermedades (Almacellas, 2008). Existen distintas especies de hongos causantes de enfermedades en la semilla pero su patogenia no se ha estudiado en detalle (Ou, 1987). Por lo tanto, la bibliografía referente al estudio en laboratorio de los patógenos transmitidos por la semilla de arroz es escasa (Lanzaco, 1993). El tratamiento de la semilla pretende asumir distintas acciones de profilaxis: en primer lugar, inactiva los órganos de reproducción de los parásitos micóticos que se encuentran en las glumillas; en segundo lugar, la semilla tratada hace de portadora del producto desinfectante que deberá actuar sobre los hongos que se encuentran en el suelo del cultivo. La tercera función se refiere al control, durante las fases iniciales, de la germinación de las esporas y del desarrollo de las algas que pueden afectar al desarrollo de la planta embrionaria (Tiranelli, 1989). Pero si la causa de la baja germinación se debe a lesiones producidas durante la recolección, secado y proceso de transporte, el fungicida en lugar de aumentar las facultades de germinación las reducirá, al penetrar en el interior de la semilla y rebajar o impedir la actividad enzimática (Tiranelli, 1989). En las medidas de control de las enfermedades en el delta del Ebro, se recomienda utilizar semilla libre de enfermedades y no utilizarla si en la parcela del año anterior se detectó su presencia (Galimany, 2006). Por otra parte, en el delta del Ebro la producción de semilla no certificada está permitida y aproximadamente el 30 % de los agricultores siguen esta práctica. En la campaña 2010 la ADV (Agrupación de Defensa Vegetal) del arroz encargó al IRTA (Institut de Recerca i Tecnologia Agroalimentàries) realizar un ensayo con los siguientes objetivos: valorar la presencia de hongos en la semilla de arroz no certificada y estudiar si la presencia de hongos en la semilla de arroz podía afectar al desarrollo de las plantas en la fase de nascencia. A continuación se presentan los datos referentes a este ensayo. Foto 1. Semilla de arroz tratada con Vitavax Flow Material y métodos El ensayo se ubicó en una parcela del IRTA en Amposta durante la campaña 2010 y el diseño fue en bloques al azar con 3 repeticiones. Las parcelas elementales tuvieron una superfície de 35 m 2 (7x5 m). Los tratamientos estudiados fueron seis, y consistieron en sembrar 3 lotes de semilla no certificada (producida por 3 agricultores de la zona) de la variedad Gleva

2 Vegetal Animal Gráfico 1. Porcentaje de semillas que presentan las distintas especies de hongos antes de la siembra según lote de semilla. Separación de medias según test de Duncan. Niveles de significación < 5 % en el análisis ANOVA establecen diferencias significativas entre tratamientos. Gráfico 2. Porcentaje de semillas que presentan las distintas especies de hongos antes de la siembra según tratamiento fungicida de la semilla. Separación de medias según test de Duncan. Niveles de significación < 5 % en el análisis ANOVA establecen diferencias significativas entre tratamientos. Tabla 1. Longitud de la parte aérea y de la parte radicular de la planta de arroz a los 14 dds. Densidad de plantas (plantas/m 2 ) al estadio fenológico de 4 hojas verdaderas (estadio 14 según codificación BBCH de los estadios fenológicos de desarrollo del arroz). Separación de medias según test de Duncan. Niveles de significación < 5 % en el análisis ANOVA establecen diferencias significativas entre tratamientos. n.s.: nivel de significación (%).

3 Vegetal Animal Gráficos 3-8: Evolución de la presencia del hongo en la semilla y en la planta desde antes de la siembra, a los 5 dds, a los 14 dds y a los 24 dds. dds: días después de la siembra. Separación de medias según test de Duncan. Niveles de significación <5% en el anàlisis ANOVA establecen diferencias significativas entre tratamientos.

4 Vegetal (G1, G2 y G3) diferenciando la semilla que se había tratado con el fungicida Vitavax Flow (Carboxina 20 % + Tiram 20 % p/v) (T) de la semilla que no había recibido ningún tratamiento fungicida (NT). El tratamiento de la semilla se realizó 9 días antes de la siembra, mediante pulverización manual a dosis de 3,5 cc/kg de semilla. La siembra también se realizó de forma manual a dosis de 500 semillas viables/ha (200 kg/ha) y la semilla permaneció 36 horas en remojo. El manejo del cultivo fue el mismo que siguen la mayor parte de arroceros de la zona. su identificación. En los casos que se requería, se realizaron siembras en medio PDA para confirmar la identificación de los hongos. A los 14 dds se muestreó una supefície de 0,08 m 2 por parcela elemental, recogiendo todas las plantas que quedaban en su interior y se midió la longitud de la parte aérea y de la parte radicular de cada una de las plantas muestreadas. Finalmente, para la determinación de la densidad de planta, en el estadio fenológico de 4 hojas verdaderas, código 14 según codificación BBCH de los estadios fenológicos de desarrollo del arroz (Lancashire et al., 1991) se contaron las plantas que quedaban dentro de un cuadro de 0,25 m 2. En total se contaron 6 cuadros por parcela elemental. El análisis estadístico se ha realizado utilizando el programa SAS 9.2, aplicando el procedimiento GLM y la separación de medias mediante el test de Duncan. Resultados y discusión Foto 2. Siembra manual de las parcelas. Para la determinación de la presencia de hongos en las semillas antes de la siembra se recogieron 5 muestras por tratamiento de 25 semillas cada una y se incubaron en medio de Rosa de Bengala. Durante 7-10 días se determinaron los hongos presentes. Su identificación se llevó a cabo mediante la morfología de la colonia, observación en el microscopio y siembra en cultivo PDA universal para su confirmación. Desde los 5 días después de la siembra (dds) hasta los 24 dds se muestreó semanalmente una superfície de 0,08 m 2 por parcela elemental, recogiendo todas las plantas que quedaban en su interior y, para la identificación de hongos en estas plantas, se incubaron en cámara húmeda (100 % HR a 20-25ºC) durante 3 días para favorecer la manifestación de estructuras fúngicas para En general, las especies de hongos que se han presentado con mayor frecuencia (10-50%) en las semillas han sido Alternaria sp., Cladosporium sp., Fusarium sp. y Aspergillus sp. En cambio Bipolaris sp., Nigrospora sp. y Epicoccum sp. se han presentado en menor frecuencia ( 0-10%) y Pyricularia sp. no se ha detectado en la semilla (gráfico 1). Entre los tres lotes de semilla estudiados, se han presentado diferencias significativas en cuanto a la incidencia de determinados patógenos en la semilla antes de la siembra (gráfico 1) y también entre la semilla tratada y la no tratada (gráfico 2), siendo ésta última la que presentó niveles más elevados de patógenos. Estas diferencias en la presencia de patógenos en la semilla no se han mantenido cuando se ha realizado la siembra, ya que en la mayoría de los casos, a partir de los 5 días después de la siembra (dds), la incidencia de patógenos en las semillas tratadas y no tratadas ha sido la misma porque el nivel de hongos en la semilla no tratada ha disminuido (gráficos 3-8). Este resultado se atribuye a que las condiciones de inundación han afectado al desarrollo de los hongos de las semillas en campo. Es por este motivo que el desarrollo de las plantas en la fase de nascencia no se ha visto afectado por la presencia de hongos en la semilla ya que los tres lotes de semillas estudiados (G1, G2 y G3), que presentaban

5 Vegetal diferentes niveles de patógenos en la semilla antes de la siembra, no han mostrado diferencias estadísticamente significativas en la longitud de la parte aérea y radicular a los 14 días después de la siembra (tabla 1). La semilla tratada (T) y la no tratada (NT) han mostrado el mismo desarrollo de la parte aérea de las plantas, pero el desarrollo de la parte radicular ha sido diferente (tabla 1). En este sentido, la semilla tratada ha presentado un desarrollo menor de la parte radicular debido al efecto fitotóxico del producto fungicida, ya constatado en trabajos anteriores. Según Rebull, 2009 el efecto fitotóxico del tratamiento de las semillas de arroz con Vitavax Flow es menor a medida que aumenta el período entre el tratamiento y la siembra. El establecimiento de planta en el delta del Ebro se sitúa alrededor del 30 % (Català, 2008). En el presente estudio el establecimiento de planta ha sido elevado (del %) ya que de 500 semillas/m 2 sembradas se han establecido aproximadamente 200 plantas/m 2 (tabla 1). Aún así se ha perdido un 60 % de las semillas sembradas por causas que desconocemos. Por una parte, no hubo problemas por quironómidos (datos no presentados), y por otra parte, aunque antes de la siembra la presencia de hongos en la semilla tratada (T) era más baja que en la semilla no tratada (NT) (gráfico 2), el establecimiento de planta ha sido el mismo en los dos casos (tabla 1). Es por este motivo que se descarta la presencia de hongos en la semilla como causante de la pérdida de semilla en campo. Por último, los tres lotes estudiados (G1, G2 y G3) también han presentado la misma densidad de plantas en campo (tabla 1) aunque inicialmente los tres lotes de semilla también presentaban niveles de hongos diferentes (gráfico 1). Conclusiones La presencia de determinadas especies de hongos en la semilla de arroz no certificada varía en función del agricultor que la produce. El tratamiento de la semilla con el fungicida Vitavax Flow reduce la presencia de hongos en las semillas aunque produce cierto efecto fitotóxico en el desarrollo de las raíces. Las condiciones de inundación del campo de arroz disminuyen la presencia de hongos en las semillas igualando el nivel de patógenos entre las semillas tratadas y las no tratadas a partir de los 5 días después de la siembra. Es por este motivo que la presencia de hongos en las semillas antes de la siembra no ha afectado en el establecimiento de las plantas durante la fase de nacencia. Por lo tanto, según los niveles de hongos detectados en las semillas no certificadas del ensayo, el tratamiento fungicida de la semilla de arroz no certificada no se ve justificado. Aún así, cabe recordar que en presencia de elevados niveles de hongos en la semilla de arroz, se recomienda el tratamiento fungicida de ésta (Almacellas, 2008). Foto 3. Plantas recogidas del campo. Bibliografía CATALÀ M.M., TOMÀS N., MARTÍNEZ M., PLA E Estudio de los factores que afectan la germinación y nacencia en los arrozales del delta del Ebro. Resumen de dos campañas: Agrícola Vergel núm. 318, GALIMANY, G; MATAMOROS, E.; ALMACELLAS, J.; MARÍN, J.P; CATALÀ, M.M.; TOMÀS, A.; SOLANELLES, F.; GRÀCIA, F. J.; CAMP, F. Y LLORACH, T Estratègies per al control de les principals malalties de l arròs. Dossier Tècnic, Nous avenços en el cultiu de l arròs. DAR-Generalitat de Catalunya, 12 : LANCASHIRE, P.D., BLEIHOLDER, H., LANGELÜDDECKE, P., STAUSS, R., VAN DER BOOM, T., WEBER, E. I WITZENBERGER, A An uniform decimal code for growth stages of crops and weeds. Ann. Appl. Biol. 119,

6 Vegetal LANZACO, O Estudi de l estat sanitari de llavors certificades d arròs (Oryza sativa) i la seva influència en la capacitat germinativa. DARP, secció de llavors i planters. Lleida. OU, A.H Rice diseases. CAB International, Slough, UK. 380 p. REBULL, J., SALTOR, J Utilidad de la carboxina en el control de enfermedades fúngicas en la semilla de arroz. Phytoma España. Núm. 212, ALMACELLAS, J., CARRASCO, M., GALIMANY, G., IBEAS, M., MARÍN, J.P., MATAMOROS, E., TOMÀS, A Situació actual de les malalties en el delta del Ebre. Departament d Agricultura, Alimentació i Acció Rural de Catalunya. MARÍN, J.P., ALMACELLAS, J., CATALÀ, M.M., TOMÀS, N., MARTÍNEZ, M., PLA, E Estudio de la eficacia del tratamiento fungicida de la semilla de arroz. Institut de Recerca i Tecnologia Agroalimentàries (IRTA). TIRANELLI, A El arroz. Ediciones Mundi-Prensa.2ª ed., 1989