19:18 TOMA DE MUESTRAS Y ASEGURAMIENTO DE LA CALIDAD. Profesor: José Amaro Suazo

Transcripción

1 TOMA DE MUESTRAS Y ASEGURAMIENTO DE LA CALIDAD Profesor: José Amaro Suazo

2 GENERALIDADES La confiabilidad de los resultados del estudio microbiológico dependen de la calidad de la muestra. La correcta recolección de una muestra para su cultivo es la etapa más importante en el aislamiento de microorganismos responsables de enfermedades infecciosas. Una muestra deficientemente colectada, conservada, transportada, y/o identificada puede ser el motivo del fracaso de aislar el microorganismo causante, y la recuperación de contaminantes pueda conducir a una terapia incorrecta o aún perjudicial.

3 TOMA DE MUESTRAS Definición: Obtención de especímenes biológicos para el apoyo al diagnóstico clínico. Especímenes: * Líquidos * Secreciones * Otros materiales como tejidos

4 QUIEN LA REALIZA? 1. Personal Profesional: * Enfermeros * Microbiólogos * Médicos * Personal Capacitado 2. Paciente Previa instrucción.

5 Etapas del estudio microbiológico Solicitud de examen Toma de muestra Transporte de muestra Análisis de laboratorio Entrega de resultado Fase pre-analítica

6 RECOMENDACIONES PARA LA TOMA DE MUESTRAS El médico solicitará un estudio microbiológico con una orientación clara de acuerdo con la situación clínica del paciente El personal de enfermería y laboratorio microbiológico requiere conocimientos e información precisa para realizar el procedimiento en condiciones óptimas El personal encargado del transporte debe estar capacitado adecuadamente para mantener la muestra en términos de tiempo y características hasta su entrega al área de análisis Todo el personal debe asumir la importancia de sus actividades, para contribuir a los objetivos de calidad

7 PRECAUCIONES DE BIOSEGURIDAD Utilizar los elementos de protección personal Protección ocular: gafas o mascarilla con visera. Mascarilla. Guantes. Bata. Contenedores adecuados (s/fugas y de fácil sellamiento) Manejo de elementos cortopunzantes: No reenfundar agujas. Disponer y utilizar adecuadamente el contenedor para cortopunzantes. No transportar jeringas con agujas. Se recomienda transferir a un tubo estéril Y??? En caso de accidente con riesgo biológico??? Que hacer??

8 PREPARACIÓN DE ELEMENTOS PARA TOMA DE MUESTRA Tórulas: Mango de madera y algodón: - virus herpes simplex: NO -Mycoplasma en uretra, vagina y cérvix, y para la detección de la mayoría de bacterias no exigentes nutricionalmente: SI Dacrón (poliéster): detección de virus y facilitan la sobrevida de Streptococcus pyogenes. Alginato de calcio: - Chlamydia spp: SI - Neisseria gonorrhoeae: NO

9 IDENTIFICACIÓN DE MUESTRAS 1. Nombre completo y edad del paciente. 2. Número de historia clínica: en algunas instituciones corresponde al documento de identificación. 3. Habitación donde está ubicado el paciente o servicio de localización. 4. Tipo de muestra y sitio anatómico. Por ejemplo, secreción de herida quirúrgica abdominal; biopsia tejido úlcera pie diabético; orina obtenida a través de sonda vesical permanente; sangre obtenida a través de catéter venoso central, etc. 5. Fecha y hora de recolección. 6. Identificación del personal que obtiene la muestra.

10 CONDICIONES GENERALES DE ALMACENAMIENTO Y TRANSPORTE Tiempo: < 2 hrs y de acuerdo con la viabilidad del organismo sospechado y el recipiente donde se colectó No deben ser almacenadas por más de 24 horas, independientemente del medio y la temperatura de almacenamiento. Volumen obtenido Susceptibilidad al medio ambiente: procesamiento inmediato: Shigella spp, Neisseria gonorrhoeae, N. meningitidis, Haemophilus influenzae, Streptococcus pneumoniae y anaerobios. Muestras para estudio de anaerobios no refrigerar y en recipientes que mantengan condiciones libres de oxígeno Muestras de LCR, de vagina, oído interno y ojos no deben ser refrigeradas. Los frascos para recolección de líquidos deben tener tapa rosca; no se recomienda el uso de tapones de gasa o algodón.

11 CONSIDERACIONES GENERALES La toma de muestra para cultivo debe realizarse utilizando material estéril, tomadas por frotación, por punción o aspiración Las muestras óptimas para cultivo son las de fluidos o trocitos de tejidos Las muestras tomadas con tórula deben ser humedecidas con suero o agua estéril Para el traslado al laboratorio en general, luego de tomada la muestra deben introducirse en medio de transporte específico de acuerdo al tipo de muestra La hora de extracción de la muestra puede ser cualquier momento del día a excepción de orina y secreciones respiratorias que si son de rutina, deben ser tomadas a primera hora de la mañana Tomada la muestra, esta debe transportarse hasta el laboratorio a temperatura ambiente a excepción de orina y secreciones respiratorias las que deben mantenerse y trasladarse al laboratorio para su siembra a 4º C

12 CONSIDERACIONES GENERALES TOMA DE MUESTRAS: Exclusivamente frente a la sospecha de infección Es determinante para un diagnóstico adecuado Debe asegurar: - Que la muestra procede del sitio de infección - Que fue tomada en el momento adecuado - Volumen suficiente - Técnica aséptica - Recipiente adecuado (estéril/limpio, luz) - Orientación o juicio clínico

13 PRINCIPIOS BÁSICOS PARA LA CORRECTA RECOLECCIÓN DE MUESTRA: Debe ser material del verdadero sitio de infección y debe recogerse con un mínimo de contaminación de tejidos, órganos o secreciones adyacentes (REPRESENTATIVO) Establecer periodos óptimos para la recolección de muestras a fin de tener la mejor oportunidad de aislar los microorganismos causantes (TIEMPO OPORTUNO) Obtener suficiente cantidad de muestra para llevar a cabo las técnicas de cultivo solicitadas. Utilizar dispositivos de recolección, recipientes para las muestras y medios de cultivo adecuados. Siempre que sea posible, obtener las muestras antes de la administración de antibióticos.

14 PRINCIPIOS BÁSICOS PARA LA CORRECTA RECOLECCIÓN DE MUESTRA: El envase recolector de la muestra debe estar correctamente rotulado. Si el paciente va a colectar su muestra, asegúrese de que comprenda lo que le explicó, mediante los siguientes consejos: - Propicie un ambiente de aprendizaje. - Sea corto, separe el conocimiento largo y complejo; en segmentos pequeños. - Haga que el paciente use sentidos al máximo, esto incluye escuchar, ver, tocar, escribir, hablar y hacer.

15 PRINCIPIOS BÁSICOS PARA LA CORRECTA RECOLECCIÓN DE MUESTRA: Enseñe habilidad con progresos lógicos. Y recuerde, los pacientes recuerdan el 90% de lo que ellos dicen y hacen; pero sólo el 10% de lo que ellos escuchan. Documente lo que el paciente debe hacer.

16 TIPOS DE MUESTRAS Muestras de obtención directa de localizaciones estériles. Alto rendimiento. Muestras de obtención indirecta de localizaciones estériles. Rendimiento dependiente de la flora saprofita. Muestras obtenidas de localizaciones con flora microbiana. Muestras para el diagnóstico virológico. Alto Rendimiento, si no es flora viral habitual.

17 CRITERIOS DE ACEPTABILIDAD O RECHAZO DE MUESTRAS Cuando no se mantienen las condiciones de colección y transporte recomendadas se debe obtener una nueva muestra, siempre que sea posible Cantidades insuficientes, temperaturas inadecuadas, recipientes rotos o con fugas o deficiente calidad de la muestra (por ejemplo, esputo contaminado con saliva; orina obtenida de bolsa colectora), deben ser tomados en cuenta para no procesar el espécimen. Muestras sin identificar: no invasivo, invasivo Transporte demorado Muestras repetidas

18 LAS PRINCIPALES CAUSAS DEL BAJO RENDIMIENTO DE LOS CULTIVOS Se relacionan con: Caída del ph Caída de la temperatura Desecación

19 TIPO DE MUESTRAS MÁS FRECUENTES Secreciones: Frotar con tórula humedecida e introducir en medio de transporte de Stuart o Amies. (en gral. Azul) Deposiciones: Introducir tórula humedecida en la zona más alterada de las deposiciones recién emitidas e introducir en medio transporte Cary blair (en gral. Rojo) Sangre: Hemocultivos tomados por punción con Técnica aséptica e inoculación inmediata en botella de Hemocultivos (vial). Otros fluidos: Tomar alrededor de 2ml con Técnica Aséptica y transporte en tubo estéril Punciones: Tomar con Técnica Aséptica y enviar alrededor de 2 ml en la misma jeringa. Anaerobios: Tomar con Técnica aséptica 10 ml en jeringa, sellar y enviar al laboratorio (en medio de transporte para anaerobios, previo aviso)

20 MUESTRAS DE DIVERSAS ZONAS DEL CUERPO Y TIPOS DE INFECCIÓN (*) Recogida en quirófano (V) muestra para virología (F) muestra para hongos (M) muestra para micobacterias

21 MUESTRAS DE DIVERSAS ZONAS DEL CUERPO Y TIPOS DE INFECCIÓN (*) Recogida en quirófano (V) muestra para virología (F) muestra para hongos (M) muestra para micobacterias

22 QUE COMPRENDE UN CULTIVO MICROBIOLÓGICO Examen directo, cultivo y cuando se justifica, el antibiograma. Examen directo: significa la observación microscópica de la muestra extendida en un portaobjeto, que puede ser al fresco o con tinción (Gram, Ziehl Neelsen, Tinta China). Este procedimiento es rápido. Cultivo: - crecimiento in vitro de microorganismos en medios de cultivos líquidos o sólidos (agares diferentes). Permite aislamiento del agente y su identificación posterior - estudio de la sensibilidad a los antimicrobianos. Este procedimiento es más lento demora al menos 24 horas y en casos de algunos microorganismos de lento desarrollo puede demorar varios días o semanas.

23 TIPOS DE MEDIOS DE TRANSPORTE De izq. A der.: amies-carbon, stuart, cary blair, amies

24 Es muy importante realizar siempre un lavado de manos clínico adecuado antes y después de tomar una muestra TOMA DE MUESTRAS:

25 HEMOCULTIVOS: DEMOSTRAR LA PRESENCIA DE BACTERIAS EN SANGRE Paciente Afebril o Febril Tomar la muestra antes del uso de antimicrobianos Recolección: por personal entrenado y previo??? - Antisepsia de piel con alcohol 70% - Desinfección de tapa del vial con alcohol 70% - 2 Hemocultivos simultáneos, pero distintos sitios punción se recomienda 30 min. entre cada extracción y en lo posible extraer de diferentes sitios anatómicos

26 Volúmenes recomendados (sujeto a fabricante) Nota: no rallar el código de barra, rotular lugar de extracción

27 CASOS ESPECIALES ENDOCARDITIS: 6 muestras en series (3 muestras / 2 días consecutivos) Sospecha de infección por catéter

28 CONSIDERACIONES La presencia de fiebre no es requisito indispensable para la toma de muestra Si existe fiebre las muestras deben tomarse antecediendo al peak febril Para estudio de anaerobio, se procede de igual forma, excepto que las muestras se vacían al medio de cultivo especial No inocular más de una botella con la misma aguja ni punción. No enviar el catéter en caldo o medio de transporte, solo en tubo estéril y ojo! con las dimensiones (5mm)

29 INFECCION TRACTO URINARIO (ITU) (ORINA, SECRECIÓN URETRAL Y PROSTÁTICA) Urocultivos: Segundo chorro: Realizar aseo perineal prolijo, separando los labios en la mujer y retrayendo el prepucio en el varón. Eliminar el primer chorro de orina Recibir 2 a 3 ml del segundo chorro en receptáculo estéril y sin interrumpir la micción tapón vaginal en la mujer Debe mantenerse refrigerada a 4º C y trasladarla manteniendo la cadena de frío antes de 30 min.

30 UROCULTIVOS: Por punción de catéter urinario: Desinfectar el sitio de punción del segmento proximal del catéter con alcohol 70% aspirar con jeringa estéril entre 2 a 5 ml de orina vaciar en tubo estéril y transportarla al laboratorio de la misma forma que la muestra miccional Es una muestra que tiene un mal valor predictivo positivo, pero excelente valor predictivo negativo, esto quiere decir que si el cultivo esta negativo permite descartar el diagnostico No se recomienda interpretar en el contexto del sedimento urinario, ya que la sonda como cuerpo extraño produce reacción inflamatoria local que genera leucocituria. Solo solicitar si se sospecha del tracto urinario como causa de foco infeccioso

31 UROCULTIVOS: Muestras por punción suprapúbica: Antisepsia de la piel en el sitio de punción, aspirar con técnica aséptica entre 2 a 5 ml de orina y proceder a su traslado al laboratorio de igual forma que los casos anteriores

32 UROCULTIVOS: Por recolector: Es una muestra que tiene un mal VPP, pero excelente VPN. Si el cultivo esta negativo permite descartar el diagnostico Siempre se debe acompañar de sedimento urinario para la Interpretación Requiere aseo genital riguroso Se debe cambiar el recolector cada 30 minutos, y repetir el aseo antes de instalar un nuevo recolector Enviar al laboratorio en recolector bien sellado, no trasvasijar Anotar como observación si: el paciente tiene diarrea o dermatitis, estas 2 circunstancias pueden generar falsos positivos

33 UROCULTIVOS: Por sondeo vesical Es una técnica invasiva de toma de muestra realizada por enfermera Requiere aseo genital riguroso e instalación de una sonda transitoria para extraer orina directamente de vejiga Tiene un excelente VPP y VPN, esto quiere decir que su resultado permite hacer y descartar diagnóstico

34 INDICADOR DE CALIDAD DE TOMA DE MUESTRA UROCULTIVO Toda muestra polimicrobiana indica mala técnica de toma de muestra como proceso Existe un indicador de toma de muestra que considera el número de muestras polimicroabianas sobre el total de muestras tomadas por servicios (%) Este % de urocultivos polimicrobianos no debe superar el 8% >8% se deben realizar estrategias de mejora en la toma de muestra, por ejemplo evaluar que etapa de la norma de toma de muestra no se cumple, e intervenir en ese aspecto

35 VOLÚMENES Orina de 1er chorro:indicada en estudio de infección por N. gonorrhoeae, Chlamydias y otras uretritis no gonocócicas - Si se solicita cultivo de Neisseria gonorrhoeae (gonococo) la muestra no debe refrigerarse.

36 SECRECIÓN URETRAL: Previo aseo genital, exprimir uretra y recibir la secreción en tórula estéril colocar en medio de transporte y enviar a estudio. La muestra debe tomarse a primera hora de la mañana o después de una hora de orinar. SECRECIÓN URETRAL: o Se procede de igual forma que en el caso de muestra para secreción uretral, previo masaje prostático

37 INFECCION RESPIRATORIA INFERIOR Expectoración: Técnica: - Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución salina (evitar uso de pasta de dientes o enjuagues bucales) - Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal - Volumen: 2 a 10 ml - De no producirse expectoración espontánea, puede inducirse el esputo con nebulizaciones de suero fisiológico estéril (15 ml durante 10 minutos), kinesioterapia respiratoria. Observación: - El lab. Microbiología puede rechazar la muestra y solicitar una nueva si la calidad no es la adecuada (de acuerdo t.gram) - si se solicita cultivo de Koch el envase debe estar protegido de la luz

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39 INFECCION RESPIRATORIA INFERIOR TOMA DE MUESTRAS INVASIVAS Lavado bronqueoalveolar: Realizar el procedimiento a través de broncoscopía y con técnica aséptica aspirar entre 15 a 50 ml de lavado. Transportarlas de inmediato en tubo estéril al laboratorio para su estudio. Aspirado telescopado protegido: Por broncoscopía introducir cepillo a través del catéter protegido frotar la zona alterada y enviar en tubo estéril de inmediato al laboratorio para estudio semicuantitativo. Toracocentesis: Realizar el procedimiento con técnica aséptica, aspirar 10 ml si es posible. Transportar de inmediato al laboratorio para su estudio. Biopsia pulmonar: realizar el procedimiento con técnica aséptica, enviar un trocito de tejido en tubo estéril o en medio de transporte con caldo específico. Trasladar la muestra de inmediato para su estudio

40 CONSIDERACIÓN Para el estudio etiológico de neumonía nosocomial en paciente intubado, se considera apropiado los cultivos aspirado traqueal, siempre que se realice con técnicas cuantitativas

41 INFECCION RESPIRATORIA ALTA Secreción faríngea: - Deprimir la lengua y frotar con tórula estéril amígdalas, pilares anteriores y pared posterior de la faringe. - Colocar en el medio de transporte y enviar de inmediato al laboratorio, si no es posible la muestra se mantiene transitoriamente a temperatura ambiente. Secreción nasal: Introducir tórula estéril más o menos 2,5 cm. en mucosa nasal, rotar y colocar en medio de transporte. Enviar al laboratorio de inmediato o mantener la muestra transitoriamente a temperatura ambiente

42 INFECCION DE HERIDA OPERATORIA Infección superficial: son aquellas que comprometen dermis, epidermis y celular subcutáneo (ulceras, quemaduras, etc.) Toma de muestra: Limpiar la herida con suero fisiológico, frotar con tórula estéril el centro y los bordes internos de la superficie cruenta, colocar en medio de transporte y enviar al laboratorio para su siembra y estudio Muestra en tórula no es apta para cultivo de anaerobio En caso de cultivo anaeróbico, la muestra debe ser tomada por el médico por aspiración con jeringa (0.5 ml enviar sellada) o por el envío de tejido en frasco estéril (6 mm. En caldo tioglicolato)

43 INFECCION DE HERIDA OPERATORIA Infección profunda: son aquellas que incluyen fascia y músculo, pudiendo comprometer o no cavidades u órganos Toma de muestra: Limpiar la superficie cruenta con suero fisiológico, tomar la muestra con tórula de la parte más profunda de la herida, colocar en medio de transporte y enviarla al laboratorio

44 INFECCION DE HERIDA OPERATORIA Abscesos cerrados: - Desinfectar el sitio de punción con antiséptico, aspirar material en lo posible 10 ml - vaciar a tubo estéril para enviar al laboratorio. - Si se sospecha de anaerobios enviar en la misma jeringa sellada, eliminando todo el aire remanente.

45 CONSIDERACIONES Las muestras de pus tienen muy mal rendimiento, ya que el ph ácido de este material destruye rápidamente los microorganismos, siendo difícil su aislamiento posterior a la siembra En caso de otras heridas de piel no operatorias, proceder a la toma de muestras como si se tratara de una herida superficial y transportarlas de igual forma que éstas

46 INFECCIONES SUPERFICIALES DE PIEL Y MUCOSAS Secreción conjuntival: Limpiar la superficie externa del ojo con suero estéril, frotar con tórula humedecida el borde interno de la conjuntiva y colocarla en el medio de transporte para su envío al laboratorio. Secreción ótica: Limpiar el canal auditivo con jabón antiséptico, tomar la muestra con tórula estéril y colocarla en el medio de transporte para su envío al laboratorio. Secreción umbilical RN: Tomar muestra directa de la zona umbilical sin previa limpieza, colocar en medio de transporte y enviar al laboratorio.

47 INFECCIONES GINECO OBSTETRICAS Endocervix: Previo aseo genital, introducir tórula hacia el canal cervical y rotar, colocar la tórula en medio de transporte y enviar al laboratorio. (ojo en sospecha de Neisseria gonorrhoeae)

48 INFECCIONES GINECO OBSTETRICAS Secreciones vaginales: Para estudio bacteriológico y de hongos. A través de un especulo frotar con tórula estéril la mucosa vaginal e impregnarla de flujo de los fondos de saco, colocar en medio de transporte y enviar al laboratorio. Para Trichomonas, introducir suero fisiológico tibio, recoger y vaciar en tubo estéril de 3 a 5 ml. Enviar de inmediato al laboratorio

49 INFECCIONES GINECO OBSTETRICAS Líquido Amniótico: Amniocentesis, previa desinfección con antiséptico y enviar al laboratorio en la misma jeringa o en tubo estéril entre 5 a 10 ml de muestra. Placenta y tejidos fetales: Durante el acto quirúrgico, obtener tejido o aspirados. Enviar en tubo estéril o caldo tioglicolato como para estudio de anaerobios. Trompas y ovarios: Obtener muestra durante la cirugía y enviar tejido o aspirado de la misma forma que para estudio de anaerobios

50 INFECCION GASTRO INTESTINAL Coprocultivos: Introducir tórula limpia en la zona más alterada de las deposiciones recién emitidas (mucus o sangre) y colocarlas en el medio de transporte (tubo tapa roja). Las muestras pueden tomarse directamente del recto, del pañal o receptáculo limpio. Toxina de Clostridium difficile: Enviar 5 a 10 ml de deposiciones recién emitidas en tubo o frasco limpio y seco (valido también para estudio de Rotavirus, leucocitos fecales y adenovirus en deposición)

51 INFECCION GASTRO INTESTINAL Aspirado gástrico en RN Aspirar por sonda nasogástrica de 1 a 3 ml de contenido y colocar en tubo estéril. Sólo se justifica esta muestra en las primeras 24 horas de vida. Bilis Aspirar entre 5 a 10 ml de bilis y enviar en la misma jeringa o en tubo estéril de inmediato al laboratorio

52 MUESTRAS DE FLUIDOS Y CAVIDADES NORMALMENTE ESTERILES Líquido cefalorraquídeo (LCR) Previa desinfección de la zona con antiséptico y con técnica aséptica, obtener entre 2 a 3 ml de muestra y en tubo estéril enviar de inmediato al laboratorio, si no es posible enviarla al momento, transitoriamente debe mantenerse a temperatura ambiente. NO REFRIGERAR. Líquido ascítico Aspirar idealmente 10 ml de muestra a través de punción abdominal con técnica aséptica, vaciar a frasco de Hemocultivos y simultáneamente 1 ml en tubo estéril seco para tinción en laboratorio Lecha Materna Limpiar el pezón previo a extracción de la muestra, descartar los primeros ml y recoger entre 2 a 5 ml en tubo estéril. Enviar de inmediato al laboratorio.

53 VIRUS RESPIRATORIOS O BORDETELLA PERTUSSIS Aspirado nasofaríngeo: Con guantes estériles, introducir cuidadosamente la sonda de aspiración por una fosa nasal hacia la nasofaringe. Sólo al llegar a la nasofaringe aspirar las secreciones - Retirar la sonda - Transferir la muestra al medio de transporte viral. - Rotular el tubo de transporte Torulado o hisopado retrofaríngeo: - en ángulo de 70 º

54 OTRAS Screening Streptococcus Grupo B: - Realizar un hisopado desde el inicio del perineo hasta el inicio del recto Detección de Enterococo resistente a Vancomicina (ERV) - Introducir la tórula en el esfínter anal, rotar suavemente y retirar. Detección de portación nasal de Staphylococcus aureus - Introducir suavemente una tórula fina +/- 2 cm. en la nariz, en dirección paralela al piso nasal. - Girar suavemente contra la mucosa de la superficie nasal y extraer

55 TOMA DE MUESTRA HONGOS CULTIVO IDENTIFICACION EXAMEN MICROSCOPICO DIRECTO TOMA DE MUESTRA CLINICA

56 RECOLECCIÓN DE MUESTRAS CLÍNICAS Representa uno de los pasos más importantes del examen micológico por ej: correcta y adecuada recolección permite el hallazgo del agente implicado. Un examen micológico negativo frente a una lesión sospechosa puede deberse a pequeños errores en la técnica de recolección de la muestra por ej. material insuficiente, escamas demasiado grandes, tratamiento antifúngico previo, etc.

57 Muestras clínicas: Requisitos Cantidad suficiente Bordes activos de las lesiones Paciente sin tratamiento antifúngico previo

58 - Paciente limpio - Baño o limpieza solo con agua y jabón (no desinfectante) Antisepsia de piel con alcohol 70 NO ALCOHOL 95

59 Tipos de material clínico PELOS ESCAMAS -Piel -Uñas -Cuero cabelludo SECRECIONES

60 Materiales para la toma de muestras

61 PIEL Raspado del borde activo de la lesión con bisturí, espátula o portaobjetos estéril Si existen vesículas debe cortarse el techo.

62 Intértrigo: -Raspar escamas -Si esta macerado tomar con tórula humedecida en suero estéril

63 PIEL (en Pitiriasis versicolor)

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65 UÑAS Tomar escamas mas profundas posibles, limite entre uña sana y enferma. Raspado en la porción distal del espacio subungueal donde se acumula la hiperqueratosis (áreas blancas) En caso de onicomicosis superficial se raspa la cara externa de la uña. Las uñas no deben estar pintadas

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68 PELOS Limpiar cuero cabelludo con alcohol Arrancar pelos cortados del borde de la alopecia con pinzas Muestra de cuero cabelludo se raspa con bisturí

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70 OTRAS MUESTRAS Ojos : - conjuntival (tórula estéril) - cornea (procedimiento médico) Oídos: - con tórula estéril tomar material purulento o costroso Cavidad oral: - aseo oral - raspar lesiones blanquecinas

71 OTRAS MUESTRAS Flujo vaginal - con espéculo Glande, prepucio, región anal y perianal - tomar con tórula estéril

72 Transporte de muestra Envase limpio y seco Las escamas, pelos, costras o raspados se depositan : - entre 2 portaobjetos flameados envueltos en papel o unidos con scotch. - en placa de petri estéril - Pocillos plásticos con tapa - sobre de papel? Enviar lo más rápido posible

73 Rechazo de Muestra - Muestra escasa. - Paciente en tratamiento. - Muestra sin orden de examen y/o diagnóstico presuntivo. - Muestra sin datos mínimos del paciente y de la lesión.

74 LOS 6 ESENCIALES EN TOMA DE MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS Momento adecuado Contenedor adecuado Paciente adecuado Sitio adecuado Forma adecuada Traslado adecuado

75 MUCHAS GRACIAS! Aplausos o Fusilamiento!