Organizado por Dra. Ma. Esther Meave. Dpto. de Hidrobiología

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1 CURSO TEORICO- PRACTICO SOBRE TAXONOMÍA DE DINOFLAGELADOS MARINOS CON ENFASIS EN ESPECIES TOXICAS Y NOCIVAS Organizado por Dra. Ma. Esther Meave. Dpto. de Hidrobiología Con base en los artículos 3, 28, y 31 del reglamento de estudios superiores de la Universidad Autónoma Metropolitana. I: Unidad y División: Unidad Iztapalapa, DCBS. II. Denominación del curso: Curso de Actualización Teórico Práctico sobre Taxonomía de Dinoflagelados Marinos con Énfasis en Especies Tóxicas y Nocivas III. Nivel: Licenciatura y Postgrado IV. Finalidad: Conocer las especies que los causan, sus características morfológicas y los criterios que se usan para su identificación es importante, para atender adecuadamente las contingencias ambientales que provocan dichos eventos. El curso constará tanto de sesiones teóricas como prácticas. Para las prácticas se usarán tanto muestras de fitoplancton marino preservadas con lugol, pertenecientes al Lab. de Fitoplancton Marino y Salobre, como material vivo y preservado del Centro Oceanográfico de Vigo, España. V. Objetivos: a) Que se conozca como colectar y a preservar adecuadamente las muestras de dinoflagelados marinos planctónicos y bentónicos. b) Que se conozca como estudiar a los organismos desnudos o con teca muy frágil c) Que se aprendan los métodos para observar adecuadamente las características morfológicas necesarias para identificar a las especies tecadas de distintos órdenes de dinoflagelados marinos, haciendo énfasis en los representantes tóxicos y nocivos. d) Que se aprenda a iluminar y calibrar el microscopio, para medir adecuadamente a los organismos fitoplanctónicos e) Que se conozcan los métodos disponibles para evaluar la densidad fitoplanctónica, incluyendo los momentos de florecimientos algales 1

2 VI. Programa y Cronograma de actividades: Día 1 (LUNES 27 DE ABRIL) 1. Introducción a la comunidad fitoplanctónica y a los métodos de estudio (3 horas, 8:00 11:00 hrs.) 1.1. Definición de algas microscópicas. Hábitos planctónicos y bentónicos 1.2. Métodos recolecta y fijación del fitoplancton: Redes, Botellas, Tubo segmentado, colecta de organismos frágiles Métodos de muestreo del bentos y sedimentos 1.4. Método de preservación del fitoplancton: Fijadores: Formalina, Lugol, Karnosky, Glutaraldehido 1.5. Uso del microscopio. Iluminación. Microscopio de fluorescencia. Calibración Métodos para la cuantificación del fitoplancton: Microscopio invertido, Método de Utermöhl, Cámaras Sedgwick Rafter, Hematocitómetro. 2. División Dinophyta (Dinoflagelados) (1 hora, 11:00-12:00 hrs.) 2.1. Características generales 2.2. Toxinas y envenenamientos causados por dinoflagelados 3. Orden Gymnodiniales (Dinoflagelados desnudos) (1 hora, 12:00 13:00 hrs.) 3.1. Taxonomía: Amphidinium, Gymnodinium, Gyrodinium, Cochlodinium Especies tóxicas y nocivas: Gymnodinium catenatum (PSP), Karenia spp. (Brevetoxinas), Takayama spp. (Ictiotoxinas), Amphdinium spp., Cochlodinium polykrikoides, C. fulvcens y C. catenatum (ROS), Karlodinim spp., Noctiluca spp. Práctica I (2.5 horas, 16:30 20:00 horas) Iluminación y calibración del microscopio. Método de Utermöhl. Observación de dinoflagelados desnudos. Observación de diferencias entre Gymnodinium catenatum y G. impudicum. Observación de Karenia, Takayama y Karlodinium. Día 2 (MARTES 28 DE ABRIL) 4. Orden Prorocentrales: Dinoflagelados desmocontes (1 hora: 800 9:00 hrs.) 4.1. Taxonomía Especies tóxicas y nocivas Síndromes producidos por las toxinas de Prorocentrales. 5. Orden Dinophysiales 1 hora (9:00 10:00 hrs.) 5.1. Taxonomía (Dinophysis - Phalacroma) Dinophysiales tóxicos y nocivos Síndrome Diarreico por consumo de mariscos. Práctica II: (2 horas, 10:00 12:00 hrs.) Identificación de especies de Prorocentrum y Dinophysis tóxicos y no. 2

3 6. Dinoflagelados tecados (2 horas, 12:00-14:00 hrs.) 6.1. Nomenclatura de placas, fórmula de la teca Métodos detención para facilitar observación de placas. 7. Orden Gonyaulacales (4 horas, 16:00-20:00 hrs.) 7.1. Taxonomía de Gonyaulacales Dinoflagelados tecados tóxicos: Alexandrium, Pyrodinium, Gambierdiscus, Ostrepsis, Protoceratium, Gonyaulax y Linguludinium. Día 3 (MIERCOLES 29 DE ABRIL) Práctica III. (3 horas, 8:00 11:00 hrs.) Observación e identificación de especies de Alexandrium. Disección de placas y tinción de teca con calcofluor y su observación en microscopia de epifluorescencia. Práctica IV. (2 horas, 11:00-13:00 hrs.) Observación de Pyrodinium bahamense var. compressum Observación de Lingulodinium polyedrum y especies de Gonyaulax 7. Familia Ceratiaceae (2 horas, 15:00 17:00 hrs.) 7.1. Taxonomía de Ceratiaceae: Ceratium 7.2. Taxonomía de Ceratium balechii Práctica V. (3 horas, 17:00 20:00 hrs.) Identificación de especies de Ceratium del Pacífico tropical mexicano. DIA 4. JUEVES 30 de abril 8. Orden Peridiniales (2 horas, 8:00-10:00 hrs.) 8.1Taxonomía de Peridinium - Protoperidinium, Práctica VI. (3 horas, 10:00 13:00) Identificación de especies de Protoperidinium y otras Peridiniales del Pacífico tropical mexicano 8.2. Taxonomía de Scrippsiella, Heterocapsa, Diplopsalis, Diplopsalopsis, Diplopelta (2 horas, 15:00 17:00 hrs.) 9. Quistes de dinoflagelados (1 hora, 17:00-18:00 hrs.) 10. FAN de dinoflagelados y Dinámica de FAN (1.5 horas, 18:00-19:30 hrs.) 11. Clausura del curso y entrega de diplomas (20:00 hrs.) 3

4 VII. Biblografia: Alveal, K., M.E. Ferrario, E.C. Oliveira & E. SAR Manual de Métodos Ficológicos. Universidad de Concepción. Chile. 863 p. Anderson, D.M., D. Cembella, D. & G. Hallegraeff Physiological Ecology of Harmful Algal Blooms. NATO ASI Series. Series G: Ecological Science 41: Balech E Los Dinoflagelados del Atlántico Sudoccidental. Publicaciones Especiales Instituto Español de Oceanografía 1: Balech, E The genus Alexandrium Halim (Dinoflagellata).- Sherkin Island Marine Station, 151 p. Cortés-Altamirano, R La Mareas Rojas. A.G.T. Editor S.A. Primera edición. 161 p. Cortés-Altamirano, R., Muñoz-Cabrera, L., & Octaviano Sotomayor-Navarro, Envenenamiento Paralítico por Mariscos (PSP), causado por el dinoflagelado Pyrodinium bahamense var. compressum en la costa suroeste de México. An. Inst. Cienc. del Mar y Limnol. Univ. Nat. Autón. México 20 (1): Fensome, R.A., F.J.R. Taylor, G. Norris, W.A.S. Sarjeant, D.I. Wharton & G.L. Williams A Classification of Living and Fossil Dinoflagellates. Micropaleontology, Special Publishers. No. 7, Sheridan Press, Hanover: Fraga, S, Bravo, I, Delgado, M, Franco, JM, Zapata, M, Gyrodinium impudicum sp nov (Dinophyceae), a non toxic, chain-forming, red tide dinoflagellate. Phycologia 34: Fraga, S.,, Bravo, I.,, González, R., Sampedro, N.,, Garcés, E.,, Vila, M.,, Masó, M.,, Giacobbe, M.G, Luglié, A.,, Gotsis, O, Diversity of the dinoflagellate genus Alexandrium in the Mediterranean Sea. Rapp. Comm. int. Mer médit. Volumen: 37: 358 Fraga, S, Penna, A, Bianconi, I, Paz, B, Zapata, M, Coolia canariensis sp. Nov. (Dinophyceae), a new non toxic epiphytic benthic dinoflagellate from the Canary Islands. Journal of Phycology 44 (4): Gómez, F A list of free-living dinoflagellate species in the world s oceans. Acta Botánica Croatica 64 (1): Graham, L. E. & L. W. Wilcox Algae. Prentice-Hall, Inc. PAGINAS Hallegraeff, G.M A review of harmful algal blooms and their apparent global increase. Phycologia 32: Hallegraeff G.M., D.M. ANDERSON & A.D. CEMBELLA. (EDS) Manual on Harmful Marine Microalgae, Monographs on oceanographic methodology 11, Unesco, Paris, p.p: Hasle, G.R., E.E. Syversten, K.A. Steidinger y K. Tangen Identifying Marine diatoms and Dinoflagellates. (Tomas,C.R. Ed.). Academic Inc. Press. 598 pp. Kofoid, C.A. & T. Skogsberg The Dinoflagellata: the Dinophysoidae. Memoirs of the Museum of Comparative Zoology at Harvard 51: Licea, D.S., J.L. Moreno, H. Santoyo & G. Figueroa Dinoflagelados del Golfo de California. Universidad Autónoma de Baja California Sur. 165 p. Landsberg, J.H., H. Sherwood, J.N. Johannessen, D. K. White, M. C. Stephen, J. P. Abbott, L.J. Flewelling, R. W. Richardson, R.W. Dickey, E.L.E. Jester, S.M. Etheridge, J.R. Deeds, F.M. Van Dolah, T.A. Leighfield, Y.Z., C.G. Beaudry, R.A. Benner, P.L. Rogers, P.S. Scott, K. Kawabata, J.L. Wolny, & 4

5 K.A. Steidinger Saxitoxin Puffer Fish Poisoning in the United States, with the First Report of Pyrodinium bahamenseas the Putative Toxin Source. Environmental Health Perspectives 114: PAGINAS Matsuoka, K & Y. Fukuyo Taxonomy of cysts. In: Hallegraff G.M, Anderson, D.M. & A.D. Cembella.(eds) Manual on Harmful Marine Microalgae, Monographs on oceanographic methodology 11, Unesco, Paris, pp Meave del Castillo M. E. & D.U. Hernández-Becerril Fitoplancton. In: M. Tapia García (Ed.). El Golfo de Tehuantepec: El Ecosistema y sus Recursos. Universidad Autónoma Metropolitana Iztapalapa, pp Meave del Castillo M.E., M. E. Zamudio Resendiz, Y.B. Okolodkov & I. H. Salgado-Ugarte Ceratium balechii sp. nov. (Dinophyceae: Gonyaulacales) from the Mexican Pacific. Hidrobiológica 13(1): Orellana-Cépeda E., E. Martínez-Romero, L. Muñoz-Cabrera, P. López-Ramírez, E. Cabrera-Mancilla & C. Ramírez-Camarena Toxicity Associated with Blooms of Pyrodinium Bahamense var. compressum in Southwestern México. En: Reguera, B., Blanco, J., Fernández, M.L., and Wyatt, T. Harmful Algae. Penna, A, Vila, M, Fraga, S, Giacobbe, MG, Andreoni, F, Riobo, P, Vernesi, C, Characterization of Ostreopsis and Coolia (Dinophyceae) isolates in the western Mediterranean Sea based on morphology, toxicity and internal transcribed spacer 5.8S rdna sequences. J. Phycol. 41: Penna, A. Fraga, S., Masó, M., Giacobbe, M.G., Bravo, I., Garcés, E.., Vila, M., Bertozzini, E., Andreoni, F., Luglié, A., Vernesi, C Phylogenetic relationships based on sequences of 5.8S gene and internal transcript spacers of the rrna operon among the Mediterranean Alexandrium (Dinophyceae). European Journal of Phycology. 43 (2): Ramírez-Camarena C., A. Martínez-García, N. Juárez-Ruiz, R. Rojas-Crisóstomo & H. Ramírez-García Impacto de Pyrodinium bahamense var. compressum Durante el Florecimiento Algal Nocivo , en la Costa Suroeste de México. En: XIII Reunión Nacional de la Sociedad Mexicana de Plantología A.C., VI Reunión Internacional de Planctología. Nuevo Vallarta, Nayarit, México. 25 al 28 de abril de p. 62. Reguera, B. & G.S. Gonzáles Small cell and intermediate cell formation in species of Dinophysis (Dinophyceae, Dinophysiales) Journal Phycology 37: Rosales-Loessner, F In: M. Hallegraeff and Jay L. Maclean (Eds). Biology, Epidemiology and Management of Pyrodinium Red Tides. Proceedings of the management and training Workshop Bandar Seri Begawan, Brunei, Darussalam May International Center For living Aquatic resources Management, Manila, Phillippines. Sournia, A Atlas du Phytoplancton Marin. Volume I. Introduction, Cyanophycées, Dictyochophycées, Dinophycées, Raphidophycées. Éditions du Centre National de la Recherche Scientifique, Paris, 216 p. Steidnger, K. & K. Tangen Dinoflagellates. In: Tomas, C.R. (Ed.). Identifying marine phytoplankton Acad. Press, Inc., San Diego, California, USA. pp Taylor, F.J.R Dinoflagellates from the International Indian Ocean Expedition. A report on material collected by the R.V. Anton Bruun Biblotheca Botanica, Stuttgart 132: 1-234, pl Taylor, F. J. R The taxonomy of harmful marine phytoplankton. En Hallegraeff, G.M., Anderson, D.M., Cembella, A.D. (eds). Manual on harmful marine microalgae, Monographs on oceanographic methodology 11, Unesco, Paris, p.p: Vargas Montero, M. & E. Freer Co-ocurrence of diferent morphotypes of Pyrodinium bahamense during an extensive bloom in rhe Gulf of Nicoya, Costa Rica. In: A. Villalba, B. Reguera, J. Romalde y 5

6 R. Beiras (Eds.) Molluscan Shelld fish Safety. Santiago de Compostela, España, Junio 4 8, p.p: Villafañe, V. y F. Reid Métodos de microscopía para la cuantificación del fitoplancton. In: Manual de Métodos Ficológicos. Alveal, K., M.E. Ferrario, E.C. Oliveira y E. Sar. (Eds.). Anibal Pinto. Ed. Concepción, Chile. p: Wood, E. J. F Dinoflagellates in the Australian region. Australian II. Recent collections. Division Fish and Oceanography CSIRO Australian 14: VIII. Profesores Dra. Ma. Esther Meave del Castillo. Lab. de Fitoplancton Marino y Salobre. Dpto. de Hidrobiología, UAM-Iztapalapa. Especialista en taxonomía de dinoflagelados y diatomeas marinas. Biol. Santiago Fraga. Centro Oceanográfico de Vigo. Instituto Español de Oceanografía. España. Especialista en taxonomía y cultivo microalgas nocivas. Asistente: M en C. Ma. Eugenia Zamudio Resendiz. IX. Requisitos para obtener constancia. Asistencia mínima del 80% y participación activa durante el curso. X. Duración, fechas horarios: 40 horas, distribuidas en 4 días del 27 al 30 de abril e 2009, con horario de 8:00 AM. a 20:00 hrs., y receso para comida de 13:00 a 15:00 hrs. XI: Apertura el curso. Dirigido especialmente a profesores y alumnos de la Licenciatura en Hidrobiología u otras licenciaturas o postgrados de Instituciones de educación Media y Superior, con formación en Ciencias Biológicas u Oceanográficas de México u otros países, así como al personal de los Centros SEP-CETMAR, ITMAR, Secretaría de Marina Armada de México, Laboratorios Estatales de Salud Pública de los Estados costeros del México, dedicados o interesado en el estudio de las microalgas marinas y/o a programas de monitoreo de FAN. XII. Modalidades de exposición. Exposición por parte de los profesores. Demostración de las técnicas por parte de los profesores y repetición de las mismas por parte de los alumnos. Lecturas de artículos y literatura proporcionada por los profesores. XIII. Lugar en que se impartirá. Laboratorios del Anexo S. CBS. Universidad Autónoma Metropolitana Iztapalapa. Av. San Rafael Atlixco 186. Col. Vicentina México, D.F. XIV. Cupos máximos y mínimos. 5 a 20 estudiantes 6

7 XV. Costo. Estudiantes de Licenciatura de la UAM, socios SOMPAC o participantes XV Reunión SOMPAC: $ MN. (25 USD) Estudiantes de licenciatura externos: $ MN. (42 USD) Estudiantes de Postgrado UAM, socios SOMPAC o participantes XV Reunión SOMPAC: $ MN. (42 USD) Estudiantes de postgrado externos: $ MN. (67 USD) Otros (técnicos, profesores, profesionistas): $1, MN. (100 USD) XVI. Materiales requeridos por persona 1 microscopio óptico de campo claro o contraste de fases; dependiendo del número de alumnos, cada microscopio podrá ser compartido hasta por dos personas. 1 microscopio óptico de epifluorescencia (para todo el grupo, procedente del Lab. de Fitoplancton Marino y Salobre, Dpto. de Hidrobiología). Todos los materiales para las prácticas (portaobjetos, cubreobjetos, agujas de disección, pipetas Pasteur, muestras vivas y fijadas con lugol y formol) serán proporcionados por los profesores. Si alguna persona desea llevar sus propias muestras para observar al microscopio, lo podrá hacer y se revisarán en la práctica del tema correspondiente. Se entregará un disco compacto con todas la bibliografía utilizada en el curso. INFORMES: Dra. Ma. Esther Meave del Castillo. Dpto. de Hidrobiología, UAM-I Tel.: 01 (55) , mem@xanum.uam.mx 7