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Taller Escultura 1 1. DATOS INFORMATIVOS: ARTES VISUALES SEGUNDO MATERIA O MÓDULO: CÓDIGO: CARRERA: NIVEL: No. CRÉDITOS: 3 CRÉDITOS TEORÍA:

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MATERIA: BIOLOGÍA MOLECULAR

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2. DESCRIPCIÓN DEL CURSO

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PONTIFICIA UNIVERSIDAD CATOLICA DEL ECUADOR ESCUELA DE BIOANALISIS CÓDIGO: CARRERA: BIOQUÍMICA CLÍNICA, MICROBIOLOGÍA, HISTOCITOLOGÍA

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Transcripción:

1. DATOS INFORMATIVOS: MATERIA O MÓDULO: Biología Molecular II T-L CÓDIGO: 15655 CARRERA: NIVEL: Bioquímica Clínica, Microbiología, Histocitología Quinto No. CRÉDITOS: 6 CRÉDITOS TEORÍA: 4 CRÉDITOS PRÁCTICA: 2 SEMESTRE / AÑO ACADÉMICO: I 2011-2012 PROFESOR: Nombre: Grado académico o título profesional: Breve indicación de la línea de actividad académica: Indicación de horario de atención a estudiantes: Correo electrónico: Santiago Escalante Vanoni Doctor en medicina Docencia en Biología Molecular Previa cita druidaec@gmail.com Teléfono: 2 509 625 2. DESCRIPCIÓN DE LA MATERIA: Con el devenir de los años y sobretodo luego de la invención de técnicas ahora muy expandidas de biología molecular (PCR y todas sus variantes), ha cobrado gran importancia el conocimiento del funcionamiento de las células y de todos los organismos vivos a nivel molecular y es así como han surgido herramientas que ofreciendo mayor sensibilidad, mayor rapidez, un diagnóstico más preciso se han ido asegurando un espacio indiscutible dentro de los laboratorios de diagnóstico y de investigación. Por ello es vital que el estudiante adquiera conocimientos sobre las técnicas más importantes de la biología molecular sus fundamentos y aplicaciones en los diferentes campos del diagnóstico, de la investigación aplicada y fundamental. 3. OBJETIVO GENERAL: Conocer las diferentes técnicas de biología molecular disponibles en la actualidad, los campos de aplicación, las ventajas y desventajas frente a las técnicas clásicas de diagnóstico con la finalidad de aplicar los conocimientos y tener la posibilidad de convertirse en un miembro importante dentro del equipo de trabajo a nivel de los diferentes laboratorios de biología molecular que están siendo desarrollados en el país. 1

4. OBJETIVOS ESPECÍFICOS: a. Adquirir los conocimientos básicos para el trabajo en el laboratorio dentro del ámbito de la Biología Molecular. b. Familiarizarse con algunas de las tecnologías actuales con mayor relevancia disponibles en los laboratorios de Biología Molecular. c. A través de presentaciones orales de artículos científicos, fomentar la capacidad de exponer frente a un auditorio de una manera clara y concisa. d. Fomentar el espíritu investigativo en el estudiante abriendo el horizonte de posibilidades hacia nuevos campos de desarrollo (biología molecular) 5. CONTENIDOS: a. Enzimas de Restricción b. Temperaturas de fusión e hibridación c. Extracción y purificación de ácidos nucleicos d. Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) e. Nested PCR f. PCR en tiempo real g. Electroforesis en Campos Pulsados (PFGE) h. Interpretación de los pulsotipos (PFGE) i. Polimorfismo de los Fragmentos de Restricción (RFLP) j. Sondas (frías y calientes) k. Transferencia a membranas l. Southern, Western y Northern Blot m. Secuenciación 2

CRONOGRAMA Actividad Fecha Prueba Semanal Prueba Parcial Presentación Examen Final Lunes 15 de agosto Viernes 19 de agosto Lunes 22 de agosto Viernes 26 de agosto Lunes 29 de agosto Viernes 2 de septiembre Lunes 5 de septiembre Viernes 9 de septiembre Lunes 12 de septiembre Viernes 16 de septiembre Lunes 19 de septiembre Viernes 23 de septiembre Lunes 26 de septiembre Viernes 30 de septiembre Lunes 3 de octubre Viernes 7 de octubre Lunes 10 de octubre Viernes 14 de octubre Lunes 17 de octubre Viernes 21 de octubre Lunes 24 de octubre Viernes 28 de octubre Lunes 31 de octubre Viernes 4 de noviembre Lunes 7 de noviembre Viernes 11 de noviembre Lunes 14 de noviembre Viernes 18 de noviembre Lunes 21 de noviembre Viernes 25 de noviembre Lunes 28 de noviembre Viernes 2 de diciembre Lunes 5 de diciembre Viernes 9 de diciembre Lunes12 de diciembre 6. METODOLOGÍA, RECURSOS: Presentaciones magistrales, discusión de artículos científicos seleccionados, presentaciones a cargo de los estudiantes de de actualidad. 3

7. EVALUACIÓN: Se tomará una prueba semanal que comprenderá la materia dictada durante dicha semana. Un total de 10 durante todo el semestre, con una puntuación de 0.5 y un puntaje total de 5 sobre la nota final. Dos pruebas parciales durante el semestre, una al final de la primera mitad y la segunda al término de las clases teóricas. Tendrán una puntuación de 10 cada una con un puntaje total de 20 sobre la nota final. Un examen final que incluirá toda la materia del semestre, la puntuación será de 20 sobre la nota final. Dos presentaciones orales realizadas por los estudiantes que tendrán una puntuación de 2.5 cada una con un total de 5 sobre la nota final. CRONOGRAMA DE EVALUACIONES: Primera evaluación del semestre sobre 10 puntos: lunes 10 de octubre Segunda evaluación del semestre sobre 10 puntos: lunes 5 de diciembre Examen final de la materia sobre 20 puntos: lunes 12 de diciembre FECHA DE ENTREGA DE CALIFICACIONES EN SECRETARÍA: 8. BIBLIOGRAFÍA: Entrega de la primera nota sobre 10: 17 de octubre Entrega de la segunda nota sobre 10: 5 de diciembre Entrega de la tercera nota sobre 10: 9 de diciembre Textos de Referencia: - Bioquímica. 5 ed. Strayer, Lubert., Editorial Reverté. 2004. Textos Recomendados: - Biología Molecular y Celular, Lodish 5ta edición, 2005 - Biología Celular y Molecular, Junqueira. 6 ed. 1997. - Biología Celular y Molecular, Karp, G., 1996. Páginas web: - www.asmusa.org - www.molbiolcell.org Aprobado: Por el Consejo de Escuela f) Director de Escuela fecha: 9-JUNIO-2011 4

Asignatura: Biología Molecular II T-L Organización Docente Semanal SEMANA (1-17) N de horas de clases teóricas ACTIVIDADES DE INTERACCIÓN DOCENTE - ESTUDIANTES (HORAS PRESENCIALES) N de horas de clases prácticas, laboratorios, talleres N de horas de tutorías especializadas TRABAJO AUTÓNOMO DEL ESTUDIANTE (HORAS NO PRESENCIALES) ACTIVIDADES (Descripción) N de horas EVALUACIONES TEMAS A TRATAR (N del tema, unidad, o capítulo descritos en Contenidos) 1 semana 4 Enzimas de restricción 2 semana 4 Evaluaciones cortas 3 semana 4 Evaluaciones cortas 4 semana 4 Evaluaciones cortas Temperaturas de fusión e hibridación Extracción y purificación de ácidos nucleicos Reacción en cadena de la polimerasa 5 semana 4 Preparación de 4 Evaluaciones cortas Nested PCR. 6 semana 4 Preparación de 4 Evaluaciones cortas PCR en tiempo real 7 semana 4 Preparación de 4 8 semana 4 9 semana 2 Evaluación parcial del semestre 10 semana 4 Evaluaciones cortas 11 semana 4 Evaluaciones cortas 12 semana 4 Evaluaciones cortas 13 semana 4 Preparación de 4 Evaluaciones cortas Electroforesis en campos pulsados Interpretación de los pulsotipos Polimorfismo de los fragmentos de restricción Sondas (frías y calientes). Transferencia a membranas 5

14 semana 4 Preparación de 4 Evaluaciones cortas Secuenciación 15 semana 4 Preparación de 4 16 semana 4 17 semana 2 18 semana EXÁMENES Evaluación parcial del semestre 6