PRÁCTICAS DEL LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA GENERAL Trimestre 14-I
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- Juan Carlos José Luis San Segundo Suárez
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1 PRÁCTICAS DEL LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA GENERAL Trimestre 14-I P # 1 P # 2 P # 3 P # 4 P # 5 P # 6 Uso y cuidados en el manejo del Microscopio Esterilización de materiales y medios Técnicas de Tinción simple y diferencial Técnicas de siembra y aislamiento en medios Cultivo y descripción de hongos Métodos de cuantificación de microorganismos PROFESORA: MARIA DE LOS ANGELES AQUIAHUATL RAMOS (Ext. 4916) UEA: MICROBIOLOGIA GENERAL GRUPO BF58 AREA: 1 AB HORARIO MIÉRCOLES 15:00-19:00 HORAS No. DE EQUIPOS: 6 PRÁCTICA FECHA TITULO REQUERIMIENTOS /EQUIPO PRIMERA Presentación del Área 08/01/2014 profesor y explicación de Gis y borrador las modalidades de trabajo y evaluación 1 SEGUNDA 14/01/2014 Uso y cuidados en el manejo del Microscopio 5 pipetas de 1.0 ml 5 pipetas de 10 ml 5 tubos con tapón de rosca 5 cajas de Petri de vidrio 1 matraz Erlenmeyer de 250 ml 1 matraz Erlenmeyer de 500 ml 2 microscopios ópticos 1 piseta con etanol 70% Algodón Gasa Papel para envolver
2 2 TERCERA 22/01/2014 Preparación de materiales y medios Esterilización de materiales y medios de cultivo MATERIAL/EQUIPO 1 matraz volumétrico de 100 ml 2 pipetas de 5 ml 2 propipetas 1 espátula 1 parrilla de calentamiento 2 microscopios ópticos 3 Técnicas de Tinción simple y diferencial Papel manila EQUIPO/Grupo 2 balanzas analíticas 1 horno a 150 C 16 frascos ambar tipo gotero MEDIOS DE CULTIVO Y REACTIVOS Medio Caldo Nutritivo Agar bacteriológico NaOH HCl NaCl Cristal violeta Safranina Oxalato de amonio Etanol Metanol Ácido Láctico Azul de Metilo Glicerol Acetona Yodo Yoduro de potasio Agua destilada
3 2 3 CUARTA 29 /01/2014 Se evaluarán los resultados de la esterilización de materiales y medios. Se elaborarán frotis y se realizarán las técnicas de tinción simple y diferencial de Gram Esterilización de materiales y medios de cultivo Técnicas de Tinción simple y diferencial Material/equipo 2 pipetas de 1.0 ml 1 asa de siembra 2 Microscopios ópticos 1 par de guantes de cirujano 2 fragmentos de 7 cm de manguera de latex 1 frasco gotero con aceite de inmersión Papel Seda No Incubadora a temperatura 30 C Espacio de laboratorio el día Viernes 31 de enero a las 15:00 horas para observar resultados s QUINTA 05/02/2014 No hay actividades
4 SEXTA /02/2014 Se prepararán reactivos y medios para las dos prácticas Técnicas de siembra y aislamiento en medios Cultivo y descripción de 6 tubos con tapón de rosca 10 cajas de Petri desechables 3 pipetas de 1.0 ml 5 pipetas de 10 ml 1 matraz Erlenmeyer de 500 ml 3 matraces Erlenmeyer de 250 ml 2 parrillas de calentamiento con agitación con magnetos 2 propipetas 2 espátulas 1 piseta con etanol 70% 1 potenciómetro Algodón Gasa hongos Agar Nutritivo Caldo nutritivo MRS agar Medio de agar papa dextrosa (PDA) Agar eosina azul de metileno (EMB) Soluciones amortiguadoras ph 4 y 7 Agua destilada 2 balanzas analíticas
5 4 6 SEPTIMA 19/02/2014 Se inocularán los medios para aprender las técnicas de siembra y aislamiento de cultivos Preparar reactivos y medios Técnicas de siembra y aislamiento en medios Métodos de cuantificación de microorganismos Material/equipo 1 par de guantes de cirujano 1 matraz Erlenmeyer de 250 ml 1 matraz aforado de 100 ml 12 pipetas de 1.0 ml 2 pipetas de 10 ml 2 pipetas Pasteur 1 pipetero metálico 6 cajas de Petri desechables 12 tubos con tapón de rosca 2 pipetas Pasteur 1 parrilla de agitación con magneto 2 propipetas 2 espátulas 1 potenciómetro NaCl Caldo nutritivo Extracto de levadura Agar MRS Agua destilada Soluciones amortiguadoras ph 4 y 7 2 balanzas analíticas 1 incubadora a 35 C Espacio de laboratorio el día Jueves 20 de Febrero a las 16:00 horas para observar resultados s
6 4 5 6 OCTAVA 26/02/2014 Evaluar resultados NOVENA 05/03/2014 Inocular medios de cultivo Realización de las técnicas Técnicas de siembra y aislamiento en medios Cultivo y descripción de hongos Métodos de cuantificación de microorganismos 2 microscopios Colorantes de Gram Aceite de inmersión 1 incubadora a 28 C 1 asa de siembra 1 pinzas de disección 1 matraz Erlenmeyer de 250 ml 2 pipetas de 10 ml 5 pipetas Pasteur 2 vasos de precipitados de 100 ml 5 tubos de ensaye 2 propipetas (para 1.0 y 10 ml) 1 agitador tipo Vortex 1 Cámara de Neubauer 2 Microscopios ópticos 2 espectrofotómetros 4 celdas 1 autoclave con base, canastilla y válvula Espacio de laboratorio el día Viernes 7 de Marzo a las 15:00 horas para observar resultados s
7 5 DECIMA 12/03/2014 Observación de cultivos de hongos Esterilización y entrega de material Cultivo y descripción de hongos 2 microscopios ópticos
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