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1 NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 1 de 12 ESTADO 1. VALIDACION JERARQUIA NOMBRE CARGO FECHA FIRMA ELABORO PATRICIA SABOGAL ENFERMERA VALIDO ALBERTO VALDERRAMA ENFEMERO VIGILANCIA E APROBO DIANA SOTO COORDINACION DE ENF 2. CONSIDERACIONES PRELIMINARES JUSTIFICACIÓN La invasión de microorganismos en la sangre conlleva un considerable aumento de la morbi-mortalidad, representando así mismo una de las más severas causas de infección. Los hemocultivos han llegado a considerarse un elemento importante para el diagnóstico de las bacteriemias Los hemocultivos se piden cuando existen razones para sospechar bacteriemia o septicemia. Aunque en muchas enfermedades infecciosas se produce una bacteriemia transitoria, la presencia de bacteriemia persistente continua o recurrente significa que se trata de una situación más grave que puede requerir tratamiento inmediato.

2 NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 2 de 12 ESTADO El pronto y seguro aislamiento e identificación de microorganismos presentes en un proceso de septicemia es una de las funciones más importantes del laboratorio de microbiología; sin embargo, es responsabilidad del profesional de enfermería que la toma de los hemocultivos se haga de una forma adecuada, evitando de esta manera la contaminación de los mismos y la aparición de falsos positivos OBJETIVO Describir el equipamiento necesario para la obtención de los hemocultivos, los cuidados y las recomendaciones especiales que se deben seguir en una técnica adecuada de recolección y proceso de transporte, para garantizar la viabilidad del espécimen. 3. MATERIALES Y EQUIPO Bata y campos estériles Gorro, mascarilla y gafas protectoras Guantes estériles Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y guantes estériles) Frascos de hemocultivos. Frascos para hemocultivos con rotulo especifico para hongos Jeringas estériles Torniquete Equipo de puntos o bisturí Tubos estériles Lamina de vidrio Escobillones estériles

3 NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 3 de 12 ESTADO 4.1. DEFINICIÓN El hemocultivo es un medio diagnóstico que se realiza para la detección e identificación de microorganismos en la sangre utilizando el examen directo y cultivo, y definir los patrones de susceptibilidad de los microorganismos por medio del antibiograma. 4.2 INDICACIONES La indicación clásica de obtener hemocultivos, es la sospecha de bacteriemia en pacientes con o sin foco aparente de infección. Los factores clásicos asociados a la presencia de bacteriemia verdadera, son la presencia de calofríos y fiebre mayor a 38.3 C, existencia de enfermedades subyacentes graves, cuadros de abdomen agudo, sepsis, meningitis, osteomielitis, artritis, neumonía bacteriana aguda no tratada y el antecedente de drogadicción intravenosa. También todas aquellas infecciones que producen bacteriemias continuas, como la endocarditis bacteriana y en general las infecciones endovasculares, en casos de fiebre de origen desconocido y en casos en que el paciente ya esta recibiendo antimicrobianos pero continua con marcadores de bacteriemia, aunque en estos casos la probabilidad de aislar agentes infecciosos en hemocultivos disminuye en forma muy significativa. La decisión de la realización de un hemocultivo la debe tomar el médico dependiendo de la pertinencia según cada caso e igualmente es decisión del médico el inicio de los antimicrobianos MUESTRA REQUERIDA Obtener 8 a 10 cc de sangre para cada frasco en pacientes adultos

4 NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 4 de 12 ESTADO. Para la detección de microorganismos en sangre en sospecha de bacteriemia se recomienda recolectar entre 20 y 40 ml de sangre (2 a 4 botellas de hemocultivos). En sospecha de endocarditis pueden ser suficientes 20 ml de sangre (2 botellas de hemocultivos) En sospecha de bacteriemia a mayor volumen recolectado, mayor la probabilidad de recuperación microbiológica. En pacientes pediátricos el volumen de los hemocultivos se ajusta de acuerdo a la edad: - Prematuros extremos menos de 0.5 ml - Neonatos hasta 1 ml - Lactantes y niños hasta 6 años 2 a 3 ml - Mayores de 6 años 5 a 10 ml El numero de botellas depende de la situación clínica en pacientes pediátricos: - En prematuros extremos 2 botellas - Sospecha de bacteriemia 2 botellas - Sospecha de endocarditis 4 a 5 botellas entre 6 y 24 horas 4.3. PRECAUCIONES DE BIOSEGURIDAD La manipulación inapropiada puede convertirse en una fuente de riesgo biológico para las personas que están en contracto o para el medio ambiente. Utilizar los elementos de protección personal necesarios para evitar exposición con riesgo biológico, de acuerdo con la fuente de la muestra.

5 NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 5 de 12 ESTADO Protección ocular: gafas o mascarilla con visera. Mascarilla. Guantes. Bata. Contenedores para especímenes, a prueba de fugas y de fácil sellamiento Cumplir con las recomendaciones de manejo de elementos cortopunzantes: No reenfundar agujas. Disponer y utilizar adecuadamente el contenedor para cortopunzantes. No transportar jeringas con agujas. Se recomienda transferir el aspirado a un tubo estéril. En caso de accidente con riesgo biológico, avisar inmediatamente según las recomendaciones del protocolo de accidente de trabajo con riesgo biológico institucional METODO DE RECOLECCION DE LA MUESTRA El encargado de tomar las muestras de hemocultivos es el profesional de enfermería y el procedimiento no debe ser delegado Antes del procedimiento explique al paciente claramente el objetivo del examen y el procedimiento que va seguir y solicite su autorización y su colaboración. Se debe colocar mascarilla al paciente o solicitarle que mientras se realice el procedimiento mantenga su cara del lado contrario al que se va a puncionar y se abstenga de hablar.

6 NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 6 de 12 ESTADO Se debe mantener técnica aséptica durante todo el procedimiento utilizando bata, gorro tapabocas y utilizando un par de guantes estériles para cada punción. Utilizar un campo estéril para evitar tener contracto con áreas circundantes que ofrezcan un riesgo de contaminación. En el momento de la recolección de la muestra no cambiar la aguja para envasar en el frasco de hemocultivos. Obtener cada muestra de diferentes sitios anatómicos con un intervalo de 10 a 15 minutos. Para realizar la desinfección puede utilizar guantes de manejo, pero para cada punción debe utilizar guantes estériles. Sangre obtenida a través de punción periférica Palpe y seleccione los sitios de punción para la toma teniendo en cuenta que sean venas de grueso calibre, preferiblemente la basílica y la cefálica o que garanticen la obtención del volumen necesario, si la condición del paciente lo permite. Realice lavado de manos quirúrgico. Limpie el área donde se va a puncionar para la extracción de la muestra haciendo un circulo de 3 a 5 cm de diámetro con clohexidina espuma, iniciando del centro a la periferia sin devolverse, luego haga dos aplicaciones de clohexidina solución en el área, en el mismo sentido anteriormente descrito y deje actuar durante dos minutos. Nunca retire el exceso de antiséptico antes de dos minutos. Como segunda opción se puede utilizar yodopovidona al 10%. No palpe la vena sin guantes estériles después de haber desinfectado el área. Coloque el torniquete 5 a 8 cm arriba del sitio donde se va a puncionar. Coloque el campo estéril Limpie con alcohol al 70% la tapa de caucho de la botella luego de quitar la tapa plástica (nunca con isodine).

7 NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 7 de 12 ESTADO Realice la punción con aguja y jeringa estéril o con los sistemas desechables y recolecte el volumen de sangre de acuerdo al tipo de paciente como se definió anteriormente. Mezcle suavemente los frascos utilizando la técnica de inversión. Rotule la botella con los datos completos (nombre, HC. No. de hemocultivo, fecha, hora y servicio, teniendo cuidado de no colocar el rotulo sobre el código de barras de la botella del medio de cultivo). Envié al laboratorio inmediatamente a temperatura ambiente. Los frascos de hemocultivos ya tomados no deben permanecer en el servicio más de 30 minutos. Sangre obtenida a través de catéter venoso central Suspenda las infusiones en el momento de obtener la muestra de sangre, si las condiciones clínicas del paciente lo permiten. Realice lavado de manos quirúrgico. Realice desinfección del trayecto y sitio de conexión de equipos de infusión al catéter con solución antiséptica (Clorhexidina); como segunda opción se puede utilizar yodopovidona al 10%. Utilice la vía proximal para la obtención de la muestra en catéteres multilúmenes. No se recomienda tomar muestras a través de catéteres arteriales, porque aumenta la posibilidad de contaminación. Limpie el tapón del frasco colector con alcohol al 70% antes de puncionar para envasar la muestra. Coloque el campo estéril Colóquese los guantes estériles Extraiga 10 cc de sangre para limpiar la vía y deséchelos Con otra jeringa obtenga 10 cc más de sangre y déjelos a un lado por un momento. Utilice otra jeringa para extraer 10 cc de sangre y enváselos en el frasco de hemocultivo.

8 SISTEMA DE CALIDAD CLASE DE COPIA NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 8 de 12 ESTADO Se debe aspirar lentamente para evitar la hemolisis de la muestra y/o el colapso del catéter o del vaso. La presencia de burbujas en la sangre durante la aspiración indica que se está aplicando demasiada presión. Retorne los 10 cc de sangre que había guardado temporalmente, previa verificación de ausencia de coágulos. En la botella se debe especificar que la muestra se tomo de catéter central. Pacientes con sospecha de infección de torrente sanguíneo relacionada con catéter venoso central En bacteriemia asociada a catéter en pacientes adultos y pediátricos se debe tomar una botella de hemocultivo de sangre periférica y una de sangre obtenida a través del catéter. Los frascos de los hemocultivos deben ser marcados diferenciando el tomado por catéter central y el tomado por punción periférica. Cultivo de punta de catéter central Los cultivos de punta de catéter se recomiendan cuando se tienen hemocultivos positivos y existe una alta sospecha de infección del torrente sanguíneo relacionada con el catéter. Técnica de recolección. Prepare la piel del área circundante del sitio de inserción del catéter. Utilice técnica aséptica durante todo el procedimiento utilizando gorro, mascarilla, bata, guantes estériles y campo estéril. Retire el catéter y corte de 4 a 5 c.m. del trayecto distal del catéter con bisturí estéril, y colóquelo inmediatamente en el tubo estéril.

9 SISTEMA DE CALIDAD CLASE DE COPIA NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 9 de 12 ESTADO Secreción del sitio de inserción del catéter La presencia de signos locales en ausencia de manifestaciones sistémicas puede estar asociada con reacción a cuerpo extraño. Técnica de recolección. Prepare la piel del área circundante del sitio de inserción del catéter. Utilice técnica aséptica durante el procedimiento utilizando gorro, mascarilla, bata y guantes estériles. Con escobillones estériles tome una muestra de la secreción y coloque en tubo estéril con tapa; y con el otro escobillón realice un extendido en lamina de vidrio MOMENTO DE LA OBTENCION DE LA MUESTRA Se ha documentado que el mejor momento para obtener la muestra de sangre es entre 2 horas o 30 minutos antes del pico febril el cual puede ser precedido por calofríos. Sin embargo dado que este momento no se puede predecir, se recomienda obtener dos hemocultivos en 24 horas separados por 30 a 90 minutos o bien obtener los dos hemocultivos al mismo tiempo, de diferentes sitios de punción, si se trata de un paciente que va a requerir inicio inmediato de antimicrobianos. 5. RECOMENDACIONES Los frascos de hemocultivos sin utilizar deben almacenarse en un lugar seco y fresco (2 a 25 º C) y fuera de la luz directa del sol.

10 NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 10 de 12 ESTADO 5. RECOMENDACIONES Se debe hacer inspección del frasco, previo a la toma de la muestra, identificando la integridad del vidrio y/o los tapones, ausencia de contaminación (turbidez excesiva, decoloración y oscurecimiento o el tapón hinchado o hundido). Use viales que tengan fecha de expiración vigente. Siempre que sea posible, la toma de los hemocultivos se realizará previa al inicio del tratamiento con antimicrobianos. Cuando es necesario practicar hemocultivos de pacientes que se encuentran bajo tratamiento antimicrobiano, deberían tomarse cuando el antimicrobiano se encuentra en la concentración más baja. No tomar hemocultivos a través de una vía por la que se hayan administrado antimicrobianos, hasta después de una hora de haberse terminado su perfusión. La toma de las muestras de sangre no se debe realizar a través de catéter central, a menos que se sospeche sepsis asociada a éste, y en tal caso se debe rotular la botella como muestra de catéter central. Las botellas de hemocultivos ya tomados no se deben refrigerar, se deben enviar máximo media hora posterior a su recolección (preferiblemente se deben enviar inmediatamente se recoge la muestra). Si en el procedimiento hay circulante, éste también debe tener puesta mascarilla.

11 SISTEMA DE CALIDAD CLASE DE COPIA NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 11 de 12 ESTADO 5. RECOMENDACIONES En caso de que en el momento en que se toman los hemocultivos se requiera la toma de muestra para otros exámenes, la primera muestra debe ser para el hemocultivo y posteriormente recolectar muestra para otros exámenes. Recuerde que la toma de cada hemocultivo debe provenir de punciones diferentes en sitios diferentes para poder confirmar si se trata de un mismo microorganismo o si existe alguna contaminación de muestra. 6. BIBLIOGRAFIA MANUAL PARA LA TOMA DE MUESTRAS PARA ANALISIS MICROBIOLOGICO. Laboratorio de Salud Pública. Secretaria Distrital de Salud. Grupo para el control de la Resistencia Bacteriana en Bogotá GREBO GUIA PARA LA TOMA DE HEMOCULTIVOS. Revista Actualizaciones de Enfermería. Fundación Santafé de Bogotá. Julio P Encolombia.com/medicina/enfermera/enfermera7304-guia.htm-14. GONZALEZ AVILA, G. Y BELLO VILLALOBOS, H. Hemocultivos simultáneos y diagnostico de sepsis relacionada a catéter. Nutr.Hosp./Madrid, V. 19, n.5, Disponible en :

12 SISTEMA DE CALIDAD CLASE DE COPIA NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 12 de 12 ESTADO 6. BIBLIOGRAFIA LOSA FERNANDEZ ELENA, PLANES REIG ANA, Y RODRIGUEZ CREIXEMS MARTHA. Hemocultivos. Procedimientos en Microbiología Clínica. Recomendaciones de la Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica Disponible en 3a.htm. LANDMAN NAVARRO CECILIA. Manual de Técnicas de Toma de Muestras para Exámenes de Laboratorio. Enfermera Magister en Educación, Profesor Adjunto Departamento Enfermería del Adulto y Adulto Mayor. Universidad Valparaíso

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