Procesos de Detección y Diagnóstico de la TB y TB Resistente

Transcripción

1 Procesos de Detección y Diagnóstico de la TB y TB Resistente Reunión Técnica para Difusión de Documento Normativo: Norma Técnica de Salud para la Atención Integral de la Persona Afectada por Tuberculosis. Lima, 4-6 de diciembre de 2013

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3 Proceso de detección (1) Identificar a los SR (tos y flema x 15 días) Formas de detección: En el EESS: Continua Obligatoria Permanente En la comunidad: Todos los servicios del EESS Estudio de los contactos de TODOS los casos TB pulmonar BAAR(+) o (-) o TB extrapulmonar Estudios de posibles brotes NO campañas masivas comunitarias

4 Flujo del proceso de detección 1. Solicitar dos baciloscopía: primera en la consulta, segunda del día siguiente 2. Llenar correctamente bacteriológica ficha de solicitud de investigación 3. Registrar al SR en el libro de registro de SR 4. Explicar el procedimiento de toma de muestra 5. VERIFICAR que la muestra sea de 5ml 6. Entregar segundo frasco rotulado 7. Si hay riesgo de no cumplir segunda DIAGNOSTICO EN EL MISMO DIA muestra aplicar: 8. Conservar la muestra protegida de la luz x 24 horas sin refrigeración o 72 horas a 4ºC 9. Transportar en cajas refrigerantes 10. Laboratorio recibe la muestra y registra en el Libro de Registro de Muestras

5 Diagnóstico por baciloscopía Baciloscopía directa por Ziehl Neelsen Toda muestra de esputo BAAR (+) debe conservarse refrigerada y remitirse al LRR para PS rápida. Todo baciloscopista público o privado debe estar capacitado de acuerdo a los manuales del INS.

6 Diagnóstico por cultivo Métodos aceptados: Löwenstein Jensen, Ogawa, agar 7H10, MGIT, MODS Indicaciones de cultivo: Diagnóstico SR en seguimiento diagnóstico, paucibacilares, muestras valiosas: biopsias, aspirados, líquidos biológicos, etc. Control de tratamiento: i) a todo BAAR(+) a partir del segundo mes de tratamiento, ii) a todo TB sensible al terminar el tratamiento, iii) mensualmente a todo paciente en esquema TB resistente Para realizar PS indirecta: se hace cultivo a partir de muestras pulmonares o extra-pulmonares

7 Diagnóstico clínico - radiológico Clínica de TB pulmonar: síntomas respiratorios (tos, flema, dolor torácico) más síntomas generales (fiebre, baja de peso). Clínica extra-pulmonar: de acuerdo a localización Rayos X a todo caso probable de TB pulmonar y pacientes en seguimiento diagnóstico.

8 Diagnóstico TB extra-pulmonar Según manifestaciones de órgano comprometido Exámenes auxiliares: bacteriología, histoaptología, inmunología, estudio citoquímico, otras imágenes. Las pruebas bacteriológicas: Baciloscopía Cultivo sólido y/o líquido: MODS, MGIT PS a partir de cultivos sólidos: convencionales o rápidas. Pruebas de tipificación Envío de muestras: dividida en suero fisiológico (bacteriología) yen formol al 10% (histología)

9 Diagnóstico de TB latente Es responsabilidad del médico La tuberculina es el método de diagnóstico: positiva: 10 mm en no inmunodeficientes 5 mm en VIH, desnutridos y terapia inmunosupresora, neoplasias, etc. El personal de enfermería es responsable de la aplicación y lectura del PPD

10 Seguimiento diagnóstico Si hay fuerte sospecha: clínica, radiología o epidemiología, pero tiene dos baciloscopías negativas. Solicitar dos muestras más de esputo: Baciloscopía 3 y 4 Cultivo 1 y 2 (medio sólido o líquido) Solicitar dos muestras de esputo cada semana para baciloscopía, siempre que el paciente continúe con síntomas respiratorios, hasta la obtención del resultado del cultivo. Mientras aplicar diagnóstico diferencial.

11 Identificación y Tipificación de micobacterias Identificación del complejo M. tuberculosis: Por inmunocromatografía (Capilia) y prueba molecular Indicaciones: i) Resultado de una PS rápida resistente a INH y RIF ii) Cultivo de persona con VIH. El laboratorio donde se identifiquen cepas que NO pertenecen al complejo MTB debe remitir la cepa al INS para tipificación (determinación de especie) en el INS por pruebas moleculares.

12 Pruebas rápidas fenotípicas para detectar TB-MDR (tamizaje) MODS: Prueba directa (a partir de muestras de esputo), simultáneamente TB y TB- MDR Indicada para resistencia a H y R Resultados en promedio 7 a 14 días En TB pulmonar con baciloscopía (+), (-) o paucibacilar Indicada antes o durante el tratamiento Nitrato reductasa (Griess): Prueba directa, a partir de muestras de esputo baciloscopía positiva (una cruz o más) Detecta resistencia a H y R Resultados entre 14 a 28 días MGIT (BACTEC): Diagnóstico de TB y de sensibilidad a medicamentos de 1 línea: HRES + Z Resultado entre 4 a 12 día desde el cultivo positivo Indicada: detección de TB pulmonar y extra-pulmonar a partir de muestras pulmonares y extra-pulmonares: TB infantil, trabajadores de salud, VIH+, comorbilidades (diabetes, cáncer, IRC), TB SNC y otras extra-pulmonares.

13 Prueba rápida molecular de sondas de ADN (Genotype) Directa en muestras de esputo e indirecta en cultivos positivos Identifica complejo MTB y detecta mutaciones para rifampicina e isoniacida Resultados en 72 horas Se realiza en el INS y LRR e intermedios Indicaciones: Detección directa o indirecta de resistencia a H y R e identificación del complejo MTB en: Pacientes con TBP FP Pacientes con TB FN o extrapulmonar con cultivo positivo Antes o durante el tratamiento No se debe usar para monitorear respuesta al tratamiento La prueba para medicamentos de segunda línea para identificar XDR en: MDR multitratados, fracasos y contactos XDR

14 Pruebas de sensibilidad convencionales Método de proporciones en agar en placa 1 y 2 línea: En el INS Indicaciones: i) paciente con PS rápida o 1 línea con resistencia a H, R o ambas, antes o durante tratamiento, ii) paciente con TB resistente con inadecuada evolución clínica Método de proporciones en medio LJ 1 línea En LRR Indicaciones: cultivos de muestras extrapulmonares y TB pulmonar frotis negativo cultivo positivo, donde NO se disponga MODS o Genotype

15 Procedimiento para la detección de TB resistente por pruebas rápidas Toda persona con TB pulmonar debe ser evaluado por PS rápida para detectar resistencia a H y R ANTES de INICIAR TRATAMIENTO 1. TBp FP debe hacerse prueba molecular o MODS 2. TBp FN debe hacerse MODS 3. De no acceder a MODS o prueba hacerse cultivo y PS convencional molecular debe 4. Toda persona con PS rápida resistente a H o R debe tener un resultado de PS convencional1 y 2 línea 5. Resultado de prueba molecular en 3 días de recibida la muestra por NETLAB 6. Los laboratorios deben garantizar el registro en NETLAB 7. No hacer PS rápida en casos confirmados de TB-MDR

16 Administración de resultados por NETLAB - INS La administración de cultivos, identificación y tipificación de micobacterias se hace pro NETLAB El acceso al NETLAB será proporcionado por el INS en coordinación con la Los laboratorios regionales, intermedios y locales deberán asegurar la entrega de los resultados en las 24 horas a la, luego ser emitido por NETLAB. Los jefes de los EESS son responsables de asegurar que los resultados del NETLAB sean evaluados por los médicos tratantes.