Pontificia Universidad Católica del Ecuador Facultad de Enfermería

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1 Pontificia Universidad Católica del Ecuador Facultad de Enfermería Av. 12 de Octubre 1076 y Roca Apartado postal Fax: Telf: ext 1802 Quito - Ecuador 1. DATOS INFORMATIVOS: MATERIA: MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA CÓDIGO: CARRERA: Enfermería, Nutrición Humana y Terapia Física NIVEL: Segundo No. CRÉDITOS: 3 (tres) SEMESTRE/AÑO ACAD: Segundo semestre INICIO: 18 de enero del FIN: 21 de mayo del PROFESOR: Blgo. Diego Guevara Capelo Grado académico o título profesional Licenciado en Ciencias Biológicas Maestría en Teología. Breve indicación de la línea de actividad académica Área de Entomología; Ecología Agrícola. Horario de atención a estudiantes: Miércoles 10h30-11h30. Correo electrónico: djguevara@puce.edu.ec Teléfono: ext DESCRIPCIÓN DEL CURSO Este curso analizará aspectos teóricos y prácticos de los organismos microscópicos procariotes, eucariotes unicelulares y multicelulares, parásitos y virus en relación a su morfología, estructura, metabolismo, crecimiento, diversidad metabólica, e identificación. El curso, además, tratará de su epidemiología, interacciones con organismos superiores y su distribución en la naturaleza. La parte práctica refuerza los conocimientos teóricos y permite lograr una visión real del mundo de los microorganismos, así como también enseña al estudiante la forma correcta de manipulación de procariotes (bacterias) y los métodos asépticos que evitan la contaminación. 3. OBJETIVO GENERAL: Analizar aspectos teóricos y prácticos de los organismos microscópicos procariotes y eucariotes en relación a su morfología, estructura, metabolismo, epidemiología, interacciones con organismos superiores y su distribución en la naturaleza. 4. OBJETIVOS ESPECÍFICOS: Al final del curso teórico los estudiantes serán capaces de: Identificar e identificar los principales tipos de microorganismos. Describir las principales características estructurales, funcionales, fisiológicas y genéticas de los distintos tipos de microorganismos. 1

2 Explicar la importancia de los diferentes grupos, haciendo énfasis en el papel patológico, preventivo y de control. Diferenciar las formas de infección a través de diferentes vehículos como aire, suelo y alimento. Al final del curso práctico los estudiantes serán capaces de: Utilizar técnicas asépticas de laboratorio, para evitar contaminación. Utilizar las técnicas básicas de observación, aislamiento, cultivo, identificación, control y manipulación de microorganismos. Realizar análisis y métodos básicos desinfección y esterilización. 5. CONTENIDOS 5.1. INTRODUCCIÓN A LA MICROBIOLOGÍA Concepto e historia de la Microbiología Los microorganismos como células procarióticas y eucarióticas Diversidad microbiana 5.2. BIOLOGÍA CELULAR Morfología de los procariotes Agrupación de los procariotes Estructura de una célula procariote (cápsula, pared, la membrana citoplasmática, DNA, plásmidos, pili, fimbrias, flagelo) Estructura de una célula eucariote Tamaño de los microorganismos Esporas Nutrición y metabolismo microbiano, requerimientos específicos: Clasificación de los microorganismos por su modo de obtención de energía, temperatura, efecto del oxígeno y sal DIVERSIDAD PROCARIOTICA (BACTERIAS) Diferencias entre bacterias Gram Positivas y Gram negativas Diferencias entre bacterias y Arqueas Reproducción asexual: fisión binaria y crecimiento exponencial. Reproducción sexual: conjugación, transformación y transducción Enfermedades transmitidas por microorganismos de ambiente Microflora normal del cuerpo 5.4. MICROORGANISMOS Y ENFERMEDAD Bacterias patógenas y epidemiología Infección bacteriana: identificación, transmisión, proceso de infección MICROBIOLOGÍA INDUSTRIAL Resistencia Antibióticos Probióticos Desinfectantes 5.6. DIVERSIDAD EUCARIÓTICA (HONGOS Y PROTOZOOS) Generalidades Importancia clínica Enfermedades asociadas 2

3 5.7. PARÁSITOS MORFOLOGÍA, BIOLOGÍA Y PATOGENÍA 7.1 Ascaridiosis. Ascaris lumbricoides. Morfología. Biología. Patogenia 7.2 Esquistosomiosis o Bilharzia. Schistosoma mansoni. 7.3 Fascioliosis. Fasciola hepatica. 7.4 Paragonimiosis. Paragonimus sp. 7.5 Teniosis. Taenia solium y Taenia saginata. 7.6 Cisticercosis. Cysticercus cellulosae VIRUS 8.1 Propiedades generales de los virus 8.2 Enfermedades virales 8.3 Prevención y tratamiento de infecciones virales LABORATORIO 1. Contagio: una epidemia simulada 2. Diversidad microbiana 3. Técnicas básicas de cultivo y aislamiento de colonias 4. Tinciones 5. Microorganismos del ambiente 6. Agentes físicos y químicos como medio de control bacteriano 6. METODOLOGÍA, RECURSOS El proceso enseñanza-aprendizaje partirá del contacto directo entre el docente-facilitador con los estudiantes y se complementará con el trabajo autónomo de los jóvenes profesionales en formación. El contacto directo con el estudiante constará de unas 48 horas de trabajo (16 horas por crédito) distribuidas en actividades como: sesiones de clase sobre temas específicos, consulta y exposiciones sobre artículos científicos sobre temas afines a los contenidos de la materia, y prácticas de laboratorio como un complemento a la teoría. Además se mantendrá una constante comunicación con los estudiantes a través del internet en caso de consultas y envío de tareas. El trabajo autónomo de los jóvenes profesionales en formación comprenderá unas 48 horas de trabajo (16 horas por crédito) y serán distribuidas en las lecturas asignadas, preparación de las exposiciones, elaboración de los resultados y conclusiones de los laboratorios, consultas sobre temas planteados en los laboratorios. 3

4 Asignatura: Microbiología y Parasitología ORGANIZACIÓN DOCENTE SEMANAL ACTIVIDADES DE INTERACCIÓN DOCENTE - ESTUDIANTES TRABAJO AUTÓNOMO DEL ESTUDIANTE SEMANA (1-16) N de horas de clases teóricas (HORAS PRESENCIALES) N de horas de clases prácticas, laboratorios, talleres N de horas de tutorías especializadas (HORAS NO PRESENCIALES) ACTIVIDADES (Descripción) N de horas EVALUACIONES TEMAS A TRATAR (N del tema, unidad, o capítulo descritos en Contenidos) 1 semana 2 1 Análisis de diferencias morfol semana 2 1 Análisis de funciones semana 2 1 Descripción de términos semana 2 1 Descripción de términos semana 2 1 Descripción de términos semana 2 1 Análisis de procesos 3 1ra. 3 7 semana 2 1 Análisis de procesos semana 2 1 Mapas de infección semana 2 1 Mapas de infección semana 2 1 Cuadros de infección y trat semana 2 1 Cuadros de infección y trat. 3 2da semana 2 1 Resúmenes de investigaciones semana 2 1 Resúmenes de investigaciones semana 2 1 Elaboración de ciclos semana 2 1 Elaboración de ciclos semana 2 1 Elaboración de comentarios 3 3ra. 8 EXÁMENES. La elaboración de un examen objetivo tomará en cuenta todas las actividades realizadas en el desarrollo del curso. 4

5 7. EVALUACIÓN 7.1. CRONOGRAMA DE EVALUACIONES: 1ra. del 22 al 26 de febrero de da del 29 de marzo al 02 de abril de ra. del 03 al 07 de mayo de Exámenes Finales..del 17 al 21 de mayo de SISTEMA DE CALIFICACIÓN (puntaje asignado a pruebas parciales) Prueba parcial 1: 10 puntos Prueba parcial 2: 10 puntos Prueba parcial 3: 10 puntos Examen Final: 20 puntos TOTAL 50 puntos 7.3. FECHA DE ENTREGA DE CALIFICACIONES EN SECRETARÍA: Nota 1: Hasta el 05 de marzo de Nota 2: Hasta el 09 de abril de Nota 3: Hasta el 14 de mayo de Nota del Examen Final: Hasta el 28 de mayo de BIBLIOGRAFÍA Textos recomendados: Alcamo, I.E FUNDAMENTALS OF MICROBIOLOGY, 4ta. Ed., The Benjamin/Cummings Publishing Company, CA, USA. Atlas, R.M., 1999 MICROBIOLOGÍA, Fundamentos y Aplicaciones, Compañía Editorial Continental, SA de CV, México. Biggs, Kapicka, Lundgren, 2000, Biología. La dinámica de la vida, Primera Edición en Español, Mc Graw Hill, México. Bradshaw L.J., 1997, MICROBIOLOGÍA DE LABORATORIO, Editorial El Manual Moderno, México. Curtis, H. y Barnes, N.S Biología. 7ta. Edición. Editorial Médica Panamericana, España. Freeman Bob a., 1999, MICROBIOLOGÍA DE BURROWS, 22ª ED., Ed. Interamericana Mc-Graw- Hill, México. Quentin N. Myrvik, Russell S. Weiser, 1997, BACTERIOLOGÍA Y MICOLOGÍA MÉDICAS, Ed. Mac Graw_Hill, Interamericana, México Koneman, E. A., Stephen, V., Dowel, H. Sommers Diagnostic Microbiology, J. B. Lippincott Company, Philadephia, Toronto. 5

6 Publicaciones de Revistas: Letters in Applied Microbiology, Microbial Ecology, Microbiological Reviews, Journal of Basic Microbiology, Journal of Bacteriology, Infection-and-Immunity, Applied Biochemistry and Microbiology, FEMS Microbiology Reviews. Raven P, Johnson G, Mason K, A., and Losos J, 2007, Biology, eight edition, Mc Graw Hill Higher Education, United State. Textos de referencia: Madigan M, Matinko J y Parker J, 2004, Biología de los Microorganismos, Pearson Prentice Hall, Madrid. Por el Consejo de Facultad f) Decano fecha: 14 de diciembre del 2009 MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA (ENFERMERÍA) 6

7 INSTRUCCIONES GENERALES PARA EL TRABAJO EN LABORATORIO 1. Utilice un mandil (abotonado) en cada práctica de Laboratorio. 2. Coloque sus pertenencias personales en la última mesa del laboratorio. No las deje amontonadas sobre la mesa en donde va a trabajar ya que puede haber contaminación. 3. Sea cuidadoso/a. Recuerde que usted es responsable del equipo y materiales con los que trabajará. 4. Jamás saque del laboratorio equipos, materiales o cultivos. 5. No se permite comer, beber, fumar ni masticar chicle en el laboratorio. 6. Lávese meticulosamente las manos con agua y jabón antes y después de cada práctica. Utilice desinfectante al final. Repita este procedimiento incluso cuando salga por un breve período. 7. Limpie la mesa con desinfectante antes y después de cada práctica. 8. Asegúrese de descartar apropiadamente el material contaminado. Habrá recipientes destinados al papel y al material de vidrio contaminados. 9. No bote desperdicios en los lavabos ni en ningún lugar del laboratorio, como piso, mesas etc., estos deben permanecer siempre limpios. 10. Notifique inmediatamente al instructor si ocurre algún accidente: quemaduras, heridas, rompimiento de material, daño del equipo, derramamiento de alguna sustancia etc. 11. Asegúrese de que todas las llaves de agua y gas, así como todos los aparatos eléctricos en su mesa de trabajo estén apagados, desconectados, cerrados y/o colocados en el lugar correspondiente antes de abandonar el laboratorio. 12. Es INDISPENSABLE Y OBLIGATORIO que limpie bien los lentes del microscopio antes de guardarlo, utilice para ello la tela sin pelusa o el papel especial para lentes. 13. Debe ser puntual. 14. Durante las prácticas debe existir disciplina en el Laboratorio. 15. Evite llevarse objetos a la boca (lápices etc.) 16. Mantenga sus manos alejadas de la cara y el pelo mientras trabaja. 17. No permita que su pelo se queme en el mechero. 18. No transporte, mueva o saque del laboratorio equipos, medios de cultivo, cultivos bacterianos u otros. 19. Permanezca en su sitio de trabajo. No de vueltas innecesarias, así evitará confusión y riesgo de accidentes. 20. Si se derrama o cae un cultivo vivo, coloque inmediatamente papel periódico sobre el material y ponga abundante desinfectante sobre el papel hasta cubrir por completo el área contaminada. Espere 15 minutos, recoja y descarte todo apropiadamente en el recipiente adecuado. 21. Lea cada ejercicio de la práctica antes de llegar a clase. Se tomarán pruebas sin previo aviso sobre lo que se va a hacer en la sesión de laboratorio. 22. Deberá entregar un informe de cada práctica terminada. No se aceptarán informes atrasados, a menos que haya justificación comprobada. MATERIALES QUE LOS ESTUDIANTES DEBERÁN TENER PARA CADA SESIÓN DE LABORATORIO 1. Mandil 2. Manual de Laboratorio 3. Un marcador de vidrio o lápiz de cera (que escriba sobre vidrio) 4. Un lápiz de dibujo. 5. Lápices de colores. 6. Una tela sin pelusa o papel para limpiar lentes. 7. Una caja de fósforos. 8. Jabón y toalla. 9. Una esponja. 10. Papel periódico. 11. Cinta scotch. 12. Hojas de papel bond. 13. Tijera 7