TEMA 20. Infecciones del tracto respiratorio inferior

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Sofia Eugenia Molina Sánchez
hace 8 años
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1 TEMA 20 Infecciones del tracto respiratorio inferior

2 Tema 20. Infecciones del tracto respiratorio inferior 1. Características del tracto respiratorio inferior 2. Enfermedades del tracto respiratorio inferior 2.1. Bronquitis Bronquitis aguda Bronquitis crónica 2.2. Neumonía Vías de infección Epidemiología y agentes etiológicos 2.3. Infecciones pleurales 3. Toma de muestras 3.1. Esputo expectorado 3.2. Aspirado gástrico 3.3. Aspirado traqueal 3.4. Aspirado transtraqueal 3.5. Broncoscopia 3.6. Toracocentesis 3.7. Biopsia a pulmón abierto 4. Examen directo de las muestras 5. Cultivo de las muestras

3 1. Características del tracto respiratorio inferior Bronquiolo Alveolo Nódulo linfático Lóbulo superior Lóbulo medio Lóbulo inferior Diafragma Tráquea Bronquios Lóbulo superior Lóbulo inferior Arteria Vena Bronquiolo Alveolos Red capilar TRI: tráquea, bronquios, bronquiolos, alveolos, pulmones, pleura Microbiota desaparece en laringe TRI estéril en personas sanas

4 1. Características del tracto respiratorio inferior Vértebra Bronquio Pulmón Pleura Cavidad pleural Corazón Pleura: membrana serosa que recubre ambos pulmones, mediastino, diafragma y parte interna de la caja torácica Pleura parietal (externa) y pleura visceral (interna) Cavidad pleural: espacio comprendido entre pleura parietal y pleura visceral

5 1. Características del tracto respiratorio inferior Tráquea Pleura visceral Pleura parietal Pulmón derecho Cavidad pleural derecha Mediastino Cavidad pleural izquierda Pulmón Piel Grasa Costilla Pleura visceral (cubre el pulmón) Cavidad pleural Pleura parietal (recubre la caja torácica) Músculo

6 2. Enfermedades del tracto respiratorio inferior Bronquitis, neumonía e infecciones pleurales 2.1. Bronquitis Bronquitis aguda Inflamación aguda del árbol traqueobronquial Síntomas: tos, fiebre y esputo (limpio o purulento si persiste enfermedad) Puede aparecer como consecuencia de infección del tracto respiratorio superior Causa: principalmente virus (parainfluenza, influenza, respiratorio sincitial, adenovirus, sarampión) algunas bacterias: Bordetella pertussis, B. parapertussis (lactantes y niños pequeños), Haemophilus influenzae, Mycoplasma pneumoniae

7 Bronquitis crónica Afecta a 10-25% adultos Síntomas: expectoración de esputo (casi todos los días, 3 meses consecutivos, más de 2 años seguidos) Difícil identificar causa (colonización crónica) 2.2. Neumonía Inflamación del tracto respiratorio inferior que compromete vías aéreas del pulmón y estructuras de sostén Síntomas: fiebre, escalofríos, dolor de pecho, tos

8 Vías de infección Colonización del tracto respiratorio superior o infección que se extiende al pulmón Aspiración de microorganismos (en contenidos orofaríngeos) Inhalación de gotas aerotransportadas Diseminación hematógena Epidemiología y agentes etiológicos Neumonías adquiridas en la comunidad Etiología depende de edad: > 80% causadas por virus en lactantes y niños < 10-20% causadas por virus en adultos

9 Neumonías adquiridas en la comunidad Niños (entre 2 meses y 5 años) previamente sanos Adultos jóvenes (< 30 años) Adultos Otras bacterias: Mycoplasma pneumoniae, Chlamydophila pneumoniae, H. influenzae, S. aureus, Legionella pneumophila, Klebsiella pneumoniae y otras enterobacterias, Pseudomonas, Acinetobacter, Branhamella catarrhalis Virus: influenza, adenovirus, citomegalovirus, parainfluenza, varicela, rubeola, respiratorio sincitial Hongos: Histoplasma capsulatum, Blastomyces dermatitidis, Paracoccidioides brasiliensis, Coccidioides immitis, Cryptococcus neoformans, Aspergillus fumigatus Neumonías por aspiración: los más frecuentes son los anaerobios orales Prevotella, Porphyromonas, Bacteroides y Fusobacterium, aunque también pueden estar implicados S. aureus, algunas enterobacterias como Klebsiella, Pseudomonas, Haemophilus, Legionella, Acinetobacter, B. catarrhalis y Chlamydophila pneumoniae

10 Neumonías nosocomiales Principal causa de muerte en infecciones nosocomiales (50% pacientes UCI) Causa secundaria a sepsis o contaminación a partir de equipos Agentes más frecuentes: Klebsiella, S. aureus, S. pneumoniae, P. aeruginosa, Legionella, algunos anaerobios, otras enterobacterias, virus influenza. En niños son frecuentes: virus respiratorio sincitial, adenovirus, influenza Infecciones crónicas Se manifiestan por fallos en inmunidad mediada por células capacidad de los microorganismos para evitar mecanismos de defensa Principales responsables: micobacterias (Mycobacterium tuberculosis) y Pseudomonas (pacientes con fibrosis quística) Tambien Actinomyces, Nocardia, hongos, parásitos y bacterias anaerobias

11 Pacientes inmunodeprimidos Alto riesgo de padecer neumonías: pacientes con neoplasias, receptores de transplantes o infectados por HIV Agentes más frecuentes: S. pneumoniae, H. influenzae, Pneumocystis carinii, citomegalovirus, Cryptococcus neoformans, Candida, Aspergillus, Mycobacterium tuberculosis, M. avium-intracellulare (los dos últimos especialmente en pacientes con sida) 2.3. Infecciones pleurales Resultado de infección pulmonar y posterior ingreso del agente a la cavidad pleural (generalmente a través de fístula) Frecuente producción de empiema (pus en cavidad pleural) Síntomas insidiosos (asociados tempranamente con infección primaria)

12 3. Toma de muestras 3.1. Esputo expectorado Son muestras poco apreciadas en el laboratorio (laboriosas de procesar, requieren mucho tiempo, de las más numerosas, poco apropiadas para su cultivo) Obtención: instrucción al paciente para que proporcione muestra tras expectoración profunda Utilizar siempre recipiente estéril Si no es posible obtener muestra, se puede inducir con aerosol aspiración durante 10 minutos (o hasta iniciar fuerte reflejo tusígeno) de aerosol (15% NaCl y 10% glicerina) las secreciones obtenidas tienen aspecto acuoso (semeja saliva), pero son aptas para el cultivo y deben ser aceptadas por el laboratorio apropiadas para el diagnóstico de enfermedades micobacterianas, micóticas y por Pneumocystis carinii

13 3.2. Aspirado gástrico Se aspira con sonda el contenido del estómago antes de que el paciente se levante (en niños gran parte de la microbiota tragada durante el sueño) para investigar microorganismos ácido-alcohol resistentes Muestra debe enviarse rápidamente al laboratorio 3.3. Aspirado traqueal Pacientes con traqueotomía Introducir catéter hasta árbol bronquial Succionar muestra con jeringa 3.4. Aspirado transtraqueal Necesaria la colaboración del paciente Introducir en tráquea pequeño catéter de plástico por medio de aguja y succionar

14 3.5. Broncoscopia Permite visualizar mucosa (fibra óptica) y obtener biopsia Muestras más adecuadas para estudios microbiológicos (sobre todo neumonías por aspiración)

15 3.5. Broncoscopia Al recibir la muestra (laboratorio): suspender contenido de cepillado bronquial en 1 ml de caldo agitar vigorosamente sembrar en medios de cultivo con asa calibrada (10 μl) 3.6. Toracocentesis Se obtiene con aguja y jeringa introducida a través de la piel del tórax (procedimiento muy invasivo)

16 3.6. Toracocentesis Muestra excelente que refleja con exactitud la etiología de la neumonía Utilizada sobre todo cuando existe empiema pleural 3.7. Biopsia a pulmón abierto Sólo en caso de neumonías difíciles de diagnosticar Procedimiento muy invasivo realizado exclusivamente por cirujanos

17 4. Examen directo de las muestras Observación de parásitos: preparaciones en fresco Visualización de hongos: KOH 10% en microscopio de contraste de fases, azul de lactofenol, calcoflúor bajo luz UV Bacterias y levaduras pueden ser reconocidas en tinción de Gram Uso más importante de la tinción de Gram: evaluación de la calidad del esputo expectorado (sistema de Murray y Washington, sistema de Bartlett) Excepción: neumonía por Legionella (esputo no sometido a evaluación por contener escaso número de células o ninguna)

18 Sistema de Murray y Washington Nº células epiteliales/campo (10X) Nº leucocitos/campo (10X) Grupo 1 > 25 < 10 Grupo 2 > Grupo 3 > 25 > 25 Grupo > 25 Grupo 5 < 10 > 25 Sistema de Bartlett Nº neutrófilos/campo (10X) Grado < > Presencia de moco + 1 Nº células epiteliales/campo (10X) > 25 2

19 4. Examen directo de las muestras Tinción AAR (tinción auramina-rodamina): micobacterias Anticuerpos fluorescentes: Legionella, Chlamydia trachomatis, Candida, virus (citomegalovirus, adenovirus, influenza, sincitial respiratorio) Sondas genéticas: Legionella, Mycobacterium, Mycoplasma, Chlamydia PCR: Mycobacterium tuberculosis

20 5. Cultivo de las muestras La mayoría de patógenos pueden aislarse con agar sangre de oveja al 5%, agar de MacConkey y agar chocolate Agar sangre Agar de MacConkey Agar chocolate Cultivo en anaerobiosis: apto sólo para muestras obtenidas por aspiración transtraqueal o cepillado bronquial (contaminación microbiota oral) Aislamiento de Legionella: agar BCYE Agar BCYE

21 5. Cultivo de las muestras Agar salino manitol Las muestras de pacientes con fibrosis quística deben sembrarse en: - Agar salino manitol (recuperar S. aureus) - Agar selectivo sangre de caballo-bacitracina (recuperar H. influenzae) Recuperación de hongos: sembrar la mayor cantidad de muestra posible en cada medio (0,5 ml) - Agar BHI con antibióticos Agar sangre de caballo con disco de bacitracina - Agar BHI de Sabouraud (SABHI) Aislamiento de virus: cultivos celulares Agar BHI Agar SABHI

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