Manual Toma de Muestras. Pediatría. Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41) Exámenes Genéticos por PCR
|
|
- Belén Luna Cuenca
- hace 5 años
- Vistas:
Transcripción
1 Manual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Pediatría Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)
2 Muestras Gastrointestinal 1. Introducción Las infecciones gastrointestinales agudas presentan una incidencia muy variable y pueden ser provocadas por una gran cantidad de patógenos como bacterias, virus o protozoos. Clínicamente se presentan como trastornos funcionales leves, poco molestos y autolimitados, o pueden convertirse en un proceso grave, con importantes cuadros de deshidratación y desnutrición y severos desequilibrios hidroelectrolíticos que pueden poner en peligro la vida del enfermo. En los países subdesarrollados, la gastroenteritis aguda asociada a diarrea es una causa importante de morbilidad en todas las edades y de mortalidad en lactantes y niños pequeños. 2. Materia fecal a) Heces En el caso de pacientes pediátricos, si no es posible recoger muestra de materia fecal se puede tomar la muestra a través de frotis rectal. Recolectar en lo posible más de 2 cc o gramos de materia fecal. Guantes. Frasco plástico limpio, de boca ancha. b) Tórula rectal Recomendado en pacientes pediátricos y adultos incapaces de recolectar muestra de materia fecal. Cuidadosamente introducir la tórula 2 cm en el esfínter anal. Rotar suavemente la tórula para obtener la muestra. Guantes no estériles. Tórulas. Tubo estéril con tapa rosca o tapón de caucho. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
3 3. Muestras digestivas altas a) Aspirado gástrico b) Biopsia gástrica/antral obtenida por endoscopia La sonda se debe fijar y marcar al nivel que se introdujo, con el fin de Se usa para la detección de Helicobacter pylori, agente causal en casos evaluar si se movilizó durante la noche. de úlceras duodenales o gástricas. Dejar cerrada durante la noche. Es fundamental obtener varias muestras tanto de la base como de los Recolectar la muestra de la mañana, luego de 6 horas de ayuno. cuatro cuadrantes del margen de la úlcera, sin olvidar la biopsia de la Tomar la muestra con el paciente en reposo. mucosa antral. Pasar una sonda nasogástrica la noche anterior y explicar la finalidad de la Este procedimiento debe ser realizado por el médico. misma. Seccionar la muestra en fresco para enviar al laboratorio clínico. En la mañana y con el paciente en reposo, aspirar de 5 a 10 ml de contenido gástrico con una jeringa estéril. Depositar la muestra en recipiente estéril. Posteriormente instilar de 25 a 50 ml de agua destilada y aspirar 20 ml de contenido gástrico. Agregar al recipiente estéril con la muestra inicial y tapar herméticamente. Jeringa de 10 ml. Guantes no estériles. Recipiente de boca ancha estéril de tapa rosca con capacidad para 50 ml. Sonda nasogástrica. Agua destilada. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. Fibrogastroscopio y material complementario. Tubos con suero fisiológico (1 ml) para pequeñas muestras. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
4 4. Muestras digestivas bajas a) Biopsia rectal y sigmoidoscopia La biopsia rectal es normalmente empleada para la detección de Entamoeba histolytica, el HSV y Balantidium coli. Las muestras tomadas por sigmoidoscopia se usan en la detección de E.histolytica, micobacterias y colitis seudomembranosa por C. difficile y S. aureus. Biopsia rectal: emplear pinzas para tomar muestras de las lesiones o de la mucosa rectal posterior a unos 7-10 cm del esfínter anal. Sigmoidoscopia: toma con pinzas o con pipeta. 5. Bibliografía Carlberg, D. Cleanroom microbiology for the non microbiologist. Interpharm Press. INC. Buffalo Grove, Illinois CercenadoE, Cantón R. Procedimientos en microbiología clínica. SEIMC. España, Collins CH, Lyne PM, Grange JM. Microbiological methods. 7ma edition. Oxford Forman MS, Valsamakis A, Specimen collection, transport, and processing: Virology. En Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH, editors. Manual of clinical microbiology. 8th ed. Washington: ASM Press; Guerrero Gómez C; Sánchez Carrillo C. Procedimientos en microbiología clínica. Recogida, transporte y procesamientos general de las muestras en el laboratorio de microbiología, Sigmoidoscopio, rectoscopio y material complementario. Pipetas. Tubos de tapa rosca estériles con o sin solución salina. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. Miller JM, Holmes HT. General principles in specimen collection, transport and storage. En Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH, editors. Manual of clinical microbiology. 8th ed. Washington: ASM Press; Organización Mundial de la Salud. Guía para transporte seguro de sustancias infecciosas y especímenes. Ginebra (Suiza): WHO/EM- C/97.3; Thomson BR (JR.), and Miller M. Specimen collection, transport, and processing: Bacteriology. En Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH, editors. Manual of clinical microbiology. 8th ed. Washington: ASM Press; 2003.
5 Muestras Genitourinarioas 1. Introducción La gravedad de una enfermedad urinaria depende de la zona del aparato urinario que se infecte. Las infecciones en la zona baja, como vejiga y uretra, son comunes y no dejan secuelas, aunque pueden ser muy molestas. Las infecciones que afectan al tracto superior, como los riñones y uréteres, presentan síntomas más graves como fiebre y vómitos. Las bacterias presentes en los riñones pueden diseminarse por la sangre, causando una infección potencialmente mental. 2. Genitales femeninos a) Secreciones cervicales b) Secreciones vaginales c) Secreciones uretrales La paciente debe haber suspendido el tratamiento antibiótico, aplicación de óvulos o duchas vaginales 3 días antes de la toma de la muestra. Evitar tener relaciones sexuales 3 días antes de la toma de la muestra y no realizar la toma durante el sangrado menstrual. Este procedimiento está contraindicado en pacientes embarazadas. Utilizar espéculo estéril o desechable. No usar lubricantes durante el procedimiento. La paciente no debe aplicar óvulos o duchas vaginales 24 horas antes de la toma de la muestra. Verificar que se haya realizado una limpieza adecuada de los genitales externos previamente, para eliminar secreciones contaminantes. Verificar que se haya realizado una limpieza adecuada de los genitales externos previamente, para eliminar secreciones contaminantes. La muestra se debe tomar al menos una hora después de que el paciente haya orinado.
6 a) Secreciones cervicales Con la paciente en posición ginecológica introducir un espéculo. Con un primera torula estéril remover moco y secreciones del orificio de entrada del cuello cervical, y desecharlo. Con una nueva torula estéril tome cuidadosamente la muestra del canal endocervical y colóquelo en tubo estéril con tapa rosca o tapón de caucho. Guantes no estériles. Tórula estéril. Tubo estéril con tapa rosca o tapón de caucho. b) Secreciones vaginales c) Secreciones uretrales Con la paciente en posición ginecológica introducir un espéculo, recoger la muestra, bajo visión directa, con una tórula seca. Tomar la muestra en la zona de mayor exudado o del fondo del saco vaginal, realizar suaves movimientos de rotación. Colóquelo en tubo estéril con tapa rosca o tapón de caucho. Tórulas estériles. Tubo estéril. Solución salina. Inserte una tórula estéril pequeña 1 a 2 cm dentro de la uretra, rótela y déjela introducida al menos por 2 segundos para facilitar la absorción. Equipo para higiene externa (jabón antiséptico, gasas, jarra con agua). Tórulas uretrales finas estériles. Tubo estéril. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
7 3. Genitales masculinos a) Secreciones uretrales b) Secreción prostática Verificar que se haya realizado una limpieza adecuada de los genitales externos previamente, para eliminar secreciones contaminantes. La muestra se debe tomar al menos una hora después de que el paciente haya orinado. Realice masaje prostático para tomar la muestra; si se observa la salida de material por la uretra, recoléctelo en un tubo seco estéril. En caso de no obtener drenaje con el masaje uretral, realice lavado en el área periuretral con antiséptico y enjuague con agua. Inserte una tórula estéril pequeña 2 a 4 cm dentro de la uretra, rótela y déjela introducido al menos por 2 segundos para facilitar la absorción. Verificar que el paciente haya evacuado la vejiga. Realice la limpieza del meato uretral con agua y jabón. Realice masaje prostático a través del recto y recolecte el fluido expulsado a través de la uretra en un tubo estéril o recolecte más de un mililitro. Equipo para higiene externa (jabón antiséptico, gasas, jarra con agua). Tórulas estériles. Tubo estéril. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. Guantes no estériles. Tubo estéril. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
8 c) Lesiones genitales d) Semen Realice limpieza de las lesiones con solución salina estéril antes de tomar la muestra. Los virus aislados con mayor frecuencia de lesiones genitales son HSV-1 y HSV-2, CMV y virus de papiloma humano. Con una hoja de bisturí remueva la superficie de la lesión. Mientras presiona firmemente la base de la lesión, permita que el trasudado se acumule y con la tórula estéril recolecte la muestra y colóquela en tubo estéril. Guantes no estériles. Torula estéril. Tubo estéril. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. Lavarse cuidadosamente las manos con agua y jabón. Limpiar la zona genital. Recoger la muestra obtenida por masturbación en recipiente estéril. Frasco estéril. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
9 4. Orina a) Orina de micción espontánea b) Orina obtenida a través de cateterismo transuretral Realizar higiene de genitales: en mujeres, es necesario lavar el vestíbulo Realizar higiene de genitales con guantes no estériles. Retirar y vaginal y la entrada de la uretra con agua jabonosa, enjuagar con desechar los guantes; realizar lavado de manos clínico, usar guantes abundante agua. Secar y separar los labios e iniciar la micción. En el estériles e insertar el catéter urinario asépticamente. hombre se debe hacer retracción del prepucio y lavar el meato urinario La confiabilidad diagnóstica es cercana a una sensibilidad de 95% y con agua jabonosa, enjuagar con abundante agua y secar. Con el especificidad del 99%, constituyendo una buena alternativa en niños prepucio retraído iniciar la recolección de la orina. sin control de esfínteres. El riesgo de introducir la infección durante el En pacientes ambulatorios es ideal recoger la muestra de la primera cateterismo o de otras complicaciones es bajo si el personal entrenado micción del día. emplea la técnica correcta. Instruir al paciente para que inicie la micción, desechar la primera parte de la orina. Recoger la parte media de la orina en el frasco colector sin detener el flujo urinario (5-10 ml) Terminar de eliminar en el sanitario o pato. Tapar el frasco sin contaminar la muestra. Frasco recolector estéril de boca ancha de tapa rosca. Equipo de higiene: jabón, gasas. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. Eliminar la primera porción de orina obtenida, colectar la siguiente porción de orina (5-10 ml) en el frasco estéril, retirar la sonda de nélaton y tapar el frasco. Frasco recolector estéril de boca ancha de tapa rosca. Equipo de higiene: jabón, gasas. Sonda de Nelaton (No adultos, No. 6-8 en niños). Guantes estériles y no estériles. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
10 c) Orina obtenida a través de sonda vesical permanente d) Orina obtenida en pacientes pediátricos Pinzar la sonda durante 30 a 60 minutos antes de obtener la muestra. Realizar desinfección del puerto en Y de la sonda de foley con alcohol al 70%. Verificar el retiro de la pinza de la sonda después de obtener la muestra. No utilizar orina que ha estado depositada por varias horas en bolsas o frascos colectores. Los pacientes con catéter vesical por largo tiempo, siempre tienen microorganismos en la vejiga. No se recomienda recolectar orina de estos pacientes, a menos que se sospeche que el foco infeccioso es urinario. Puncionar la sonda con jeringa estéril con aguja de calibre pequeño, aspirar 5 a 10 ml de orina, retirar jeringa. Envasar en el frasco estéril, manteniendo la técnica aséptica. Bolsa plástica recolectora estéril. Equipo de higiene: jabón, gasas. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. Pacientes con control de esfínter: realizar higiene de genitales con guantes no estériles. Secar adecuadamente el área genital. El paciente elimina en un recipiente limpio, de este recipiente se reenvasa en un frasco limpio de tapa rosca. Pacientes sin control de esfínter: realizar higiene de genitales con guantes no estériles. Secar adecuadamente el área genital. Si el niño no tiene control de esfínteres y no se puede realizar punción suprapúbica debe tomarse la muestra por sonda vesical. Otra método es colocar bolsa recolectora, si la micción no se da en 20 minutos se deberá repetir el aseo y colocar nueva bolsa. La bolsa recolectora es el método menos traumático de obtener la muestra de orina, ofrece más alto riesgo de contaminación comparado con la punción suprapúbica y el cateterismo transuretral. Colocar bolsa plástica adherente, verificando ausencia de fugas. Estar atento cuando el niño elimine, para retirar pronto la bolsa y evitar derramamiento o contaminación de la muestra. Son suficientes 5-10 ml de orina. Guantes estériles. Gasas estériles. Jeringa estéril. Frasco estéril de boca ancha. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
11 4. Orina e) Orina obtenida a través de sonda de urostomía y nefrostomía f) Orina obtenida por punción suprapúbica Mantener técnica aséptica para la manipulación de este tipo de catéteres. No se recomienda puncionar ni colapsar el trayecto del catéter. Realizar limpieza del trayecto del sitio de unión entre el catéter, la llave de tres vías y el sistema colector. Insertar jeringa a la llave de tres vías y extraer 5-10 ml de orina. Envasar en el frasco colector estéril. Volver a comunicar el trayecto entre el catéter y el sistema colector. Este procedimiento debe realizarlo personal médico entrenado, previa preparación de la piel con técnica aséptica. Las complicaciones si se sigue una técnica adecuada son muy raras. En lactantes con micciones frecuentes la punción suprapúbica puede fallar si al realizarla hay escasa orina en la vejiga; en estos casos se recomienda tomar la muestra por cateterismo vesical transuretral. Puncionar con jeringa estéril sobre la línea media en tercio medio entre el ombligo y la sínfisis púbica. Aspirar 5 a 10 ml de orina. Envasar en frasco estéril o llevar directamente en la jeringa. Guantes estériles. Gasas estériles. Jeringa estéril. Frasco estéril de boca ancha. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. Frasco recolector estéril de boca ancha de tapa rosca. Equipo de preparación de la piel. Jeringa estéril. Guantes estériles. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
12 5. Bibliografía Carlberg, D. Cleanroom microbiology for the non microbiologist. Interpharm Press. INC. Buffalo Grove, Illinois CercenadoE, Cantón R. Procedimientos en microbiología clínica. SEIMC. España, Collins CH, Lyne PM, Grange JM. Microbiological methods. 7ma edition. Oxford Forman MS, Valsamakis A, Specimen collection, transport, and processing: Virology. En Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH, editors. Manual of clinical microbiology. 8th ed. Washington: ASM Press; Guerrero Gómez C; Sánchez Carrillo C. Procedimientos en microbiología clínica. Recogida, transporte y procesamientos general de las muestras en el laboratorio de microbiología, Miller JM, Holmes HT. General principles in specimen collection, transport and storage. En Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH, editors. Manual of clinical microbiology. 8th ed. Washington: ASM Press; Organización Mundial de la Salud. Guía para transporte seguro de sustancias infecciosas y especímenes. Ginebra (Suiza): WHO/EM- C/97.3; Thomson BR (JR.), and Miller M. Specimen collection, transport, and processing: Bacteriology. En Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH, editors. Manual of clinical microbiology. 8th ed. Washington: ASM Press; 2003.
13 Muestras Herpesvirus 1. Introducción Los herpesvirus son miembros de la familia Herpesviridae, capaces de causar enfermedades en múltiples animales, incluido el hombre. Se encuentran ampliamente diseminados en el mundo, pudiendo establecer latencia en las células de los individuos infectados. Al estar latentes no se detectan partículas virales, pero su ADN se encuentra en el núcleo celular. La reactivación de los virus latentes se ha relacionado con ciertas patologías. En ciertas condiciones puede reactivarse, replicándose y formando nuevos virus, a menudo con resultado de muerte celular. 2. Herpesvirus humano 1 y herpesvirus humano 2 a) Sangre obtenida a través de punción periférica Realizar lavado de manos quirúrgico. Mantener técnica aséptica durante todo el procedimiento. Utilizar campo estéril para evitar tener contacto con áreas circundantes que ofrezca el riesgo de contaminación. Colocar mascarilla al paciente. Realizar antisepsia de la zona a puncionar; no palpe la vena sin guantes estériles una vez preparada la piel. Utilizar otros guantes estériles para cada punción. POR ÉSTE MÉTODO NO PUEDEN SER PROCESADAS MUESTRAS CON HEPARINA. En pacientes heparinizados, la toma de muestra debe realizarse en el momento más alejado de la administración del medicamento. La toma deberá hacerse en un lugar perfectamente iluminado y con el paciente cómodamente sentado. Localizar una vena adecuada en la cara anterior del codo y colocar el torniquete en la parte media del brazo. Desinfectar el área con un algodón humedecido con alcohol al 70% e introducir la aguja con el bisel hacia arriba. Si la sangre no fluye espontáneamente y se está utilizando una jeringa, jalar el émbolo y aspirar con suavidad; si se está empleando equipo al vacío presionar el tubo de ensaye hacia arriba. Al empezar a fluir la sangre retirar el torniquete. Una vez que se haya obtenido entre 5-8 ml de sangre, retirar la aguja y colocar una tórula con alcohol sobre el sitio de punción ejerciendo presión para detener la hemorragia.
14 a) Sangre obtenida a través de punción periférica En recién nacidos y lactantes, donde no es fácil obtener tanta cantidad de muestra, debe enviarse como mínimo 1 ml de sangre completa. Si la toma se hizo con jeringa, retirar la aguja y verter la sangre a un tubo estéril, dejándola resbalar lentamente por la pared para evitar hemólisis. Tapar el tubo cuidadosamente. Si la muestra necesaria es sangre total utilizar un tubo de hematología con EDTA (venoject ó vacutainer TAPA MORADA). Bata y campos estériles. Gorro y mascarilla con protección ocular. Guantes estériles. Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y guantes estériles). Tubo de hematología con EDTA. Jeringas estériles. La muestra debe ser analizada dentro de las 24 hrs. siguientes, en caso contrario puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta una semana. Se recomienda no congelar. b) Líquido pleural, pericárdico, peritoneal,, culdocentesis, amniótico La recolección de muestras de este origen está reservada estrictamente al médico especialista. No se recomienda usar tórulas, la muestra debe ser obtenida por aspirado o drenaje quirúrgico. Los líquidos susceptibles de formar coágulo deben ser colectados en tubos con anticoagulante EDTA (ácido etilendiaminotetracético). En el líquido amniótico los virus que causan infección en el útero son CMV, Parvovirus B-19 y VIH, menos frecuentemente observados virus herpes simplex (HSV) y virus Zoster (VZV). Realice preparación de la piel con técnica aséptica. Puncionar con jeringa y aguja estéril, y recoger entre 1 y 5 ml de líquido. Recolectar en frasco seco.
15 b) Líquido pleural, pericárdico, peritoneal,, culdocentesis, amniótico Equipo de preparación de piel y anestesia local. Jeringa y aguja estéril. Tubo estéril seco. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas y refrigerada hasta por 2 semanas. En el caso del líquido amniótico puede almacenarse a temperatura ambiente por 8 horas y refrigerado a 4ºC hasta por 1 semana. c) Líquido cefalorraquídeo (LCR) Enviar con resumen de historia clínica. Procedimiento realizado por personal médico. Preparación aséptica de la piel: el paciente debe estar recostado sobre un costado con el torso doblado hacia delante. Bajo anestesia local se introduce una aguja larga en el conducto espinal; no necesita ser aspirado, fluye por presión en individuos sanos. Obtener mínimo 3 ml de LCR en tubo estéril tapa rosca. Equipo de asepsia: mascarilla, guantes y campo estériles. Equipo de punción lumbar. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 8 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por 1 semana.
16 d) Secreción de área nasofaríngea La persona que obtiene la muestra debe usar barreras de protección (mascarilla, protección ocular). No hacer gárgaras ni limpieza con ninguna solución bucofaríngea. Tomar la muestra preferiblemente en ayunas. Colocar al paciente bajo una buena fuente de luz. Introducir la tórula flexible hasta la nasofaringe posterior evitando trauma. Rotar la tórula por 10 a 15 segundos para permitir la impregnación del hisopo y retirar lentamente. Barreras de protección (mascarilla y protección ocular). Guantes no estériles. Tórulas estériles flexibles. Tubo estéril. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. e) Aspirado nasofaringe La persona que obtiene la muestra debe usar barreras de protección (mascarilla, protección ocular). No hacer gárgaras ni limpieza con ninguna solución bucofaríngea. Tomar la muestra preferiblemente en ayunas.
17 e) Aspirado nasofaringe Es colectado mediante el paso de una sonda nelaton de un calibre apropiado dentro de la nasofaringe. Aspirar luego el material con una jeringa estéril u otro mecanismo de succión y colocarlo en tubo estéril seco. En caso de no poder recolectar la muestra en la jeringa, envíe el extremo distal de la sonda con el material aspirado en el tubo estéril seco. Barreras de protección (mascarilla y protección ocular). Guantes no estériles. Tubo estéril seco o medio de transporte para virus. Sonda nelaton. Jeringa estéril. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. f) Secreción de la faringe No contaminar la tórula con secreción de cavidad oral o dientes. El hisopado de garganta está contraindicado en pacientes con diagnóstico de epiglotitis. No hacer gárgaras ni limpieza con ninguna solución bucofaríngea. Colocar al paciente bajo una buena fuente de luz. Con un bajalenguas, presionar la lengua hacia abajo para visualizar los pilares de la faringe y del área tonsilar para localizar el área de inflamación y exudado. Rotar la tórula estéril sobre el área.
18 f) Secreción de la faringe Guantes. Tórulas estériles. temperatura ambiente durante 48 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. g) Esputo por expectoración espontánea El esputo no es la muestra ideal para el diagnóstico de neumonía; se recomienda preferiblemente el lavado broncoalveolar. Recolectar la muestra en la mañana, en ayunas preferiblemente. Instruir al paciente para realizar cepillado de dientes y lavado de la lengua sólo con agua para remover el exceso de flora oral y retirar prótesis dental en pacientes de edad. Para pacientes pediátricos incapaces de producir un esputo, la terapeuta respiratoria debe obtener la muestra a través de succión. En pacientes ambulatorios sintomáticos respiratorios con sospecha de tuberculosis, la primera muestra se toma el día de la consulta médica y las otras dos al día siguiente, cumpliendo las recomendaciones descritas para paciente hospitalizado. Instruir al paciente para que tosa con fuerza y profundamente, con el fin de obtener una muestra que provenga del tracto respiratorio inferior, libre de saliva contenida en la cavidad oral, la cual debe expectorar directamente en un recipiente estéril de boca ancha de tapa rosca. Frasco estéril de boca ancha, de 5 cm de diámetro, de tapa rosca, con capacidad de 30 a 50 ml, de material fácil de rotular. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas.
19 h) Esputo inducido Instruir al paciente para realizar cepillado de dientes y lavado de lengua solo con agua. Realizar nebulización con solución salina normal. Para pacientes pediátricos incapaces de producir un esputo, la terapeuta respiratoria debe obtener la muestra a través de succión. Instruir al paciente para que tosa con fuerza y profundamente, con el fin de obtener una muestra que provenga del tracto respiratorio inferior, libre de saliva contenida en la cavidad oral, la cual debe expectorar directamente en un recipiente estéril de boca ancha de tapa rosca. Frasco estéril de boca ancha de tapa rosca de 5 cm de diámetro, con una capacidad de 30 a 50 ml y material fácil de rotular. Nebulizador. Solución salina normal. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. i) Secreción traqueal Realice el procedimiento con técnica aséptica. De acuerdo con las características de las secreciones, irrigar con solución salina normal previo a realizar el procedimiento.
20 i) Secreción traqueal Introducir la sonda sin hacer succión a través del tubo endotraqueal o cánula de traquestomía, hasta ubicarla en el espacio traqueal. Ocluya el orificio distal de la sonda y comience a succionar, retire la sonda lentamente mientras la va limpiando externamente con una gasa estéril. Tenga precaución de suspender la succión, retirando la oclusión de la sonda para que se conserve la muestra obtenida en el trayecto de la misma. Coloque la muestra obtenida en frasco estéril cortando el segmento distal de la sonda, si no es posible el depósito de la muestra sola, para lo cual retira la presión en el orificio de la sonda lo que permitirá la expulsión de la muestra en el recipiente. Guantes estériles. Mascarilla con protección ocular. Sonda de nelaton. Hoja de bisturí. Solución salina normal. Gasas estériles. Frasco de boca ancha estéril o trampa recolectora. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. j) Lavado o cepillado broncoalveolar El paciente debe estar en ayunas para realizar el procedimiento, ya que se requiere de sedación.
21 j) Lavado o cepillado broncoalveolar A través de técnica de fibrobroncoscopia. Conecte una trampa de Lukens al fibrobroncoscopio. Irrigar con 10 ml de solución salina a través del canal abierto. Succione para obtener la muestra en dos frascos estériles de boca ancha. Equipos de fibrobroncoscopia. Sistema de succión. Recipiente de boca ancha estéril de tapa rosca. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. k) Muestras obtenidas por abordaje percutáneo Son todos procedimientos médicos. Dentro de las técnicas invasivas son las que permiten la obtención de muestras más representativas del parénquima pulmonar, no obstante, sólo deben emplearse cuando fracasen otros métodos menos invasivos o cuando la situación del enfermo haga imprescindible conocer el diagnóstico etiológico. Técnica a realizar por personal entrenado. Pueden emplearse las siguientes:
22 k) Muestras obtenidas por abordaje percutáneo i. Punción pulmonar aspirativa transtorácica: Obtención del exudado de las lesiones pulmonares a través de una punción transtorácica con aguja ultrafina con control radioscópico o ecográfico. Debe aplicarse ante infiltraciones densas (no intersticiales) y sobre todo si son periféricas. Contraindicado en pacientes con bullas, trastornos de coagulación y sospecha de hidatidosis. Posibles complicaciones, como neumotórax y hemoptisis. Es una muestra ideal para estudio en infección anaerobia grave en niños, especialmente en edades tempranas. ii. Punción biópsica pulmonar: Biopsia transtorácica con trocar. Sólo en casos excepcionales y en caso de lesiones muy periféricas debido al alto riesgo de neumotórax. iii. Biopsia pulmonar por toracotomía: Permite la selección visual del área neumónica a cielo abierto. : La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. L) Orina de micción espontánea Realizar higiene de genitales: en mujeres, es necesario lavar el vestíbulo vaginal y la entrada de la uretra con agua jabonosa, enjuagar con abundante agua. Secar y separar los labios e iniciar la micción. En el hombre se debe hacer retracción del prepucio y lavar el meato urinario con agua jabonosa, enjuagar con abundante agua y secar. Con el prepucio retraído iniciar la recolección de la orina. En pacientes ambulatorios es ideal recoger la muestra de la primera micción del día.
23 L) Orina de micción espontánea Instruir al paciente para que inicie la micción, desechar la primera parte de la orina. Introducir el frasco colector, recoger la parte media de la orina sin detener el flujo urinario (5-10 ml) Terminar de eliminar en el sanitario o pato. Tapar el frasco sin contaminar la muestra. Frasco recolector estéril de boca ancha de tapa rosca. Equipo de higiene: jabón, gasas. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 24 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por una semana. m) Secreción conjuntival No usar gotas oftálmicas 18 a 24 horas antes de la muestra. Ausencia de cualquier cosmético. No tomar antibióticos 24 a 48 horas antes. No usar anestésicos que posean actividad antimicrobiana. Deberá utilizarse una tórula para cada ojo. Tome una muestra por cada ojo con tórula previamente humedecidas con suero fisiológico. Obtener la secreción con tórula estéril frotando la conjuntiva tarsal inferior y el fórnix de afuera hacia adentro. Rotar la tórula suavemente para que toda la superficie del algodón se empape de la secreción purulenta.
24 m) Secreción conjuntival Guantes estériles Tórula estéril, jeringa y aguja estériles. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. 3. Herpesvirus humano tipo 3 a) Sangre obtenida a través de punción periférica Realizar lavado de manos quirúrgico. Mantener técnica aséptica durante todo el procedimiento. Utilizar campo estéril para evitar tener contacto con áreas circundantes que ofrezca el riesgo de contaminación. Colocar mascarilla al paciente. Realizar antisepsia de la zona a puncionar; no palpe la vena sin guantes estériles una vez preparada la piel. Utilizar otros guantes estériles para cada punción. POR ÉSTE MÉTODO NO PUEDEN SER PROCESADAS MUESTRAS CON HEPARINA. En pacientes heparinizados, la toma de muestra debe realizarse en el momento más alejado de la administración del medicamento.
25 a) Sangre obtenida a través de punción periférica La toma deberá hacerse en un lugar perfectamente iluminado y con el paciente cómodamente sentado. Localizar una vena adecuada en la cara anterior del codo y colocar el torniquete en la parte media del brazo. Desinfectar el área con un algodón humedecido con alcohol al 70% e introducir la aguja con el bisel hacia arriba. Si la sangre no fluye espontáneamente y se está utilizando una jeringa, jalar el émbolo y aspirar con suavidad; si se está empleando equipo al vacío presionar el tubo de ensaye hacia arriba. Al empezar a fluir la sangre retirar el torniquete. Una vez que se haya obtenido entre 5-8 ml de sangre, retirar la aguja y colocar una tórula con alcohol sobre el sitio de punción ejerciendo presión para detener la hemorragia. En recién nacidos y lactantes, donde no es fácil obtener tanta cantidad de muestra, debe enviarse como mínimo 1 ml de sangre completa. Si la toma se hizo con jeringa, retirar la aguja y verter la sangre a un tubo estéril, dejándola resbalar lentamente por la pared para evitar hemólisis. Tapar el tubo cuidadosamente. Si la muestra necesaria es sangre total utilizar un tubo de hematología con EDTA (venoject ó vacutainer TAPA MORADA). Bata y campos estériles. Gorro y mascarilla con protección ocular. Guantes estériles. Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y guantes estériles). Tubo de hematología con EDTA. Jeringas estériles. La muestra debe ser analizada dentro de las 24 hrs. siguientes, en caso contrario puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta una semana. Se recomienda no congelar.
26 b) Líquido cefalorraquídeo (LCR) Enviar con resumen de historia clínica. Procedimiento realizado por personal médico. Preparación aséptica de la piel: el paciente debe estar recostado sobre un costado con el torso doblado hacia delante. Bajo anestesia local se introduce una aguja larga en el conducto espinal; no necesita ser aspirado, fluye por presión en individuos sanos. Obtener mínimo 3 ml de LCR en tubo estéril tapa rosca. Equipo de asepsia: mascarilla, guantes y campo estériles. Equipo de punción lumbar. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 8 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por una semana. 4. Herpesvirus humano tipo 4 a) Líquido cefalorraquídeo (LCR) Enviar con resumen de historia clínica. Procedimiento realizado por personal médico.
27 a) Líquido cefalorraquídeo (LCR) Preparación aséptica de la piel: el paciente debe estar recostado sobre un costado con el torso doblado hacia delante. Bajo anestesia local se introduce una aguja larga en el conducto espinal; no necesita ser aspirado, fluye por presión en individuos sanos. Obtener mínimo 3 ml de LCR en tubo estéril tapa rosca. Equipo de asepsia: mascarilla, guantes y campo estériles. Equipo de punción lumbar. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 8 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por una semana. 5. Herpesvirus humano tipo 5 a) Sangre obtenida a través de punción periférica Realizar lavado de manos quirúrgico. Mantener técnica aséptica durante todo el procedimiento. Utilizar campo estéril para evitar tener contacto con áreas circundantes que ofrezca el riesgo de contaminación. Colocar mascarilla al paciente. Realizar antisepsia de la zona a puncionar; no palpe la vena sin guantes estériles una vez preparada la piel. Utilizar otros guantes estériles para cada punción. POR ÉSTE MÉTODO NO PUEDEN SER PROCESADAS MUESTRAS CON HEPARINA. En pacientes heparinizados, la toma de muestra debe realizarse en el momento más alejado de la administración del medicamento.
28 a) Sangre obtenida a través de punción periférica La toma deberá hacerse en un lugar perfectamente iluminado y con el paciente cómodamente sentado. Localizar una vena adecuada en la cara anterior del codo y colocar el torniquete en la parte media del brazo. Desinfectar el área con un algodón humedecido con alcohol al 70% e introducir la aguja con el bisel hacia arriba. Si la sangre no fluye espontáneamente y se está utilizando una jeringa, jalar el émbolo y aspirar con suavidad; si se está empleando equipo al vacío presionar el tubo de ensaye hacia arriba. Al empezar a fluir la sangre retirar el torniquete. Una vez que se haya obtenido entre 5-8 ml de sangre, retirar la aguja y colocar una tórula con alcohol sobre el sitio de punción ejerciendo presión para detener la hemorragia. En recién nacidos y lactantes, donde no es fácil obtener tanta cantidad de muestra, debe enviarse como mínimo 1 ml de sangre completa. Si la toma se hizo con jeringa, retirar la aguja y verter la sangre a un tubo estéril, dejándola resbalar lentamente por la pared para evitar hemólisis. Tapar el tubo cuidadosamente. Si la muestra necesaria es sangre total utilizar un tubo de hematología con EDTA (venoject ó vacutainer TAPA MORADA). Bata y campos estériles. Gorro y mascarilla con protección ocular. Guantes estériles. Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y guantes estériles). Tubo de hematología con EDTA. Jeringas estériles. La muestra debe ser analizada dentro de las 24 hrs. siguientes, en caso contrario puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta una semana. Se recomienda no congelar.
29 b) Biopsia de tejido de cualquier sitio anatómico Realizar preparación antiséptica del área de donde se va a tomar la biopsia. Conservar la esterilidad de la muestra hasta su recepción en el laboratorio clínico o de patología. Se recomienda tomar biopsia de tejido para lesiones relacionadas con úlceras de presión, úlceras varicosas, quemaduras y pie diabético, realizar limpieza previa con solución salina estéril. Si la biopsia de tejido no es posible de realizar, aspire material inflamatorio de la base de la lesión. Este procedimiento debe ser realizado por el médico. Seccionar la muestra en fresco para enviar al laboratorio clínico. Equipo para preparación de piel. Frasco estéril para la muestra microbiológica. La muestra debe ser analizada dentro de las 24 hrs. siguientes, en caso contrario puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta una semana. Se recomienda no congelar.
30 6. Herpesvirus humano tipo 6 a) Sangre obtenida a través de punción periférica Realizar lavado de manos quirúrgico. Mantener técnica aséptica durante todo el procedimiento. Utilizar campo estéril para evitar tener contacto con áreas circundantes que ofrezca el riesgo de contaminación. Colocar mascarilla al paciente. Realizar antisepsia de la zona a puncionar; no palpe la vena sin guantes estériles una vez preparada la piel. Utilizar otros guantes estériles para cada punción. POR ÉSTE MÉTODO NO PUEDEN SER PROCESADAS MUESTRAS CON HEPARINA. En pacientes heparinizados, la toma de muestra debe realizarse en el momento más alejado de la administración del medicamento. La toma deberá hacerse en un lugar perfectamente iluminado y con el paciente cómodamente sentado. Localizar una vena adecuada en la cara anterior del codo y colocar el torniquete en la parte media del brazo. Desinfectar el área con un algodón humedecido con alcohol al 70% e introducir la aguja con el bisel hacia arriba. Si la sangre no fluye espontáneamente y se está utilizando una jeringa, jalar el émbolo y aspirar con suavidad; si se está empleando equipo al vacío presionar el tubo de ensaye hacia arriba. Al empezar a fluir la sangre retirar el torniquete. Una vez que se haya obtenido entre 5-8 ml de sangre, retirar la aguja y colocar una tórula con alcohol sobre el sitio de punción ejerciendo presión para detener la hemorragia. En recién nacidos y lactantes, donde no es fácil obtener tanta cantidad de muestra, debe enviarse como mínimo 1 ml de sangre completa. Si la toma se hizo con jeringa, retirar la aguja y verter la sangre a un tubo estéril, dejándola resbalar lentamente por la pared para evitar hemólisis. Tapar el tubo cuidadosamente. Si la muestra necesaria es sangre total utilizar un tubo de hematología con EDTA (venoject ó vacutainer TAPA MORADA).
31 a) Sangre obtenida a través de punción periférica Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y guantes estériles). Tubo de hematología con EDTA. Jeringas estériles. b) Líquido cefalorraquídeo (LCR) Enviar con resumen de historia clínica. Procedimiento realizado por personal médico. Preparación aséptica de la piel: el paciente debe estar recostado sobre un costado con el torso doblado hacia delante. Bajo anestesia local se introduce una aguja larga en el conducto espinal; no necesita ser aspirado, fluye por presión en individuos sanos. Obtener mínimo 3 ml de LCR en tubo estéril tapa rosca. Equipo de asepsia: mascarilla, guantes y campo estériles. Equipo de punción lumbar. Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y guantes estériles). Tubo de hematología con EDTA. Jeringas estériles. La muestra debe ser analizada dentro de las 24 hrs. siguientes, en caso contrario puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta una semana. Se recomienda no congelar. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 8 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por una semana.
32 c) Lavado o cepillado broncoalveolar El paciente debe estar en ayunas para realizar el procedimiento, ya que se requiere de sedación. A través de técnica de fibrobroncoscopia. Conecte una trampa de Lukens al fibrobroncoscopio. Irrigar con 10 ml de solución salina a través del canal abierto. Succione para obtener la muestra en dos frascos estériles de boca ancha. Equipos de fibrobroncoscopia. Sistema de succión. Recipiente de boca ancha estéril de tapa rosca. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. d) Líquido pleural La recolección de muestras de este origen está reservada estrictamente al médico especialista. No se recomienda usar tórulas, la muestra debe ser obtenida por aspirado o drenaje quirúrgico. Los líquidos susceptibles de formar coágulo deben ser colectados en tubos con anticoagulante EDTA (ácido etilendiaminotetracético). En el líquido amniótico los virus que causan infección en el útero son CMV, Parvovirus B-19 y VIH, menos frecuentemente observados virus herpes simplex (HSV) y virus Zoster (VZV).
33 d) Líquido pleural Realice preparación de la piel con técnica aséptica. Puncionar con jeringa y aguja estéril, y recoger entre 1 y 5 ml de líquido. Recolectar en frasco seco. Equipo de preparación de piel y anestesia local. Jeringa y aguja estéril. Tubo estéril seco. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 4 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por una semana. 7. Herpesvirus humano tipo 7 a) Sangre obtenida a través de punción periférica Realizar lavado de manos quirúrgico. Mantener técnica aséptica durante todo el procedimiento. Utilizar campo estéril para evitar tener contacto con áreas circundantes que ofrezca el riesgo de contaminación. Colocar mascarilla al paciente. Realizar antisepsia de la zona a puncionar; no palpe la vena sin guantes estériles una vez preparada la piel. Utilizar otros guantes estériles para cada punción. POR ÉSTE MÉTODO NO PUEDEN SER PROCESADAS MUESTRAS CON HEPARINA. En pacientes heparinizados, la toma de muestra debe realizarse en el momento más alejado de la administración del medicamento.
34 a) Sangre obtenida a través de punción periférica La toma deberá hacerse en un lugar perfectamente iluminado y con el paciente cómodamente sentado. Localizar una vena adecuada en la cara anterior del codo y colocar el torniquete en la parte media del brazo. Desinfectar el área con un algodón humedecido con alcohol al 70% e introducir la aguja con el bisel hacia arriba. Si la sangre no fluye espontáneamente y se está utilizando una jeringa, jalar el émbolo y aspirar con suavidad; si se está empleando equipo al vacío presionar el tubo de ensaye hacia arriba. Al empezar a fluir la sangre retirar el torniquete. Una vez que se haya obtenido entre 5-8 ml de sangre, retirar la aguja y colocar una tórula con alcohol sobre el sitio de punción ejerciendo presión para detener la hemorragia. En recién nacidos y lactantes, donde no es fácil obtener tanta cantidad de muestra, debe enviarse como mínimo 1 ml de sangre completa. Si la toma se hizo con jeringa, retirar la aguja y verter la sangre a un tubo estéril, dejándola resbalar lentamente por la pared para evitar hemólisis. Tapar el tubo cuidadosamente. Si la muestra necesaria es sangre total utilizar un tubo de hematología con EDTA (venoject ó vacutainer TAPA MORADA). Bata y campos estériles. Gorro y mascarilla con protección ocular. Guantes estériles. Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y guantes estériles). Tubo de hematología con EDTA. Jeringas estériles. La muestra debe ser analizada dentro de las 24 hrs. siguientes, en caso contrario puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta una semana. Se recomienda no congelar.
35 b) Líquido cefalorraquídeo (LCR) Enviar con resumen de historia clínica. Procedimiento realizado por personal médico. Preparación aséptica de la piel: el paciente debe estar recostado sobre un costado con el torso doblado hacia delante. Bajo anestesia local se introduce una aguja larga en el conducto espinal; no necesita ser aspirado, fluye por presión en individuos sanos. Obtener mínimo 3 ml de LCR en tubo estéril tapa rosca. Equipo de asepsia: mascarilla, guantes y campo estériles. Equipo de punción lumbar. La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 8 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por una semana. c) Lavado o cepillado broncoalveolar El paciente debe estar en ayunas para realizar el procedimiento, ya que se requiere de sedación. A través de técnica de fibrobroncoscopia. Conecte una trampa de Lukens al fibrobroncoscopio. Irrigar con 10 ml de solución salina a través del canal abierto. Succione para obtener la muestra en dos frascos estériles de boca ancha.
36 c) Lavado o cepillado broncoalveolar Equipos de fibrobroncoscopia. Sistema de succión. Recipiente de boca ancha estéril de tapa rosca. Se recomienda en los primeros 15 minutos de la recolección, no exceder de dos horas y a temperatura ambiente. d) Líquido pleural La recolección de muestras de este origen está reservada estrictamente al médico especialista. No se recomienda usar tórulas, la muestra debe ser obtenida por aspirado o drenaje quirúrgico. Los líquidos susceptibles de formar coágulo deben ser colectados en tubos con anticoagulante EDTA (ácido etilendiaminotetracético). En el líquido amniótico los virus que causan infección en el útero son CMV, Parvovirus B-19 y VIH, menos frecuentemente observados virus herpes simplex (HSV) y virus Zoster (VZV). Realice preparación de la piel con técnica aséptica. Puncionar con jeringa y aguja estéril, y recoger entre 1 y 5 ml de líquido. Recolectar en frasco seco. Equipo de preparación de piel y anestesia local. Jeringa y aguja estéril. Tubo estéril seco.
37 d) Líquido pleural La muestra puede ser almacenada a temperatura ambiente durante 48 horas. Posteriormente debe mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por dos semanas. 8. Herpesvirus humano tipo 8 a) Sangre obtenida a través de punción periférica Realizar lavado de manos quirúrgico. Mantener técnica aséptica durante todo el procedimiento. Utilizar campo estéril para evitar tener contacto con áreas circundantes que ofrezca el riesgo de contaminación. Colocar mascarilla al paciente. Realizar antisepsia de la zona a puncionar; no palpe la vena sin guantes estériles una vez preparada la piel. Utilizar otros guantes estériles para cada punción. POR ÉSTE MÉTODO NO PUEDEN SER PROCESADAS MUESTRAS CON HEPARINA. En pacientes heparinizados, la toma de muestra debe realizarse en el momento más alejado de la administración del medicamento. La toma deberá hacerse en un lugar perfectamente iluminado y con el paciente cómodamente sentado. Localizar una vena adecuada en la cara anterior del codo y colocar el torniquete en la parte media del brazo. Desinfectar el área con un algodón humedecido con alcohol al 70% e introducir la aguja con el bisel hacia arriba. Si la sangre no fluye espontáneamente y se está utilizando una jeringa, jalar el émbolo y aspirar con suavidad; si se está empleando equipo al vacío presionar el tubo de ensaye hacia arriba. Al empezar a fluir la sangre retirar el torniquete.
38 a) Sangre obtenida a través de punción periférica Una vez que se haya obtenido entre 5-8 ml de sangre, retirar la aguja y colocar una tórula con alcohol sobre el sitio de punción ejerciendo presión para detener la hemorragia. En recién nacidos y lactantes, donde no es fácil obtener tanta cantidad de muestra, debe enviarse como mínimo 1 ml de sangre completa. Si la toma se hizo con jeringa, retirar la aguja y verter la sangre a un tubo estéril, dejándola resbalar lentamente por la pared para evitar hemólisis. Tapar el tubo cuidadosamente. Si la muestra necesaria es sangre total utilizar un tubo de hematología con EDTA (venoject ó vacutainer TAPA MORADA). Bata y campos estériles. Gorro y mascarilla con protección ocular. Guantes estériles. Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y guantes estériles). Tubo de hematología con EDTA. Jeringas estériles. La muestra debe ser analizada dentro de las 24 hrs. siguientes, en caso contrario puede mantenerse refrigerada a 4ºC hasta una semana. Se recomienda no congelar. b) Líquido cefalorraquídeo (LCR) Enviar con resumen de historia clínica. Procedimiento realizado por personal médico.
Manual Toma de Muestras Human PCR Kit
Manual Toma de Muestras Human PCR Kit Contenido 1. Introducción... 1 2. Materia fecal... 1 a) Heces... 1 b) Tórula rectal... 1 3. Muestras digestivas altas... 2 a) Aspirado gástrico... 2 b) Biopsia gástrica/antral
Más detallesManual Toma de Muestras. Infecciones Gastrointestinales. Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)
Manual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Infecciones Gastrointestinales Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)-2790435 www.labgenetico.com info@labgenetico.com Muestras Genitourinarioas 1. Introducción
Más detallesManual Toma de Muestras Human PCR Kit
Manual Toma de Muestras Human PCR Kit Contenido Contenido... 1 1. Introducción... 2 2. Genitales femeninos... 2 a) Secreciones cervicales... 2 b) Secreciones vaginales... 2 c) Secreciones uretrales...
Más detallesManual Toma de Muestras. Infecciones Respiratorias. Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)
Manual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Infecciones Respiratorias Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)-2790435 www.labgenetico.com info@labgenetico.com Muestras Respiratorias 1. Introducción
Más detallesMuestras Respiratorias 1. Introducción. 2. Infecciones del tracto respiratorio superior. a. Secreción de la zona nasal CUIDADOS Y RECOMENDACIONES
Muestras Respiratorias 1. Introducción Las infecciones respiratorias agudas comprenden numerosos cuadros clínicos, los que pueden dividirse de acuerdo a su localización en dos grupos, infecciones del tracto
Más detallesNeonatal. Muestras Neonatal. 1. Introducción. Contenido. a) Sangre obtenida a través de punción periférica. Análisis Genéticos Humanos
Contenido 1. Introducción... 1 a) Sangre obtenida a través de punción periférica... 1 b) Líquido cefalorraquídeo (LCR)... 2 c) Orina de micción espontánea... 3 d) Orina obtenida a través de cateterismo
Más detallesManual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Periodontal Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)
Manual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Periodontal Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)-2790435 www.labgenetico.com info@labgenetico.com Muestras Periodontal 1. Introducción El sistema inmune
Más detallesManual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Herpesvirus Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)
Manual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Herpesvirus Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)-2790435 www.labgenetico.com info@labgenetico.com Muestras Herpesvirus 1. Introducción Los herpesvirus
Más detallesManual Toma de Muestras Human PCR Kit
Manual Toma de Muestras Human PCR Kit Contenido 1. Introducción... 2 2. Herpesvirus humano 1 y herpesvirus humano 2... 2 a) Sangre obtenida a través de punción periférica... 2 b) Líquido pleural, pericárdico,
Más detallesManual Toma de Muestras. Meningitis. Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41) Exámenes Genéticos por PCR
Manual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Meningitis Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)-2790435 www.labgenetico.com info@labgenetico.com Muestras Meningitis 1. Introducción Principalmente la
Más detallesManual Toma de Muestras Human PCR Kit
Manual Toma de Muestras Human PCR Kit Tabla de contenido 1. Introducción... 1 2. Infecciones del tracto respiratorio superior... 1 a. Secreción de la zona nasal... 1 b. Secreción de área nasofaríngea...
Más detallesManual Toma de Muestras. Ginecológicas. Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)
Manual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Ginecológicas Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)-2790435 www.labgenetico.com info@labgenetico.com Muestras HPV 1. Introducción El virus del papiloma
Más detallesManual Toma de Muestras Análisis Genéticos Humanos
Manual Toma de Muestras Gastrointestinal Muestras Gastrointestinal Contenido 1. Introducción... 1 2. Materia fecal... 1 a) Heces... 1 b) Tórula rectal... 1 3. Muestras digestivas altas... 2 a) Aspirado
Más detallesManual Toma de Muestras. Otros. Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41) Exámenes Genéticos por PCR
Manual Toma de Muestras Exámenes Genéticos por PCR Otros Bioingentech Ltd. Teléfono (56)-(41)-2790435 www.labgenetico.com info@labgenetico.com Muestras Infeciones Especiales MUESTRAS GENITOURINARIAS 1.
Más detallesMuestras Infeciones Especiales
1. Materia fecal... 9 Contenido MUESTRAS GENITOURINARIAS... 2 1. Genitales femeninos... 2 A. Secreciones cervicales... 2 B. Secreciones vaginales... 3 C. Secreciones uretrales... 3 2. Genitales masculinos...
Más detallesManual Toma de Muestras
Biotechnology company 2013 Manual Toma de Muestras Sistema Nervioso Central Muestras Sistema Nervioso Central Contenido 1. Introducción... 1 a) Líquido cefalorraquídeo (LCR)... 1 b) Sangre obtenida a través
Más detallesGUIA CLINICA TOMA DE MUESTRA DE ORINA
Pág. 1 de 12 1. OBJETIVO El objetivo de este procedimiento es la recolección de orina con fines diagnósticos que permitan identificar microorganismos patógenos y otros elementos significativos de enfermedad.
Más detallesToma de Muestras Microbiológicas
Toma de Muestras Microbiológicas MICROBIOLOGÍA CLÍNICA DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS MUESTRA AISLAMIENTO IDENTIFICACIÓN SENSIBILIDAD A ANTIMICROBIANOS Detección de anticuerpos, antígenos y ácidos
Más detallesManual Toma de Muestras Human PCR Kit
Manual Toma de Muestras Human PCR Kit 1. Materia fecal... 9 Contenido MUESTRAS GENITOURINARIAS... 2 1. Genitales femeninos... 2 A. Secreciones cervicales... 2 B. Secreciones vaginales... 3 C. Secreciones
Más detallesTrabajo Práctico Nº4: OBTENCIÓN Y PROCESAMIENTO DE MUESTRAS CLÍNICAS DESTINADAS AL ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO. (Lic en Enfermería y Lic en Obstetricia)
Trabajo Práctico Nº4: OBTENCIÓN Y PROCESAMIENTO DE MUESTRAS CLÍNICAS DESTINADAS AL ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO. (Lic en Enfermería y Lic en Obstetricia) INTRODUCCIÓN La actividad que desarrolla el laboratorio
Más detallesTOMA DE MUESTRAS MICROBIOLOGICAS. Dra. Dona Benadof Microbiología Hospital Roberto del Río Comité Vigilancia Infecciones Intrahospitalarias
TOMA DE MUESTRAS MICROBIOLOGICAS Dra. Dona Benadof Microbiología Hospital Roberto del Río Comité Vigilancia Infecciones Intrahospitalarias INTRODUCCIÓN La confiabilidad de los resultados del estudio microbiológico
Más detallesGUÍA A PARA RECOGIDA Y TRANSPORTE DE MUESTRAS SECCIÓN N DE MICROBIOLOGÍA A H. G. U. A REVISIÓN N 2010
GUÍA A PARA RECOGIDA Y TRANSPORTE DE MUESTRAS SECCIÓN N DE MICROBIOLOGÍA A H. G. U. A REVISIÓN N 2010 NORMAS GENERALES PARA RECOGIDA DE MUESTRAS RECOGER LA MUESTRA SI ES POSIBLE, ANTES DE LA ADMINISTRACI
Más detallesCATETERISMO VESICAL ELABORADO: CATETERISMO VESICAL
PAGINA: 1 de 6 REVISADO: COORDINADOR DE CALIDAD ELABORADO: ENFERMERO JEFE COORDINADOR URGENCIAS CATETERISMO VESICAL 1. DEFINICION: Es la introducción de una sonda o catéter a la vejiga por el orificio
Más detalles18 CURSO DE ACTUALIZACION EN EL DIAGNÓSTICO Y TRATAMIENTO DE LA TUBERCULOSIS EN EL NIÑO Y EL ADULTO
18 CURSO DE ACTUALIZACION EN EL DIAGNÓSTICO Y TRATAMIENTO DE LA TUBERCULOSIS EN EL NIÑO Y EL ADULTO MUESTRA BIOLOGICA ADECUADA, ESENCIAL PARA EL DIAGNOSTICO DE LA TUBERCULOSIS InDRE Departamento de Bacteriología
Más detallesGUÍA PARA RECOGIDA Y TRANSPORTE DE MUESTRAS
GUÍA PARA RECOGIDA Y TRANSPORTE DE MUESTRAS SECCIÓN DE MICROBIOLOGÍA H. G. U. A REVISIÓN 2012 Supervisora de Microbiología Mª Ángeles Lillo Hernández NORMAS GENERALES PARA RECOGIDA DE MUESTRAS RECOGER
Más detallesTEMA 8 RECOLECCIÓN, SELECCIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS PARA DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO
TEMA 8 RECOLECCIÓN, SELECCIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS PARA DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO CONCEPTOS FUNDAMENTALES SOBRE LA RECOGIDA DE MUESTRAS Importancia de la recogida correcta de la muestra Conceptos
Más detallesEstudios microbiológicos.procedimientos. 1. Urocultivos
Estudios microbiológicos.procedimientos 1. Urocultivos Se realizará el cultivo de orina a todas las muestras llegadas al laboratorio, que cumplan con los requisitos para la toma, conservación y transporte
Más detallesTécnica para la obtención de la muestra
Técnica para la obtención de la muestra Luz Yanet Maldonado C Bacterióloga MSc. Microbiología Laboratorio Salud Publica Bogotá TIPO DE MUESTRA Pacientes hospitalizados (Niños): Aspirado nasofaríngeo diluyéndolo
Más detallesINDICACIONES PARA TOMA DE MUESTRA
Página 1 de 8 INDICACIONES PARA TOMA DE MUESTRA 1-UROCULTIVO DEBE REMITIRSE EN UN FRASCO ESTERIL (COMERCIAL) 1º orina de la mañana o con 3 hs. de retención urinaria Enviar al laboratorio inmediatamente,
Más detallesPREPARACION Y CONDICIONES PARA EXAMENES
PREPARACION Y CONDICIONES PARA EXAMENES A continuación, las condiciones de preparación para algunos de los exámenes y pruebas que realizamos en Mediexpress. Condiciones generales para la toma de muestras
Más detallesManual de Toma y transporte de muestras microbiológicas
Página 1 de 29 Página 2 de 29 3. Responsabilidades: Actividad Responsable Médico Servicio EU/Mat/KNS Servicio TPM Servicio Recepción de Muestras Lab. Médico Laboratorio Microbiología TM Microbiología TPM
Más detallesCONDICIONES GENERALES TOMA DE MUESTRAS SANGUINEAS
CONDICIONES GENERALES TOMA DE MUESTRAS SANGUINEAS El momento más adecuado para realizar la toma de muestra es de 6:30-9:30 Am. Ayuno de 8 a 12 horas. No ingerir alimentos con alto contenido de grasa 24
Más detallesTOMA DE MUESTRAS MICROBIOLOGICAS. Dra. Dona Benadof Microbiología Hospital Roberto del Río
TOMA DE MUESTRAS MICROBIOLOGICAS Dra. Dona Benadof Microbiología Hospital Roberto del Río Temario Definiciones Requisitos Procedimientos de toma de muestras Ejemplos INTRODUCCIÓN La confiabilidad de los
Más detallesLa muestra idónea es la primera orina de la mañana, ya que permite la multiplicación de bacterias durante la noche.
INSTRUCCCIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA DE ORINAS Y HECES ORINA 1. ORINA PARCIAL Y UROCULTIVO La muestra idónea es la primera orina de la mañana, ya que permite la multiplicación de bacterias durante la
Más detallesExtracción de Sangre Venosa Periférica
Extracción de Sangre Venosa Periférica Introducción La extracción venosa de sangre es un proceso muy acequiado en el análisis biológico dado que es posible detectar diversas enfermedades o condiciones
Más detallesPREVENCION DE INFECCIONES ASOCIADAS A CATETER URINARIO PERMANENTE HOSPITAL DR. ERNESTO TORRES GALDAMES IQUIQUE
PREVENCION DE INFECCIONES ASOCIADAS A CATETER URINARIO HOSPITAL DR. ERNESTO TORRES GALDAMES IQUIQUE 2013 Página: 2 de 12 INDICE INTRODUCCION 3 PROPOSITO 4 OBJETIVO GENERAL 4 ALCANCE 4 RESPONSABLES 4 DESARROLLO
Más detallesProcedimiento para Técnica de Punción Venosa
Página 1 de 6 Procedimiento para Técnica de Punción Venosa Elaborado por: Visado por: Aprobado por: TM Maria Inés Henríquez Berckhoff Supervisora Unidad de Laboratorio TM Paulina Barraza Rivas Tecnólogo
Más detallesPrevención, Diagnóstico y Tratamiento de la Infección de Vías Urinarias No Complicada en Menores de 18 años en el Primero y Segundo Nivel de Atención
Guía de Referencia Rápida Prevención, Diagnóstico y Tratamiento de la Infección de Vías Urinarias No Complicada en Menores de 18 años en el Primero y Segundo Nivel de Atención Guía de Referencia Rápida
Más detallesServicio Bacteriología Urocultivo
Urocultivo Lunes a viernes de 8 hs. a 12 hs. Sábados de 8:30 hs. a 12:00 hs. Recolectar la primera orina de la mañana o aquella que presente una retención mínima de tres horas. Si no pudiera retener, indicar
Más detallesTRATAMIENTO Y RECOGIDA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO
TRATAMIENTO Y RECOGIDA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO GEMA GÓMEZ LAJARA TEL TEL SERVICIO SERVICIO DE DE LABORATORIO LABORATORIO HOSPITAL SANTA BARBARA. PUERTOLLANO. HOSPITAL SANTA BARBARA. PUERTOLLANO.
Más detallesNORMA DE INSTALACIÓN Y MANEJO DE VÍAS VENOSAS PERIFÉRICAS
MANEJO DE VÍAS I.- INTRODUCCION Es parte del trabajo diario de las enfermeras canalizar vías venosas de acceso periférico (VVP) a los pacientes, principalmente aquellos que se encuentran en Servicios como
Más detallesEl presente documento describe el proceso microbiológico de transporte de muestras para el área de microbiología.
UNIDAD DE LABORATORIO 1 DE 6 I. INTRODUCCIÓN El laboratorio de microbiología tiene el propósito de brindar los mejores resultados para el diagnostico de cualquier patología relacionada con el estudio de
Más detallesNOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 1 de 12 ESTADO DOCUMENTAL EL PORTADOR DE ESTA INFORMACION NO ESTA AUTORIZADO A SACAR COPIAS
NOMBRE TOMA DE HEMOCULTIVOS Página 1 de 12 ESTADO 1. VALIDACION JERARQUIA NOMBRE CARGO FECHA FIRMA ELABORO PATRICIA SABOGAL ENFERMERA VALIDO ALBERTO VALDERRAMA ENFEMERO VIGILANCIA E APROBO DIANA SOTO COORDINACION
Más detallesFUNDACION PANZENU TOMA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO CLINICO. Claudia Isabel Bedoya C. Bacterióloga
FUNDACION PANZENU TOMA DE MUESTRAS EN EL LABORATORIO CLINICO Claudia Isabel Bedoya C. Bacterióloga FASE PREANALÍTICA EN EL PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS Procedimiento especializado que consiste en la obtención
Más detallesSISTEMA DE PRECAUCIONES UNIVERSALES Este sistema fué establecido por el Centro de Control de Enfermedades (C.D.C) de Atlanta, en 1987, a través de un
SISTEMA DE PRECAUCIONES UNIVERSALES Este sistema fué establecido por el Centro de Control de Enfermedades (C.D.C) de Atlanta, en 1987, a través de un grupo de expertos quienes desarrollaron guías para
Más detallesLa mayor parte de las meningitis estan causadas por cepas no capsuladas y afectan a adultos con una mortalidad del 10%
La introduccion de la vacuna conjugada frente a H. influenzae produjo una desaparicion casi absoluta de portadores faringeos asintomáticos y de la incidencia de meningitis y otras enfermedades invasivas
Más detallesLIMPIEZA Y DESINFECCION
PAGINA: 1 de 7 1. DEFINICION: Es el procedimiento, mediante el cual son eliminados los diferentes desechos generados en los procesos de recolección y procesamiento de muestras; y además se describe el
Más detallesUniversidad de Buenos Aires, Facultad de Medicina. Departamento de Microbiología, Parasitología e Inmunología. Cátedra 1 Microbiología II
Universidad de Buenos Aires, Facultad de Medicina Departamento de Microbiología, Parasitología e Inmunología Cátedra 1 Microbiología II Teórico 1 Diagnóstico Bacteriológico Cristina Cerquetti ccerquetti@yahoo.com.ar
Más detallesRecomendaciones para una buena toma de muestra. Síganos en
Recomendaciones para una buena toma de muestra Síganos en Recomendaciones para una buena toma de muestra Antes de la consulta No realizar ejercicios vigorosos No fumar una hora antes Si se ha realizado
Más detallesPROCEDIMIENTOS PARA PACIENTES PEDIÁTRICOS INMUNODEPRIMIDOS
Hoja: 1 de 6 Elaboró: Revisó: Autorizó: Puesto Médico adscrito Subdirector de Quemados Director Quirúrgico Firma Hoja: 2 de 6 1. Propósito Disminuir el riesgo de infección en pacientes con inmunodeficiencia
Más detallesPROCEDIMIENTO DE TOMA DE MUESTRAS PARA UROCULTIVO PROLAB S.A.S LABORATORIO CLÍNICO PARA INSTITUCIONES HOSPITALARIAS
PROCEDIMIENTO DE TOMA DE MUESTRAS PARA UROCULTIVO PROLAB S.A.S LABORATORIO CLÍNICO PARA INSTITUCIONES HOSPITALARIAS Es importante anotar los datos personales y de la historia clínica del paciente, pues
Más detallesPROTOCOLO DE TOMA DE FROTIS DE FLUJO VAGINAL
Elaboró (08-2018) Revisó (08-2018) Aprobó (08-2018) Auxiliar De Enfermería Coordinadora de Calidad Gerente Luisa Fernanda Arias Alonso Doctora Jazmín Ávila Dra. Martha Inés Bautista Junca Página 1 de 9
Más detallesGUIA CLINICA TOMA DE HEMOCULTIVO
Pág. 1 de 12 1. OBJETIVO Es detectar e identificación de microorganismos en la sangre utilizando el examen directo y cultivo, y definir los patrones de susceptibilidad de las bacterias por medio del antibiograma.
Más detallesCódigo: PM-IS PT-1 Versión:1 Fecha Vigencia:
1 de 7 1. PROCESO/SUBPROCESO RELACIONADO: Gestión de la Interacción Social/Servicios de Salud a la Comunidad 2. RESPONSABLE(S):. 3. OBJETIVO: Evacuar la orina retenida en la vejiga, utilizando la técnica
Más detallesInstalación de Catéter Urinario Permanente en HRR
en HRR Elaborado por : Revisado por : Aprobado por : Verónica Torres Mónica Rubio Gabriela García Roxana González Enfermeras Dr. Sonia Correa Comité IAAS Carmen Gloria Díaz Calidad y Seguridad del Paciente
Más detallesGenPE: estudio Internacional de Genética en Preeclampsia
GenPE: estudio Internacional de Genética en Preeclampsia INSTRUCTIVO Toma de muestra proyecto GenPE PAQUETE PARA CAPTACIÓN DE PACIENTE Y TOMA DE MUESTRA. Cuando llegue a su institución la caja del proyecto
Más detallesUNIDAD DIDÁCTICA III: INFECCIONES ASOCIADAS A LA ATENCIÓN SANITARIA
UNIDAD DIDÁCTICA III: INFECCIONES ASOCIADAS A LA ATENCIÓN SANITARIA Apartados de información del Unidad Didáctica III De qué estamos hablando cuando decimos infecciones asociadas a la atención sanitaria?
Más detallesPROTOCOLO TECNICA DE INSTALACION Y MANEJO DE CATETER URINARIO PERMANENTE. HOSPITAL SANTIAGO ORIENTE Dr. Luis Tisné Brousse
6 PROTOCOLO TECNICA DE INSTALACION Y MANEJO DE CATETER URINARIO PERMANENTE Dr. Luis Tisné Brousse 2013 INDICE I. INTRODUCCIÓN 4 II.OBJETIVO GENERAL 4 III.OBJETIVO ESPECIFICO 4 IV. ALCANCE 5 V. RESPONSABLES
Más detalles114. Señala a continuación, sistemas de eliminación de líquidos: a) Pulmones. b) Vómitos. c) Intestino. d) Todos son sistemas de eliminación.
1 111. En condiciones normales el cuerpo elimina un volumen de líquido que oscila entre: a) 2400 y 2500 ml. b) 2300 y 2500 ml. c) 2300 y 2600 ml. d) 2400 y 2700 ml. 112. Qué es el balance?: a) Es el resultado
Más detallesLABORATORIO DE ANALISIS CLINICOS,BACTERIOLOGICOS Y ENDOCRINOLOGICOS DR. CARLOS GUZZETTI
LABORATORIO DE ANALISIS CLINICOS,BACTERIOLOGICOS Y ENDOCRINOLOGICOS DR. CARLOS GUZZETTI Horario de toma de muestra (extraccion de sangre) Lunes a Viernes de 8.15:00 a 10.30 hs Retiro de informes: 10.30
Más detallesPOR QUÉ LLEVO UN CATÉTER?
Lea atentamente las siguientes instrucciones, y si tiene alguna duda consulte con su enfermera. POR QUÉ LLEVO UN CATÉTER? Usted lleva un catéter central de larga duración, para que en el tiempo que dure
Más detallesSerie blanca. Leucograma (conteo total de leucocitos y morfología)
HEMATOLOGIA El hemograma es un examen de triage que nos ayuda en el diagnóstico, pronostico y monitoreo de nuestros pacientes. El hemograma es la evaluación cuantitativa y cualitativa de los elementos
Más detallesCONDICIONES GENERALES PARA TOMA DE MUESTRAS LABORATORIO CLINICO
EXAMEN CONDICIONES HEMATOLOGIA PRUEBAS DE COAGULACION (PT, PTT, FIBRINOGENO, DIMERO D) No tomar el anticoagulante hasta después de la toma de Informar que anticoagulante está usando. HEMOGRAMA No es necesario
Más detallesESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES.
ESTUDIO PARASITOLOGICO DE HECES. DE MUESTRAS. A:PREPARACIÓN 3 DÍAS ANTES DE LA RECOGIDA DE LAS HECES DEBE SUPRIMIRSE: 1. MEDICAMENTOS QUE CONTENGAN CARBÓN VEGETAL, SALES DE BISMUTO, DE MAGNESIO, CAOLÍN,
Más detallesProcedimientos Hoja 1 de 5 Servicio de Cardiología Unidad Coronaria
Procedimientos Hoja 1 de 5 Norma de Prevención de la infección urinaria Objetivo Establecer medidas para prevenir las complicaciones infecciosas relacionadas al cateterismo vesical Introducción La infección
Más detallesEDUCACIÓN PARA EL EGRESO DEL USUARIO CON CATETERISMO VESICAL LIMPIO E INTERMITENTE. Indicaciones y recomendaciones
EDUCACIÓN PARA EL EGRESO DEL USUARIO CON CATETERISMO VESICAL LIMPIO E INTERMITENTE Indicaciones y recomendaciones 1. Conceptos básicos 1.1. Qué es el cateterismo vesical limpio e intermitente? Es una técnica
Más detallesMateriales para el docente:
CURSO: CLÍNICA BÁSICA GUÍA Nº 1 CÓDIGO: 501051 NOMBRE DEL PROCEDIMIENTO: PROCEDIMIENTOS DE TÉCNICA ASÉPTICA OBJETIVOS DE LA PRÁCTICA DE LABORATORIO: Adquirir habilidad previa en los procedimientos relacionados
Más detallesLaboratorio 2: Infecciones respiratorias
2017 Universidad Nacional de Rosario - Facultad de Ciencias Médicas Área Defensa Laboratorio 2: Infecciones respiratorias USUARIO [Escribir el nombre de la compañía] 01/01/2017 Área Defensa Material Complementario
Más detalles50 kits de recolección de muestras con torunda multitest Aptima (N.º de catálogo PRD-03546) Cada kit contiene:
Uso previsto El kit de recolección de muestras con torunda se utiliza con los ensayos Aptima. El kit de recolección de muestras con torunda multitest Aptima se utiliza para que médico y paciente puedan
Más detallesDirección de Redes en Salud Pública
Dirección de Redes en Salud Pública Recolección de muestras para el estudio de Microcefalias y otras mal formaciones del SNC posiblemente asociadas a infección por virus Zika 22 de Febrero de 2016 Confirmación
Más detallesGUIA Nº2: POSTURA DE GUANTES DE PROCEDIMIENTO Y ESTERILES
FACULTAD DE ENFERMERÍA ASIGNATURA: CUIDADOS DE ENFERMERÍA EN EL CICLO VITAL I (ENFE-6013) CREADO EQUIPO DOCENTE PAE 1 (2010) ACTUALIZADO EQUIPO DOCENTE CICLO VITAL I (2012-1) TALLER Nº 1 GUIA Nº2: POSTURA
Más detallesPROCEDIMIENTO PARA LA DETERMINACIÓN DE HEMOGLOBINA MEDIANTE HEMOGLOBINOMETROS PORTATILES
PROCEDIMIENTO PARA LA DETERMINACIÓN DE HEMOGLOBINA MEDIANTE HEMOGLOBINOMETROS PORTATILES 1 El procedimiento agrupa tres etapas: 1. Procedimiento previo a la punción capilar. 2. Procedimiento de la punción
Más detallesInfección de vías urinarias asociada a sonda vesical
Infección de vías urinarias asociada a sonda vesical Objetivo: Prevenir el desarrollo de infecciones de vías urinarias relacionadas con la presencia de sonda vesical a permanencia en pacientes hospitalizados,
Más detallesMANIQUÍ BÁSICO DE ENFERMERÍA FEMENINA
MANIQUÍ BÁSICO DE ENFERMERÍA FEMENINA características: 1. Lavado del cabello y la cara y baño de esponja 2. Cuidado de la cavidad bucal 3. Intubación endotraqueal 4. La inhalación de oxígeno 5. Alimentación
Más detallesLaboratorio Especializado ICRODIAG
Laboratorio Especializado ICRODIAG Muestras de Sangre Presentarse en ayunas para la toma de muestra. El ayuno debe ser de 8 a 12 horas. No ingerir bebidas alcohólicas ni alimentos con alto contenido de
Más detallesTIPO DE DOCUMENTO TOMA DE MUESTRAS PARA LABORATORIO 1. TOMA DE MUESTRAS PARA LABORATORIO CLINICO
ACTM 001 1. CLINICO 1.1. DEFINICIÓN Es la introducción de un Venocath o Jeringa directamente en el torrente sanguíneo, con el fin de extraer una muestra de sangre del paciente para su análisis posterior
Más detallesALGORITMOS DE ACTUACIÓN EN CASO DE INFECCIÓN URINARIA EN PEDIATRÍA
ALGORITMOS DE ACTUACIÓN EN CASO DE INFECCIÓN URINARIA EN PEDIATRÍA SERVICIO DE PEDIATRÍA SERVICIO DE URGENCIAS HOSPITAL DE SAGUNTO 2013 1. SOSPECHA CLÍNICA Menores de 2 años con fiebre sin foco. Síntomas
Más detallesImportante obtención de muestras
Orina Análisis rutinario Muestra única de orina y no es necesario que sea estéril. Desechar la primera parte de la micción, aproximadamente de 20 a 25 ml, luego colocar el bote y recoger la orina directamente
Más detallesAPÉNDICE B. INSTRUCTIVO DE RECOLECCIÓN Y ENVÍO DE MUESTRAS PARA LOS LABORATO- RIOS DE APOYO A VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA.
APÉNDICE B. INSTRUCTIVO DE RECOLECCIÓN Y ENVÍO DE MUESTRAS PARA LOS LABORATO- RIOS DE APOYO A VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA. La selección, la recolección y el transporte apropiados de especimenes al laboratorio
Más detallesGuía de práctica clínica Servicio de Neonatología HPM Instalación y manejo de vía arterial periférica. Septiembre Mt.
Guía de práctica clínica Servicio de Neonatología HPM Instalación y manejo de vía arterial periférica Septiembre 2015 Revisado por: Mt. Bárbara Oelckers Objetivo Normalizar procedimiento de instalación
Más detallesObtener una muestra biológica en condiciones óptimas para su proceso analítico de acuerdo al examén solicitado.
Código: I-CIRB-AADC-02 Revisión: 03 Página: 1 de 7 1.- OBJETIVO Obtener una muestra biológica en condiciones óptimas para su proceso analítico de acuerdo al examén solicitado. 2.- ALCANCE Aplica para la
Más detallesProtocolo de manejo de pacientes con infección por el VIH/SIDA. Dr. Carlos Alvarado MINSA/HRACH 05 de julio de 2007
Protocolo de manejo de pacientes con infección por el VIH/SIDA Dr. Carlos Alvarado MINSA/HRACH 05 de julio de 2007 Introducción Por mas de 15 años, la infección por el VIH y SIDA han representado un reto
Más detallesAcceso venoso. manejo y complicaciones.
Acceso venoso central y periférico: manejo y complicaciones. Medidas generales Elección del catéter: calibre nº de luces longitud Elección del lugar de inserción. Cuidados en la inserción. Mantenimiento.
Más detallesMEDIDAS PRÁCTICAS PARA EL CONTROL DE INFECCIONES HOSPITALARIAS
1 MEDIDAS PRÁCTICAS PARA EL CONTROL DE INFECCIONES HOSPITALARIAS 2012 Comité de Control de Infecciones Hospital Italiano de Buenos Aires 2 MEDIDAS PARA APLICAR EN SISTEMAS DE INFUSIÓN A TRAVÉS DE CATÉTERES
Más detallesCONDICIONES GENERALES PARA TOMA DE MUESTRAS LABORATORIO CLINICO
CONDICIONES GENERALES PARA TOMA DE MUESTRAS LABORATORIO CLINICO EXAMEN PRUEBAS DE COAGULACION (PT, PTT, FIBRINOGENO, DIMERO D) HEMATOLOGIA CONDICIONES Ayuno o desayuno muy liviano y no reciente a la toma
Más detallesDECRETO N /2.013 ARICA, 16 de Diciembre de 2013.
DECRETO N 1 7.453/2.013 ARICA, 16 de Diciembre de 2013. a) Lo dispuesto en la Ley N 19.937 de Autoridad Sanitaria de Febrero 2004 b) Lo dispuesto en la Ley N 19.966 de Régimen de Garantías Explícitas en
Más detallesINSTRUCCIONES DE USO
1/4 INSTRUCCIONES DE USO (IMPROMINI TUBOS PARA LA RECOLECCION DE SANGRE CAPILAR PARA UN UNICO USO) Fabricante Guangzhou Improve Medical Instruments Co., Ltd Nombre del Producto Capillary Blood Collection
Más detallesInfecciones Asociadas a Catéter Venoso Central ITS/CVC. Alicia Elgueta EU Comité IAAS
Infecciones Asociadas a Catéter Venoso Central ITS/CVC Alicia Elgueta EU Comité IAAS Objetivos Al término de esta presentación podrá: Conocer la definición de infección asociada a catéter venoso central
Más detallesTOMA DE MUESTRA 22/02/2016. Objetivos. Factores Que Intervienen En La Toma De Muestra. Importancia Toma de Muestra
TOMA DE MUESTRA Objetivos Establecer el agente causal de la infección para su adecuado tratamiento. Mejorar la calidad en la toma de muestra. Disminuir el riesgo de contaminación durante el Lda. María
Más detallesRECOMENDACIONES PARA EL CUIDADO DE LA SONDA DE GASTROSTOMÍA PERCUTÁNEA
RECOMENDACIONES PARA EL CUIDADO DE LA SONDA DE GASTROSTOMÍA PERCUTÁNEA INDICACIÓN: La colocación de una sonda por gastrostomía endoscópica percutánea (PEG) está indicada para mantener la nutrición enteral
Más detallesNormas para la Toma de Muestras. Mediante una torunda estéril se procederá de la siguiente forma:
Anexo 1: Normas para la Toma de Muestras a) Toma de Frotis Faríngeo: - Se realizará un escobillado (frotado) con hisopo preferiblemente de materia sintético (Ej: tipo Dacron), de la faringe, pilares y
Más detallesCUIDADOS DE ENFERMERIA DE PACIENTES EN AISLAMIENTO. MPH. Verónica Quezada Enfermera de Control de Infecciones
CUIDADOS DE ENFERMERIA DE PACIENTES EN AISLAMIENTO MPH. Verónica Quezada Enfermera de Control de Infecciones Consiste en la separación de personas infectadas de los huéspedes susceptibles durante el periodo
Más detallesEpidemiología INFECCIONES DEL TRACTO URINARIO. Bacteriuria
INFECCIONES DEL TRACTO URINARIO Bacteriuria Presencia de bacterias en la orina La probabilidad de que la orina de la vejiga esté infectada se determina por medio de la cuantificación del número de bacterias
Más detallesAISLAMIENTO UNIVERSAL
AISLAMIENTO UNIVERSAL OBJETIVO: Llevar a cabo las medidas de protección que deben observarse de forma sistemática y generalizada en el ámbito hospitalario. 1 EQUIPAMIENTO NECESARIO: Jabón antiséptico y
Más detallesTOMA DE MUESTRA SANGUINEA
DEFINICIÓN: TOMA DE MUESTRA Procedimiento que permite acceder al torrente sanguíneo para extraer una pequeña muestra de sangre, que será utilizada en diversas pruebas. Dr. Eddie Alonzo RIII Medicina Interna
Más detallesInstructivo. Manejo de los Residuos Infecciosos
Página 1 de 5 1. Objetivo Describir las actividades necesarias (clasificación, almacenamiento, tratamiento y eliminación), para realizar el manejo de los residuos infeciosos. 2. Alcance Se aplica a todas
Más detallesDRENAJES DE HERIDAS. Proporcionar los cuidados necesarios para el funcionamiento óptimo del drenaje y evitar complicaciones.
Página 1 de 7 DRENAJES DE HERIDAS 1.-OBJETIVO Proporcionar los cuidados necesarios para el funcionamiento óptimo del drenaje y evitar complicaciones. 2.-DEFINICIÓN Drenaje: sistema mecánico de eliminación
Más detallesde 08:00 a 12:45 días sábado. Días posteriores: de 08:00 a 19:45 hrs. de lunes a viernes. de 08:00 a 12:45 días sábado.
RECOLECCIÓN DE ORINA 24 HORAS TEST DE GRAHAM GLICEMIA PRE Y POST PRANDIAL No ingerir bebidas alcohólicas tres días antes de la toma de Disponibilidad de dos horas para la realización del examen. Solicitar
Más detallesGUIA CLINICA MANEJO DE CATETER VENOSO CENTRAL
Pág.1 de 9 1. OBJETIVO Realizar el seguimiento y cuidados necesarias a todo catéter venoso central durante la atención del paciente en el domicilio con el fin de evitar infecciones, asegurar la permeabilidad
Más detalles