VARIEDADES DE SORGO EN EL MANEJO DEL PAS

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Carlos González Toledo
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1 VARIEDADES DE SORGO EN EL MANEJO DEL PAS Dr. Miguel Hernández Martínez Dr. Víctor Pecina Quintero Dr. Carlos Herrera Corredor Investigadores del CAEB-INIFAP Celaya, Guanajuato, Septiembre 2015

2 Zonas de aptitud potencial de RIEGO

3 Aptitud potencial de TEMPORAL

4 TIPOS DE CRUZA HIBRIDAS EN EL MERCADO 1. TROPICAL X TROPICAL: ZONA DE ADAPTCIÓN TROPICO HÚMEDO Y SECO Y ALGUNOS HÍBRIDOS EN BAJÍO Y MORELOS. (EJEMPLO A. GALIO, A-COBALTO, A. LITIO, A-NIQUEL) 2. TEMPLADO X TROPICAL: AMPLIA ADAPTACIÓN A LAS ZONAS SORGUERAS DE MÉXICO. (EJEMPLO WAC-698, UPM-219, P-8133, DK44) 3. TEMPLADO X TEMPLADO: ZONAS TEMPLADAS HASTA 1950 m DE ALTITUD (EJEMPLO WAC-696, DK-43) Los híbridos de sorgo de riego y temporal deben poseer: 1. Adaptación a las condiciones de siembra: riego, temporal o punteado. 2. Resistencia a: 1) mildiú velloso, 2) carbón de la panoja, 3) mosquita del sorgo, 4) ahora al pulgón amarillo. 3. Tolerancia a: a) tizón de la hoja, b)tizón del tallo y panoja y c) tolerancia al ergot.

5 FECHAS DE SIEMBRA y PROBLEMÁTICA RIEGO: El período óptimo de siembra de: a) Los híbridos tardíos abarca del 15 de abril al 15 de mayo; b) Los híbridos intermedios del 1 de mayo al 1º de junio; y c) Los híbridos precoces del 15 de mayo al 1º de junio. TEMPORAL: Del inició del temporal (inició del mes junio) al 15 de julio. Problemática actual: 1. Los híbridos comerciales indican que son de ciclo: tardío-intermedio; intermedio-precoz, lo cual provoca: a) Que no se respeta la fecha de siembra en la que debe sembrarse el híbrido alargando el período de siembra e incrementando riesgos. Solución: Que cada híbrido se siembre en el CICLO que le corresponda (ACOTAR A LA FECHA DE SIEMBRA) definido por las horas calor acumuladas a la floración y a la madurez fisiológica.

6 PROBLEMÁTICA DE FECHAS DE SIEMBRA 2. Actualmente no existe el COTESE por lo que se ha dejado que las empresas oferten sus híbridos en forma comercial, SIN TENER INFORMACIÓN de: 1) ADAPTACIÓN 2) RESISTENCIA A ENFERMEDADES Y PLAGAS, 3) DE LA TOLERANCIA A SEQUÍA. Solución: Que cada híbrido comercial se evalué acorde a las FECHAS DE SIEMBRA, ESTACIONES DE CRECIMIENTO se tienen en Guanajuato y acorde a la PRECIPITACIÓN de la zona donde se va a sembrar, para lo cual se proponer que surja el COTESE (Consejo Técnico Estatal de Semillas), en donde cada empresa someta y pague la evaluación de cada híbrido que pretenda vender semilla en el estado.

RIESGOS EN LA ELECCIÓN DEL HÍBRIDO SEQUÍA DE PREFLORACIÓN E.C.=135DÍAS PREC.= 480mm SEQUÍA DE PRE- POSTFLORACIÓN E.C.=125 DÍAS PREC.=320-400mm SEQUÍA DE POSTFLORACIÓN E.C.= 150-170DÍAS HÍBRIDO : PREC.

7 RIESGOS EN LA ELECCIÓN DEL HÍBRIDO SEQUÍA DE PREFLORACIÓN E.C.=135DÍAS PREC.= 480mm SEQUÍA DE PRE- POSTFLORACIÓN E.C.=125 DÍAS PREC.= mm SEQUÍA DE POSTFLORACIÓN E.C.= DÍAS HÍBRIDO : PREC.= mm 1) CICLO INAPROPIADO; 2) NO ADECUADO A LAS CONDICIONES DE SIEMBRA, 3) SIN RESISTENCIA A ENFERMEDADES (CARBÓN, MILDÍU, TIZÓN DE LAHOJA Y PLANTA) 4) SIN RESISTENCIA A PLAGAS (PULGON AMARILLO) 7

8 RESISTENCIA Y TOLERANCIA A ENFERMEDADES TIZÓN DE LA PANOJA ERGOT DE LA PANOJA MILDIÚ DEL SORGO (2 PATOPIPOS) CARBÓN DE LA PANOJA (4 RAZAS) TIZÓN DE LA HOJA

HISTORIA: Fuentes de resistencia al pulgón VERDE (Schizaphis graminum) En 1976 la Universidad de Texas, en EUA, liberó las líneas y primeros híbridos

Líneas: Híbridos: R-7078 ATx3197 x RTx414 RTx414 A-Redlan x R7078 BTx3197 En 1980-85 aparecieron los biotipos C y E; INTSORMIL liberó líneas e híbridos

9 HISTORIA: Fuentes de resistencia al pulgón VERDE (Schizaphis graminum) En 1976 la Universidad de Texas, en EUA, liberó las líneas y primeros híbridos resistentes (G.L. Teetes, 1979) al pulgón verde Schizaphis graminum (Rondani). Líneas: Híbridos: R-7078 ATx3197 x RTx414 RTx414 A-Redlan x R7078 BTx3197 En aparecieron los biotipos C y E; INTSORMIL liberó líneas e híbridos resistentes a uno u otro o ambos biotipos (G.L. Teetes, 1989). Líneas: Híbridos: IS-2219 IS-2219 x RTAM-428 RTx430 B-SCO630 Atx-378 x RTAM-428 RTAM-428 ATAM-618 x RTX414 E-35-1 IS-1151 BTAM-618 HERENCIA DE LA RESITENCIA MONOGÉNICA DOMINANTE

10 PRESENTE: Fuentes de resistencia al pulgón amarillo Hagio (1992) de Japón encontró un gen dominante en dos variedades: PE y Senkinshiro Mote y Shahane (1994): reporto que variedades con mayor distancia entre hojas, menor ángulo de la hoja respecto al tallo y mayor presencia de cera fueron menos suceptibles al áfido. Variedades con alto contenido de fósforo, potasio y polifenoles son poco preferido por los áfidos: ICSCTV9, ICSV148, SPV504, BTP28 e IS1640 Fuentes de Tailandia (año 2000): tres accesiones con resistencia a Melanaphis sacchari y a fumagina: EC Altamente resistente (96% de las plantas resistentes del 100%) EC Inmune (100%) EC Inmune (100%)

11 MECANISMOS DE RESISTENCIA TIPOS DE RESISTENCIA: ANTIXENOSIS = NO PREFERENCIA (evita la colonización) ANTIBIOSIS = DISMINUCION DE LAS POBLACIONES DE PULGON (efecto en la disminución de la reproducción) RESISTENCIA o TOLERANCIA = NIVELES VARIABLES DE RES. O TOL. CARACTERISTICAS: MORFOLOGICAS-FISIOLOGICOS-BIOQUÍMICAS: 1. Mayor distancia de entrenudos de hojas, 2. Lámina de cera gruesa y tricomas (abundantes y largos), 3. Menor ángulo de hoja respecto al tallo (erectas y semierectas). 4. Variedades con alto contenido de polifenoles y taninos (antipájaro) 5. Niveles altos de HCN en los 35 a 40 días (la presencia de p- hidroxibenzaldehído) Contribuyen a la NO preferencia del pulgón

12 Fuentes de resistencia al pulgón amarillo REPORTADAS IS 12158C (SC 984) Ethiopia Bicolor HR, Ax, Ab Botswana, Manthe (1992) and Teetes et al. (1995)Zimbabwe Manthe (1992) and Teetes et al. (1995) IS 12551C (SC 31) Ethiopia Caudatum HR Ax, Ab Botswana, Manthe (1992) and Teetes et al. (1995)Zimbabwe Manthe (1992) and Teetes et al. (1995) IS 12599C (SC 90) Congo Guinea HR Ax, Ab Botswana, Manthe (1992) and Teetes et al. (1995)Zimbabwe Manthe (1992) and Teetes et al. (1995) IS 12608C (SC E)Ethiopia Caudatum HR Ax, Ab Botswana, Manthe (1992) and Teetes et al. (1995)Zimbabwe Manthe (1992) and Teetes et al. (1995) IS 12609C (SC 109) Ethiopia Caudatum R Botswana, Manthe (1992) and Teetes et al. (1995)Zimbabwe Manthe (1992) and Teetes et al. (1995) IS 12610C (SC ) Ethiopia Caudatum R Botswana, Manthe (1992) and Teetes et al. (1995) Ax= antixenosis; Ab =antibiosis; HR =highly resistant; MR= moderately resistant; and R=resistant

13 Mapeo de gen resistente y marcadores moleculares Un gen dominante (RMES1) que confiere resistencia M. sacchari se ha encontrado en el sorgo variedad Henong 16 (HN16), localizado en el brazo corto del cromosoma 6. (Chang et al. 2006). Los marcadores más cercanos que flanquean el Locus RMES1 son Sb6m2650 y Sb6rj2776, que delimitado por una región cromosómica de aproximadamente 126 kb que contiene cinco genes predichos. RMES1 GEN: BRAZO CORTO DEL CROMOSOMA 6 Sb6m kb Sbmrj 2776 BTx623 x HN16 Susceptible x Resistente F 1 1R : 2R : 1s F 2 HERENCIA DE LA RESITENCIA MONOGÉNICA DOMINANTE

14 2015: SE OBSERVÓ HIBRIDOS CON RESISTENCIA AL PAS Híbrido resistente Híbrido susceptible SE EVALUARÁN VS. PAS EN 2016 PARA DIFUNDIR SU NIVEL DE RESISTENCIA EN 2017 DE LOS MEJORES PARA SU RECOMENDACIÓN

15 MEJORAMIENTO GÉNETICO INCORPORACIÓN DE DOS GENES RESISTENTES AL PAS

16 MEJOR ESTRATEGIA: MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS VARIEDAD RESISTENTE + CONTROL BIOLOGICO + USO RACIONAL DE INSECTICIDAS + PRACTICAS CULTURALES + CONTROL LEGAL

17 RECOMENDAR A PRODUCTORES Y EMPRESAS PARA PROTEGER A LOS HÍBRIDOS DEL PAS: TRATAR LA SEMILLA INSECTICIDA: PONCHO, Crusier para proteger 30 a 40 días.

18 CONCLUSIONES Un gen dominante (RMES1) que confiere resistencia M. sacchari se ha encontrado en el sorgo variedad Henong 16 (HN16), localizado en el brazo corto del cromosoma 6. (Changet al. 2006) que se puede aislar y usar para trasferir la resistencia a líneas susceptible. Se tienen actualmente cinco marcadores fueron renombrados como Sb6m1954, Sb6m2600, Sb6m3291, Sb6m4667 y Sb6m4892, respectivamente, se pueden usar para identificar los gen de resistencia. Es prioritario: 1. Conseguir las fuentes de resistencia reportadas internacionalmente; y 2.Hacer una evaluación del germoplasma (líneas y segregantes avanzados) al pulgón amarillo para detectar posibles fuentes de resistencia o tolerancia al PAS. 3. Evaluar los sorgos híbridos comerciales al PAS. GRACIAS POR SU ATENCIÓN

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