ENFERMEDADES DE LA VID.

Transcripción

1 Enfermedades de la vid en Uruguay ENFERMEDADES DE LA VID. Ing. Agr. Vivienne Gepp, MSc. Curso de Protección Vegetal Frutícola. Año 8. Excoriosis Peronospora Oidio Antracnosis Podredumbres de racimos: Botrytis otros Enfermedades de tronco Leaf roll Nepovirus Xiphinema index Podredumbres de racimos Agentes causales: HONGOS: Oomycetes y Zigomycetes: Plasmopara viticola, Rhizopus sp. Ascomycetes y Deuteromycetes: Guignardia bidwellii, Pseudopezicula tracheiphila,botrytis cinerea, Phomposis viticola, Greeneria uvicola, Coniella diplodiella, Colletotrichum sp., Macrophoma sp., Diplodia natalensis, Alternaria sp., Cladosporium herbarium, Helminthosporium sp., Aspergillus spp., Penicillium spp., Ascochyta sp. Fusarium moniliforme, Stemphylium botryosum, Monilia sp., Sclerotinia sclerotiorum, Hormiscium sp., Torula sp. LEVADURAS: Candida sp., Chaetomium elatum, Saccharomyces cerevisae BACTERIAS: Acetobacter sp. Géneros de hongos En restos florales y bayas: Botrytis, Aspergillus, Cladosporium, Alternaria, Penicillium, Rhizopus, Trichoderma, entre otros. heridas hongos varios Drosofila sp. bacterias y levaduras ácido acético Podredumbre ácida Botryotinia fuckeriana Botrytis cinerea 1

2 FP: Botryotinia fuckeriana FI: Botrytis cinerea FP: Botryotinia fuckeriana FI: Botrytis cinerea Ascomycete Severidad de podredumbres 6 9 Condiciones para la infección: heridas grosor de cutícula variedad (tipo de racimos, tipo y microporos de piel, composición química, fitoalexinas) temperatura humedad Temperatura (º C) Horas de HR > 9% ,5,5, Podredumbres en Tannat % podredumbre - 6 mar ,5 6,59 6,8 Podredumbre media por racimo Promedio % podredumbres por racimo Promedio % podredumbre por racimo / 8/ 6/3 Severidad de podredumbres / / 7/ 5/3 Severidad de podredumbres / 19/ 6/ 4/

3 Podredumbres en Tannat % humedad relativa /1 Podredumbre % por racimo Severidad media de podredumbres 1/ 19/ 6/ 4/ Humedad relativa - media decádica 6/1 / 9/ 16/ 3/ MANEJO DEL CULTIVO. evitar: humedad, heridas, inóculo importancia del inóculo? Control biológico? Trichoderma sp Resistencia a Botrytis Racimos ± compactos Susceptibilidad Fungicidas para Botrytis. Multisitios: captan, folpet Bencimidazoles, dietofencarb Dicarboximidas: procimidone, iprodione Anilopirimidinas: cyprodinil, pyrimetanil, mepanipyrim. Fenilpirrol: fluodioxonil Hidroxianilida: fenhexamid,6 dinitro anilina: fluazinam Imidazoles: procloraz Sulfamidas: diclofluanida, tolyfluanid Fuente: Ellison, Ash y McDonald Benzimidazoles Dicarboximidas acilalaninas IBEs Strobirulinas Cúpricos Dithiocarbamatos Azufrados Captan Riesgo del fungicida Resistencia a fungicidas AL- TO (3) ME- DIO 4 6 () BA- JO 1 3 (1) BAJO (1) MEDIO () ALTO (3) Venturia inaequalis Patógenos - suelo. Septoria - trigo Botrytis cinerea Sclerotium - tomate Alternaria - papa Penicillium spp. Riesgo de la enfermedad Phytophthora infestans % de aislamientos Resistencia a fungicidas Carbendazim - Botrytis de vid Iprodione - Botrytis de vid Concentración mínima inhibitoria Co ncentració n mí nima inhibito ria 3

4 Resistencia a fungicidas VIRUS DE LA VID. % de aislamientos Pyrimethanil - Botrytis de vid,5 1 8 Concentración mínima inhibitoria % de aislamientos Boscalid + Pyraclostobin - Botrytis de vid 5 agentes Los más importantes: Closterovirus - Enrulamiento (Leaf roll) Nepovirus - Degeneración infecciosa (Fan leaf, Court noue) Concentración mínima inhibitoria LEAF ROLL o ENRULAMIENTO. Grapevine leaf roll associated viruses: GLRaVI GLRaV II GLRaV III GLRaVIV * GLRaVV * GLRaVVI GLRaVVII GLRaV VIII * GLRaV III - mundial, Uruguay INCIDENCIAS DEL ENRULAMIENTO Y ENROJECIMIENTO FOLIAR SOBRE EL COMPORTAMIENTO DE VID cv. TANNAT (HARRIAGUE) Canelones Montevideo Montevideo Rendimiento/ planta normal 7,1 4,7 11,8 enferma 3,8 ** 3,5 * 4,6 ** Peso racimo (g) normal enferma 17 ** 146 * 7 ** Spínola, I Investigaciones Agronómicas N 3:1-14. INCIDENCIAS DEL ENRULAMIENTO Y ENROJECIMIENTO FOLIAR SOBRE EL COMPORTAMIENTO DE VID cv. TANNAT (HARRIAGUE) Grado alcohólico Kg grado/planta INIALB 1,6 9,4 117,8 45,9 INIALB 8,7 7,9 99,4 34,7 Joanicó 1 8,9 7,9 ** 6, 9,8 ** Joanicó 7,9 6,7 ** 36,8 3,5 ** INIA LB 1, 9, ** 85,3 39, ** Mdeo 1, 1,1 NS 1, 45,8 ** Spínola, I Investigaciones Agronómicas N 3:1-14. LEAF ROLL o ENRULAMIENTO. No hay cvs totalmente resistentes Pie americano tolerante se mantiene latente 4

5 LEAF ROLL o ENRULAMIENTO. TRANSMISIÓN: prop. vegetativa chanchito blanco Planococcus ficus, Pseudococcus longispinus ESTUDIOS DE TRANSMISIÓN DE GLRaV 3 POR CHANCHITO BLANCO EN URUGUAY Planococcus ficus plaga en vid. Maman y Peyrou (1997) - transmisión en laboratorio. Maeso et. al (1999) y () estudios de transmisión: confirmó la transmisión en Uruguay. en laboratorio: 1 insectos pueden transmitir, difícil adquisición (por lo menos 7 días y % bajo), se transmite rápido (-3 minutos). Fuente: Maeso,. Degeneración progresiva (Nepovirus europeos): Grapevine fan leaf (GFLV) Arabis mosaic Strawberry latent ringspot Tomato black ring etc. NEPOVIRUS Decaimiento (Nepovirus americanos): Peach rosette mosaic Tomato ringspot Tobacco ringspot NEPOVIRUS Síntomas: Deformación, Reducción de lámina foliar, Coloraciones anormales, Acortamiento e irregularidad de entrenudos, nudos dobles, fasciaciones, Reducción número y tamaño de racimos, corrimiento ( millerandage ). Menor calidad y cantidad de rendimiento. Menor longevidad, prendimiento, y enraizado. NEPOVIRUS Vides americanas y sus híbridos: muy sensibles a los nepovirus europeos y por esa vía se perjudica a la variedad. FAN LEAF = COURT NOUE Grapevine fan leaf nepovirus (GFLV) Vides europeas y sus híbridos: más sensibles a los nepovirus americanos. 5

6 Grapevine fan leaf nepovirus Transmisión: Xiphinema index España: en 14% de los viñedos y en 5% de los con GFLV. Italia: en % de los viñedos. Presente en Uruguay focalizado 1,3 a 1,5 m/año restos de raíces Resistencia a X. index en Vitis rotundifolia SUSCEPTIBILIDAD VARIETAL Susceptibles todas las V. vinifera y muy susceptibles V. rupestris. V. labrusca se infecta pero muestra pocos síntomas. Resistencia varietal: Muscadinia rotundifolia para cruzamientos. Resistencia a transmisión y alimentación de nematodos. Manejo de virosis Control de transmisión: Material de propagación Vectores: presencia control de nematodos control de chanchito Manejo de virosis Métodos de saneamiento: Termoterapia. Cultivo in vitro. Termoterapia + cultivo in vitro. Siempre: seguidos de comprobación de sanidad: indicadoras y ELISA. ABIÓTICAS. Daño de herbicida 6

7 DAÑO DE HELADA BIBLIOGRAFÍA Arias Giralda, A. et al Los parásitos de la vid; estrategias de protección razonada. M.A.P. y A. 34 p Pearson, R.C.; Goheen, A.C Compendium of grapevine diseases. APS Press, St. Paul. 93 p Flaherty, D.L. et al Grape pest management. University of California Publication Nº p Internet IPM Resources on Grapes and Current 7