Alta resistencia de los microorganismos nosocomiales en el Hospital San Jerónimo de Montería

Transcripción

1 Alta resistencia de los microorganismos nosocomiales en el Hospital San Jerónimo de Montería Dalis Pérez* Salim Máttar** Máximo Mercado*** * CEIM, Centro de Investigación en Infectología y Microbiología, Montería Córdoba. ** Instituto de Investigaciones Biológicas del Trópico, Universidad de Córdoba, Montería. Correspondencia: Universidad de Córdoba, Instituto de Investigaciones Biológicas del Trópico. Montería. Teléfono: (0947) smattar@escarsa.net.co; mattarsalim@hotmail.com *** Médico Internista Hospital San Jerónimo CEIM. Montería, Córdoba. RESUMEN Objetivo: establecer la actividad in vitro de los antibióticos contra los gérmenes aislados de infecciones intrahospitalarias en el Hospital San Jerónimo (HSJ) de Montería. Materiales y métodos: se realizó un estudio prospectivo descriptivo de 152 casos consecutivos de infecciones nosocomiales. Se recolectaron muestras de patógenos intrahospitalarios en el Hospital San Jerónimo de Montería. Resultados: se encontraron 99 (65%) bacilos Gram negativos, 45 (30%) cocos Gram positivos, género estafilococo, y 8 (5%) Candida albicans. El principal bacilo aislado fue Pseudomonas spp. (n=25), seguido por Enterobacter spp. (n=16), Klebsiella spp. (n=13), Proteus spp. (n=12) y Escherichia coli (n=11), entre otros. Se aislaron 45 estafilococos coagulasa negativos (SCN) y 13 Staphylococcus aureus. Las cepas de Pseudomonas spp. fueron 60% resistentes o más frente a piperacilina, ticarcilina, cefotaxima, ceftriazona, gentamicina y netilmicina. Enterobacter spp. fue 100% resistente a amoxacilina y cefalotina, y 60% resistente a amoxacilina más ácido clavulánico, ceftrizona, ceftazidima,

2 aztreonam, trimetoprim-sulfametoxasol, tobramicina, gentamicina, netilmicina y ciprofloxacina. Klebsiella spp. fue 60% resistente a ticarcilina, y trimetoprim sulfametoxazol. Proteus spp. y E. coli fueron 60% resistentes a amoxacilina. S. aureus fue resistente a la oxacilina en 45%, mientras que los SCN en 44%. Se encontraron 64 cepas multirresistentes, de las cuales 50% fueron bacilos Gram negativos y el 50% estafilococos. Conclusiones: se demostró que en el HSJ de Montería existe una alta resistencia a los principales antimicrobianos usados en la práctica clínica. Se deben tomar serias y drásticas medidas de control para evitar la diseminación de la resistencia antibiótica. Palabras clave: resistencia, antibióticos, nosocomial, Montería. ABSTRACT Objective: To establish the activity in vitro of the antibiotics against isolated germs of hospital infections at the Hospital San Jerónimo of the city of Montería. Materials and methods: A descriptive and prospective study of 152 serial cases of nosocomial infections was carried out. Samples of intrahospital pathogens were collected in the Hospital San Jerónimo of the city of Montería. Results: They were 99 (65%) negative Gram bacilli, 45 (30%) Gram positive Staphylococcus, and 8 (5%) Candida albicans. The main isolated bacillus was Pseudomonas spp. (n=25), continued by Enterobacter spp. (n=16), Klebsiella spp. (n=13), Proteus spp. (n=12), and Escherichia coli (n=11). 45 SCN and 13 Staphylococcus aureus were isolated. The strains of Pseudomonas spp. were 60% resistant or more against of piperaciline, ticarciline, cefotaxime, ceftriazone, gentamicine and netilmicine. Enterobacter spp. was 100% resistant to amoxaciline and cefalotine, and 60% resistant to amoxaciline and clavulanic acid, ceftrizone, ceftazidime, aztreonam, trimethoprim-sulfametoxasol, tobramicine, gentamicine, netilmicine and ciprofloxacine. Klebsiella spp. was 60% resistant to ticarciline, and trimethoprim-sulfametoxazole. Proteus spp and E. coli were 60% resistant to amoxaciline. S. aureus went resistant to the oxaciline in 45%, while the SCN 44%. 64 multiresistant strains were found, 50% of which were Gram negative bacilli and the 50% Staphylococci. Conclusions: There is high resistance to the main antibiotics at the HSJ of Monteria in the clinical practice. Serious and drastic control measures must be taken to avoid antibiotic resistance dissemination. Key words: resistance, antibiotics, nosocomial, Montería.

3 INTRODUCCIÓN La infección nosocomial se ha reconocido desde hace más de un siglo como una complicación importante del cuidado hospitalario al paciente, lo cual da como resultado un incremento en el índice de morbimortalidad, tiempo de estadía del paciente en el hospital y costos del cuidado directo del paciente. En los últimos 20 años, el interés por el conocimiento y control de las infecciones hospitalarias ha tomado gran auge, ya que representa un problema importante de salud pública. Uno de los factores más preponderantes para la persistencia de las enfermedades infecciosas intrahospitalarias es la capacidad de los microorganismos para evadir la acción de los agentes antimicrobianos. Es esencial para el profesional de la salud el conocimiento de la situación actual de la sensibilidad de los principales gérmenes que causan infección intrahospitalaria, con el fin de sugerir un control del uso de antibióticos y evitar al máximo el surgimiento de cepas multirresistentes que desembocan en sobrecostos y fallas terapéuticas. El objetivo principal de este trabajo fue el establecer la actividad in vitro de los antibióticos contra los gérmenes aislados de las infecciones intrahospitalarias en el Hospital San Jerónimo de Montería. MATERIALES Y MÉTODOS Se realizó un estudio prospectivo, descriptivo, con un muestreo no probabilístico, de 152 casos consecutivos de infecciones nosocomiales. Se recolectaron muestras de patógenos intrahospitalarios en el Hospital San Jerónimo de Montería; esta última tiene habitantes y una temperatura anual promedio de 30 C. Muestra En el laboratorio clínico del Hospital de San Jerónimo de segundo nivel, se procesaron 152 muestras de los diferentes servicios de dicho hospital (tabla 1). Se incluyeron pacientes que adquirieron infección nosocomial en un tiempo mínimo de 48 horas después de su admisión; dicha infección no estaba presente ni incubándose en el momento de su ingreso al hospital. Para el aislamiento e identificación de los microorganismos se emplearon medios de cultivo convencionales[1,2]. Los gérmenes se identificaron con el sistema de BioMérieux (Marcy L Etoile, France) para bacilos Gram negativos (API20E) y cocos Gram positivos (API STAPH o API STREP). Para la susceptibilidad se emplearon dos métodos, el método de difusión en agar Bauer y Kirby y el método por puntos de corte (break point) de BioMérieux (Marcy L Etoile, Francia). El método de difusión de Bauer y Kirby se realizó según el Clinical Microbiology Producer Handbook[2]. Los puntos de corte se realizaron con la técnica de antibiograma de BioMérieux (Marcy L Etoile, Francia). Los antibióticos

4 betalactámicos usados contra los bacilos Gram negativos fueron: amoxacilina (Amo=8-16 mg/l), amoxacilina más ácido clavulánico (AMC=8/4-16/8 mg/l), piperacilina (PIC=16-64 mg/l), piperacilina más tazobactam (TZP=16/4-64/4 mg/l), ticarcilina (TIC=16 mg/l), cefalotina (CFT=8 mg/l), cefotaxima (CTX=8-32 mg/l), aztreonam (ATM=8 mg/l), imipenem (IMI=4 mg/l) y ceftazidime (CAZ=1 mg/l). Los Gram positivos fueron probados contra penicilina (PEN=0,12 mg/l), oxacilina (OXA=2 mg/l), cefalotina (CFT=8-10 mg/l), ampicilina más sulbactam (FAM=8/4-16/8 mg/l), gentamicina (GEN=4-8 mg/l), netilmicina (NET=8-16 mg/l), clindamicina (CLI=0,5-2), vancomicina (VAN=4-16 mg/l), teicoplanina (TEC=8-16 mg/l). RESULTADOS Se aislaron 152 cepas causantes de infección nosocomial (IN), distribuidas así: 99 (65%) fueron bacilos Gram negativos, 45 (30%) cocos Gram positivos del género estafilococo y 8 (5%) Candida albicans (tabla 1). El principal bacilo Gram negativo aislado fue Pseudomonas spp. (n=25), seguido por Enterobacter spp. (n=16), Klebsiella spp. (n=13), Proteus spp. (n=12) y Escherichia coli (n=11), entre otros. Se aislaron 45 estafilococos coagulasa negativa (SCN) y 13 Staphylococcus aureus. El origen de las muestras se distribuyó así: orina (n=60), secreciones (n=60), sangre (n=24) y catéter (n=11), entre otros. El servicio con mayor infección nosocomial fue cirugía (n=32), seguido de la UCI (n=23), pensionados (n=22) y pediatría (n=20), entre otros (tabla 1). Las cepas de Pseudomonas spp. fueron 100% resistentes a amoxacilina, amoxacilina más ácido clavulánico, cefalotina y trimetoprimsulfametoxasol; fueron 60% resistentes o más frente a piperacilina, ticarcilina, cefotaxima, ceftriazona, gentamicina y netilmicina (tabla 2). Enterobacter spp. fueron 100% resistentes a amoxacilina y cefalotina y 60% resistente a amoxacilina más ácido clavulánico, piperacilina, ticarcilina, cefotaxima, ceftrizona, ceftazidima, aztreonam, trimetoprim-sulfametoxasol, tobramicina, gentamicina, netilmicina, pefloxacina y ciprofloxacina. Klebsiella spp. fue 100% resistente a amoxacilina y 60% resistente frente a ticarcilina, cefalotina y trimetoprim-sulfametoxazol (tabla 2). Proteus spp y E. coli fueron 60% resistentes a amoxacilina. Serratia spp. fue 100% resistente a amoxacilina, amoxacilina más ácido clavulánico y a cefalotina; sólo fue 88% resistente a ticarcilina. Acinetobacter spp. (tabla 2) fue resistente en 60% o más frente a amoxacilina, amoxacilina más ácido clavulánico, piperacilina, piperacilina más tazobactam, ticarcilina, cefalotina, aztreonam, trimetoprim sulfametoxazol, tobramicina, gentamicina, netilmicina, pefloxacina y ciprofloxacina. Los cocos Gram positivos fueron 60% resistentes o más frente a penicilina, eritromicina y tetraciclina. Además, los SCN mostraron la misma resistencia frente a cefalotina, clindamicina y rifampicina (tabla 2). S. aureus fue resistente a la oxacilina en 45%, mientras que los SCN en 44%; no se presentó resistencia a los glicopéptidos. Se encontraron 64 cepas multirresistentes de las cuales el 50% fueron bacilos Gram negativos y el 50% en estafilococos (figura 1).

5 DISCUSIÓN En las dos últimas décadas no se habían realizado estudios que indicaran cuáles eran los patógenos causantes de la infección nosocomial en el Hospital San Jerónimo de Montería. Este trabajo logró establecer la etiología y la susceptibilidad antimicrobiana de los gérmenes aislados intrahospitalaria-mente en dicho hospital. La frecuencia de aparición de los gérmenes Gram negativos nosocomiales aislados de este estudio (Pseudomonas spp., Enterobacter spp., Klebsiella spp., Proteus spp., E. coli, Serratia spp.) parecen coincidir con las encontradas por otros autores, como Hortal et al. (3) en Uruguay, quienes determinaron mayor frecuencia de E. coli, Klebsiella spp., Acinetobacter spp., Enterobacter spp., S. marcences y Pseudomonas spp. en infección nosocomial. A pesar de tener una distribución diferente entre los dos países, sigue siendo evidente el predominio de los Gram negativos sobre los Gram positivos(4). Sin embargo, al comparar la distribución de los cocos Gram positivos de este estudio, Staphylococcus coagulasa negativos (n=32) y S. aureus (n=13), se observa una mayor distribución a los reportados por Máttar et al.(11,13), quienes aislaron S. aureus (n=9) y Staphylococcus epidermidis (n=4), ni con los reportes de Hortal et al.[3] que recuperaron S. aureus (n=39) y Staphylococci coagulasa negativos (n=13). Esta mayor distribución en los aislamientos de estafilococos pueden estar relacionados con las escasas medidas de limpieza y asepsia en los hospitales y en el personal sanitario. Este fenómeno podría traducirse en un grave problema de salud pública por la posible diseminación de cepas de S. aureus meticilino-resistentes[7-10]. Tabla 1 Distribución de microorganismos por servicio Microorganismo N QX UCI PE PED NEO MP MAT MIM (%) (%) (%) (%) (%) (%) (%) (%) (%) Gram negativos (65) (25) (18) (16) (9) (13) (10) (3) (5) P. aeruginosa (16) Enterobacter spp (12) Klebsiella spp (8) Proteus spp (8) E. coli (7)

6 Microorganismo N QX UCI PE PED NEO MP MAT MIM (%) (%) (%) (%) (%) (%) (%) (%) (%) Serratia spp (5) Acinetobacter spp (5) Flavobacterium spp (2) Citrobacter spp (1) Chryseomonas luteola (1) Xantomonas spp (1) Gram positivos (30) (16) (11) (13) (24) (8) (11) (11) (4) SCN (21) S. aureus (8) Levaduras (5) C. albicans (5) Total 152 SCN: Staphylococci coagulasa negativa; QX: cirugía; UCI: unidad de cuidados intensivos; PE: pensionados; PED: pediatría; NEO: neonatos; MP: media pensión; MAT: maternidad; MIM: medicina interna mujeres.

7 Tabla 2 Porcentaje de cepas nosocomiales resistentes Bacteria A A P T T C C C C A I T T A G N P C M M I Z I F T R A T M S O K E E E I O C C P C T X O Z M I U B N N T F P BGN Pseudomonas Enterobacter Klebsiella Proteus E. coli Serratia Acinetobacter Otros GN Bacteria P O C F G N E C P C T T F R V T E X F A E E R L E I E S U F A E N A T M N T Y I F P T U R A N C CGP SCN S. aureus BGN: Gram negativos; CGP: Gram positivos; amoxacilina (Amo=8-16 mg/l); amoxacilina + ácido clavulánico (AMC=8/4-16/8 mg/l); piperacilina (PIC=16-64 mg/l); piperacilina + tazobactam (TZP=16/4-64/4 mg/l); ticarcilina (TIC=16 mg/l); cefalotina (CFT=8 mg/l); cefotaxima (CTX=8-32 mg/l); aztreonam (ATM=8 mg/l); imipenem (IMI=4 mg/l) y ceftazidime (CA1=1 mg/l); penicilina (PEN=0,12 mg/l); oxacilina (OXA=2 mg/l); cefalotina (CFT=8-10 mg/l); ampicilina + sulbactam (FAM=8/4-16/8 mg/l); gentamicina (GEN=4-8 mg/l); netilmicina (NET=8-16 mg/l); clindamicina (CLI=0,5-2); vancomicina (VAN=4-16 mg/l); teicoplanina (TEC=8-16 mg/l).

8 Figura 1. Distribución de cepas nosocomiales multirresistentes.

9 Con respecto a los servicios con mayores tasas de infecciones nosocomiales, el servicio de cirugía seguido de la UCI fueron los que presentaron mayor frecuencia. Esto puede ser debido al grado de contaminación de la herida, la duración de la intervención y el estado nutricional de los pacientes[11]; también a los procedimientos médicos propios de la UCI como son la cateterización, el uso de sondas y la ventilación mecánica, que se convierten en la vía de entrada a los microorganismos, el uso profiláctico de antimicrobianos de amplio espectro e inmunosupresores y quimioterápicos que se pueden considerar factores importantes predisponentes de infecciones nosocomiales[4,6,10,12-14]. La mayoría de los datos publicados de infección nosocomial coinciden con los reportados en este estudio, con tasas de ataque o de infección nosocomial entre 20% y 30%[3,4,6]. El principal microorganismo aislado en el servicio de UCI del Hospital San Jerónimo fue Pseudomonas aeruginosa, seguido por SCN y Enterobacter spp., entre otros. Robledo et al.[11] determinaron en la UCI en un hospital en Medellín; los gérmenes más frecuentes fueron P. aeruginosa (14%), K. pneumoniae (11%), S. aureus (7%), E. coli (6%), Enterococcus y S. epidermidis (5%)[11]. Aunque la frecuencia de aparición no fueron similares, coinciden los mismos microorganismos en ambos estudios, excepto Enterococci que no se aislaron en nuestro trabajo, posiblemente porque este tipo de germen es más frecuente en UCI de mayor capacidad y en hospitales de niveles tercer y cuarto nivel y, por tanto, de mayor atención a pacientes hospitalizados que el HSJ[4,15]. La resistencia de los Gram negativos al grupo de las penicilinas estuvo por encima de 50%, excepto la piperacilina y el tazobactam que mejoraron su actividad con sólo 30% de las cepas resistentes a esta asociación (tabla 2). Con respecto a la resistencia de los beta-lactámicos, este estudio logró establecer por vez primera el estado actual de la susceptibilidad a este importante grupo de antibióticos en el HSJ. En este sentido, la alta resistencia a la amoxicilina encontrada en los Gram negativos (83%) no es extraña en un medio que hace algunos años la usó indiscriminadamente; su uso clínico en este grupo de gérmenes está prácticamente ad portas de finalizar con el resultado obtenido en este estudio. La asociación del ácido clavulánico mejoró un poco la susceptibilidad de los Gram negativos, pero no lo suficiente ya que un éxito terapéutico de tan sólo 30% es una cifra bastante baja para tomar decisiones en el tratamiento. Las ureidopenicilinas y las carboxipenicilinas, además de ser escasas en nuestro medio, mostraron también una resistencia importante; la piperacilina alcanzó un 52% y la ticarcilina un 71%. Estos resultados son poco útiles como alternativas para el tratamiento contra Pseudomonas spp., Klebsiella spp. y Enterobacter spp., la asociación piperacilina más tazobactam apenas pudo recuperar algo de efectividad alcanzando apenas una sensibilidad de 48% en todos los Gram negativos aislados (tabla 2), tasa bastante baja para un antibiótico costoso y escaso en nuestro hospital de provincia.

10 De otro lado, al analizar la actividad de las cefalosporinas en los Gram negativos, también es importante la resistencia observada. La ceftriaxona y la cefotaxima mostraron 47% y 38% de resistencia, cifras altas para antibióticos de uso estrictamente hospitalario. En contraste a este fenómeno, Klebsiella spp. que se esperaría que tuviera alguna resistencia a estos dos antibióticos resultó ser sensible en 100%, situación extraña ya que la resistencia de este germen está mediada por uno o varios plásmidos que portan la información de beta-lactamasas de amplio espectro (BLEE). Estas últimas son fácilmente transmitidas entre los diferentes miembros de la familia Enterobacteriaceae que se encontraron en nuestro estudio y la presencia de múltiples plásmidos multirresistentes no se puede descartar en el HSJ. Para prevenir la diseminación de las BLEE, una medida disponible en Montería, sería la de restringir al máximo las cefalosporinas de tercera generación; con ello se podría evitar la presión selectiva y la consecuente pérdida de los plásmidos por parte de las bacterias. Ahora bien, estas medidas requieren una estricta vigilancia epidemiológica, ya que se ha reportado que en algunos hospitales después de la descontinuación de la ceftazidima, persisten las BLEE en cepas como Klebsiella y Pseudomonas, gérmenes encontrados en nuestro trabajo[9]. En este estudio se encontraron algunas cepas de Klebsiella con resistencia a la ceftazidima (41%) (tabla 2), lo que hace presumir que existen beta-lactamasas BLEE de los tipos SHV-5, TEM-10- o TEM-12, comunes en Estados Unidos y Europa, y ampliamente diseminadas en los ambientes hospitalarios[9]. Este tipo de betalactamasas tiene una frecuencia de 5% en los Estados Unidos y un poco más altas en Europa[9,10], lo que supondría que en un hospital como el de Montería su frecuencia podría ser incluso mayor. La ceftazidima es el tratamiento de elección para la infección por P. aeruginosa. Este germen tuvo una resistencia importante de 40%, tasa alta para un hospital como el de Montería. En estudios previos hemos obtenido tasas de resistencia alrededor de 50% en hospitales más grandes y con mayor número de pacientes como la Clínica San Pedro Claver, el Hospital Universitario San Ignacio y el Instituto Nacional de Cancerología en Bogotá[11-13]. Según información obtenida del Servicio de Pediatría del HSJ, la ceftazidima se utiliza más frecuentemente que la ceftriaxona, lo que podría sugerir su resistencia inusual en este tipo de ambientes hospitalarios, pero que supone definitivamente que existe algún tipo BLEE en el HSJ por el alto porcentaje de resistencia a la ceftazidima en los gérmenes Pseudomonas (40%), Enterobacter (73%) y Klebsiella (41%). De otro lado, en nuestro estudio el panorama de la susceptibilidad de los carbapenems, como el imipenem, no es tan desastroso como el de las cefalosporinas. Su excelente actividad contra los Gram negativos (82%) es una clara alternativa que poseen los clínicos en nuestro hospital departamental. No obstante, por su alto costo, su uso se autorrestringe para pacientes de escasos recursos que la pueden necesitar. Los carbapenems son la alternativa que se tendría en nuestro hospital en caso de una

11 infección que no cede al tratamiento con cefalosporinas de tercera generación y donde se sospecha la presencia de una BLEE. Sin embargo, se tienen reportes de gérmenes entéricos que poseen resistencia al imipenem y son también BLEE positivos. Este tipo de resistencia es transmitida por un gen codificado en un plásmido productor de beta-lactamasa denominado AmpC[9]. En los últimos años se han evaluado in vitro muchos antibióticos de espectro amplio contra las cepas productoras de beta-lactamasa. Estos estudios muestran 100% de sensibilidad in vitro a los carbapenems, con el meropenem más activo que el imipenem. En cambio, hasta 20% de estas cepas son resistentes a las quinolonas o a cefepime; se ha observado resistencia inclusive para las combinaciones de betalactámicos/inhibidores de las beta-lactamasa. En nuestro caso, se encontraron resistencias de 42% para las quinolonas y de 8% o más para el imipenem. Con respecto a los monobactámicos, el aztreonam, no escapó a la acción de las beta-lactamasas y se encontró una resistencia similar a la de las cefalosporinas, alrededor de 40%. En microorganismos como Enterobacter se determinó una resistencia de 80%, igual a las de ceftriaxona y cefotaxima. Con excepción de E. coli, los resultados indican que el aztreonam no sería un buen antibiótico de elección para tratamientos empíricos en el HSJ. La utilización de los inhibidores de beta-lactamasas como la amoxicilina más ácido clavulánico, en remplazo de las cefalosporinas y que ha sido muy exitosa en algunos hospitales de los Estados Unidos y Europa, no se podría implementar en nuestro hospital debido a que obtuvimos una resistencia de 70% en los Gram negativos. Esta cifra desmotiva la sugerencia de la alternativa de rotación antibiótica con este tipo de fármacos. El análisis de los otros tres antibióticos probados en este trabajo, trimetoprimsulfametoxazol, pefloxacina y ciprofloxacina, tampoco es alentador; la resistencia de 62% para el TM-STX y de 42% para las quinolonas fluoradas hacen ver claramente que estos antimicrobianos ya fueron sobreutilizados. En este tipo de antibióticos existe posiblemente más presión selectiva que sobre los demás estudiados en este trabajo, debido a que son vendidos sin ningún control en las farmacias de Colombia y del departamento de Córdoba. Al analizar la multirresistencia en estos gérmenes (figura 1), los Gram negativos mostraron 32% de multirresistencia; Pseudomonas y Enterobacter mostraron los porcentajes más altos de 19% y 17%, respectivamente, seguidos de Acinetobacter con 6%. La multirresistencia se presentó en tres de las grandes familias de antibióticos más usados en la práctica médica: betalactámicos, aminoglucósidos y sulfas. Nuestros hallazgos son similares a los de otros trabajos de infecciones hospitalarias[11]; sin embargo, somos un hospital apenas de segundo nivel. Siguiendo con la multirresistencia, los Gram positivos mostraron una tasa de 71%, cifra exorbitante en una población restringida a un solo hospital de Montería. La presión de los fármacos expedidos sin control en Montería hace pensar que éste

12 podría ser uno de los factores de la resistencia encontrada en el estudio[10]. La alta resistencia de la oxacilina en S. aureus (42%) presume un grave problema de salud pública en el Hospital San Jerónimo. Nuestra resistencia es más alta que las encontradas en otros estudios de Colombia y el exterior[3,5,11,16]. La tasa de mutación de los microorganismos es un fenómeno complejo en el cual juegan un papel importante la genética y fisiología bacteriana, así como la dinámica bacteria-antibiótico y el comportamiento de las poblaciones bacterianas in vivo e in vitro. Este trabajo pudo demostrar que en el HSJ de Montería existe una alta resistencia a los principales antimicrobianos usados en la práctica clínica y que han de tomarse serias y drásticas medidas de control para evitar una excesiva diseminación de la resistencia antibiótica. AGRADECIMIENTOS Al Centro de Investigaciones de la Universidad de Córdoba (CIUC), por la financiación del proyecto. BIBLIOGRAFÍA 1. Máttar S, Arango AI, Melo A. Introducción al uso de los antimicrobianos en el laboratorio de microbiología clínica. En: Máttar S, Melo A, editores. Bacteriología clínica. Montería, Córdoba: Editorial Compugráficas; 1999; Pezzlo M. Aerobic bacteriology. En: Isenberg H, editor. Clinical microbiology procedures handbook. Washington, D.C.: ASM Press; Hortal M, Bazet C, Matturo M, Camou T. Infecciones intrahospitalarias en Uruguay: resistencia a los antibióticos de los principales microorganismos identificados. Revista Panamericana de Infectología 1999; 3: S48-S Ospina S, Robledo J, Gómez C, Mejía G, Serna L, Oviedo C, Patiño L. Infección nosocomial por enterococo resistente a la vancomicina: características clinicoepidemiológicas y factores de riesgo. Infectio 2001; 5: Máttar S, Dussán C, Calle J. Estudio preliminar de infección nosocomial en el Hospital de Caldas (Manizales). Médicas UIS 1997; 11: Máttar S, Sussman O, et al. La bacteriemia en pacientes oncológicos del Instituto Nacional de Cancerología de Bogotá. Enferm Infecc y Microbiol (Mex) 1996; 16:

13 7. Larson E. Hygiene of the skin: when is clean too clean? Emerg Infect Dis 2001; 7: Pournaras S, Slavakis A, Polyzou A, Sofianau D, Maniatis A, Tsakris A. Nosocomial spread of an unusual methicillin-resistant Staphilococcus aureus clone that is sensitive to all non-b-lactam antibiotics, including tobramycin. J Clin Mocrobiol 2001; 39: Thomson K. Controversies about extended spectrum beta-lactamases. Emerg Infect Dis 2001; 7: Weinstein R. Controlling antimicrobial resistance in hospitals: infection control and use of antibiotics. Emerg Infect Dis 2001; 7: Robledo C, Robledo J. Panorama de la resistencia a los antibióticos en Colombia. Revista Panamericana de Infectología 1999; 3: S27-S Marín M, García D, Martín P, Rodríguez M, Bouza E. Infection of Hickman catéter by Pseudomonas (formerly Flavimonas) oryzyhabitans traced to a synthetic bath sponge. J Clin Microbiol 2000; 38: Rodríguez B, Vásquez E, Sussmann O, Mattar S, Jaramillo CA. Multicenter study of Pseudomonas aeruginosa isolated in Santafe de Bogotá, D.C.: serotyping and antimicrobial susceptibility. Eur J Infect Dis Clin Microbiol 2000; 19: Sotto A, Merle C, Fabbro-Peray P, Gouby A, Sirot D, Jourdan J. Risk factors for antibiotic-resistant Escherichia coli isolated from hospitalized patients with urinary tract infections: a prospective study. J Clin Microbiol 2001; 39: Rice L. Emergence of vancomycin-resistant Enterococci. Emerg Infect Dis 2001; 7: Máttar S, Sánchez L, Pérez D, Arango A, Parodi R, Muelle C. In vitro activities of cefapime and other b-lactam antibiotics against clinical isolates from a Colombian teaching hospital. J Antimicrob Chemother 1998; 42: Ospina S, Arbeláez MP, Paniagua LA, Peláez MC, Ramírez V, Sánchez LC. Factores de riesgo para infección intrahospitalaria por bacterias multirresistentes a los antibióticos. Medellín: Hospital San Vicente de Paúl; 1999.