MUSEO ENTOMOLÓGICO FRANCISCO LUÍS GALLEGO. Facultad de Ciencias Sede Medellín

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1 BOLETÍN MUSEO ENTOMOLÓGICO FRANCISCO LUÍS GALLEGO ISSN V 8 Nº 3 Julio-Septiembre Especimen número del MEFLG, catalogado por Francisco Luis Gallego en julio 28 de 936, identificado como Calopteron palpale Kirsh por H.S Barber del Smithsonian Institute en diciembre 5 de 936 MEFLG Facultad de Ciencias Sede

2 Volumen 8 Número 3 Julio-Septiembre Boletín del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego bol.mus.entomol.francisco Luis Gallego. ISSN Publicación trimestral del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego de la Universidad Nacional de Colombia Sede. Los artículos se presentan bajo responsabilidad de los autores, quienes editan sus propios trabajos. Las citaciones, copias de figuras, tablas y demás elementos que requieran autorización del autor para ser reproducidas, son responsabilidad del autor del documento, más no del Boletín. Directora del Museo y del Boletín Adelaida María Gaviria Rivera Comité Editorial Sandra Uribe Soto, Universidad Nacional de Colombia,, Colombia. Paula Andrea Sepúlveda Cano, Universidad del Magdalena, Colombia. Francisco Serna Cardona, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Germán Amat García, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Allan Smith Pardo, United States Department of Agriculture, San Francisco, CA, Estados Unidos. Victor Hugo González, University of Kansas, Lawrence, KS, Estados Unidos. Adelaida María Gaviria Rivera, Universidad Nacional de Colombia,, Colombia. John Alveiro Quiroz, Universidad Nacional de Colombia,, Colombia. Fernando Hernández - Baz, Universidad Veracruzana, Veracruz, México Diseño Editorial Facultad de Ciencias Oficina de Comunicaciones María Eugenia Aristizabal Diseño Ana María Restrepo Montoya Apartado Aéreo 3840 Teléfono: , Colombia

3 Contenido NORMAS PARA PUBLICAR EN EL BOLETÍN DEL MEFLG...4 ARTÍCULO ORIGINAL...6 REPORTE DE LOS FONDOS DEL MEFLG...22 NUEVOS ESPECÍMENES TIPO DEL MEFLG...29 NOTAS DEL MUSEO ENTOMÓLOGICO FRANCISCO LUIS GALLEGO...38

4 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN NORMAS PARA PUBLICAR EN EL BOLETÍN DEL MEFLG. Redacción: en tercera persona Unidades: sistema métrico decimal Letra: times new roman tamaño 2. Espacios entre renglones: sencillo Imágenes en: JPEG Lista de referencias: Artículo: Lyal C, Kirk P, Smith D y R Smith The value of taxonomy to biodiversity and agriculture. Tropical Conservancy: Biodiversity 9 (&2): 8-4. Observe que se escribe el nombre completo de la revista. Capítulo en libro: Erwin T The tropical forest canopy: the heart of biotic diversity. En: Wilson EO y FM Peters. (eds). Biodiversity. National Academy Press, Washington DC. Pp Q Libro: Kaesuk C Naming nature: the clash between instinct and science. WW Norton, New York. 352 p. Internet: Kaesuk C Reviving the lost art of naming the world. The New York Times: Science. Disponible en nytimes.com/2009/08//science/naming.html?_r=. Consultado en Agosto de Referencias en el texto: Un solo autor: Kaesuk (2009b) o (Kaesuk 2009b) Varios autores: Lyal et al. (2008) o (Lyal et al. 2008) 4

5 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Cuando son varias citas en un mismo párrafo, por orden alfabético (Erwin 2006, Reid y Miller 2004), cuando son del (los) mismo(s) autor(es), por fecha de aparición (Erwin 2008, 2009) o (Erwin 2008a, 2008b) Tablas para el reporte de los fondos del MEFLG: en word, siga el ejemplo de abajo. Letra: times new roman 8 Tabla. Mutillidae del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego de la Universidad Nacional de Colombia Sede (IND: información no disponible). Especie Colector Identificador País Departamento Municipio Fecha Cantidad Nº Catálogo Agriocleptes albosparsu Stål, 854 A.Madrigal D.Forero Colombia Antioquia Tarazá /07/ Agriocleptes albosparsus Stål, 854 F. Gallego D.Forero Colombia Antioquia Santa Fé de Antioquia // Agriocleptes albosparsus Stål, 854 Agriocleptes albosparsus Stål, 854 Agriocleptes albosparsus Stål,, 854 F. Gallego D.Forero Colombia Antioquia S. Andrés /02/ R. Vélez D.Forero Colombia Antioquia Sopetrán /05/ R. Vélez D.Forero Colombia Antioquia Sopetrán /03/

6 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN ARTÍCULO ORIGINAL Einige Sammlungen Von Schmetterlingen Erreicht in der Oberen und Mittleren Putumayo Gebiet, Kolumbien (Lepidoptera, Nymphalidae, Ithomiinae) Julián A. Salazar E Curador del Museo de Historia Natural. Universidad de Caldas. Manizales. julian. salazar_e@ucaldas.edu.co Zusammenfassung Diese Arbeit zielt darauf ab, eine Liste der Familie Ithomiinae Schmetterlinge im oberen und mittleren Putumayo gefangen offen zu legen. 60 Arten mit entomologischen Netze, die Bedeutung der Region als einer der biodiverse von Kolumbien in Schmetterlinge und die dringende Notwendigkeit hervorgehoben Lebensräume noch zu konservieren bleiben gefangen betont. Stichwort: Biodiversität, Putumayo, Pleistozän Zuflucht endemism, Ithomiinae Mariposas de la Región de Alto y Medio Putumayo, Colombia (Lepidoptera, Nymphalidae, Ithomiinae) Resumen Este artículo tiene la finalidad de divulgar una lista de las mariposas incluidas en la subfamilia Ithomiinae que habitan en la región del alto y medio Putumayo. Mediante la captura con redes entomológicas, se registró un total de 60 especies, lo que indica una de las zonas de mayor biodiversidad de mariposas del país y que es necesario promover para su conservación. Palabras clave: Biodiversidad, refugios pleistocénicos, endemismos, Putumayo, Ithomiinae Einführung Die Ithomiinae sind ausschließlich neotropical Schmetterlinge, die durch halbtransparente Flügel oder gestromt Schattierungen, schlanken Körper, kleine Köpfe und längliche Bauch gekennzeichnet sind. Sie stellen eine Unterfamilie besteht aus 320 Arten, darunter 47 Gattungen und phylogenetisch im Zusammenhang mit Danainae (Baumann, 974; Lamas, 999). Ein weiterer bemerkenswerter Unterschied, dass eine monophyletische 6

7 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Zeichen in der Gruppe unterstützt, ist das Vorhandensein von Büscheln von Riech- Haare in der Küstenregion der Hinterflügel (Lamas, 999; Brower et al., 2006). Der Vorstand der Ithomiinae in seiner Raupenstadium, Pflanzen sind Solanaceae und Apocynaceae geringerem Umfang (Ackery, 984; De Vries, 987), während die Erwachsenen sind regelmäßige Besucher Blume Heliotropium (Boraginaceae) und Euphatorium (Asteraceae), von denen pirrolizinicos Alkaloide zu gewinnen Frauen integrieren (Boppré, 984; Schulz et al., 2004; Lamas y Perez, 983). Ohne Ausnahme, diese Schmetterlinge fliegen Erwachsene in den unberührten oder Sekundärwälder und sind gute Indikatoren für Bewaldung in akzeptablem Zustand (Beccaloni y Gaston, 995; Raimundo et al., 2003). Sie haben sich an Schatten Bedingungen angepasst und können oft zahlreiche Personen in Gebieten mit relativ kleinen Wald bilden heterogene Gruppen von Arten in Unterholz (Vélez y Salazar, 99) gefunden werden. Angesichts dieser Konzentration kann dann Probenahme durchzuführen, die Ithomiinae Verwendung als Proben Waldreste von Pleistozän Herkunft bezeugt, beschuldigt hohen Grad an endemismus (Brown, 977, 987). Angesichts dieser Konzentration kann dann Probenahme durchzuführen, die Ithomiinae Verwendung als Proben Waldreste von Pleistozän Herkunft bezeugt, beschuldigt hohen Grad an Endemismus. In diesem Sinne ist eine der wichtigsten Tierwelt Ithomiinae, durch die große Anzahl von Genres und existierenden Arten bewohnen biologischen Putumayo Region, speziell am Fuße dieses Berges der Ostkordillere Abdeckung der Abteilungen von Caquetá, Putumayo, Cauca und Nariño östlichen. Das Hauptziel dieser Arbeit ist es, eine Liste der Arten offen zu legen, die in der oberen und mittleren Putumayo, sowie zu zeigen einige der Lebensräume in der Region gesammelt wurden. Hintergrund Frühere Studien, die aufschlussreich Listings Ithomiinae der Region veröffentlicht wurden, sind in der Hand gezählt. Zum Beispiel Salazar (995) veröffentlichte eine Liste von 85 Arten vorhanden, von denen 24 an die oberen Putumayo gehören und 66 in der Mitte Putumayo, aber gegen am Anfang als den Anden und Amazonasgebiet hoch diskriminiert. Alle innerhalb einer Gesamtlistevon 827 Arten von Schmetterlingen in allem, was die Abteilung von Putumayo bewohnen, kurz nach Fagua et al., (999) für eine probenahme in der Nähe von Rio Pato -San Vicente del Caguán (Caquetá) Region durchgeführt von unzweifelhaften Einfluss des Putumayo nahmen sie 20 Arten sowie andere Kofán und in den Gebieten Ingano gesammelt (Ospina y Fagua, 2007). Eine benachbarte Fläche inventarisiert auch von Arias y Huertas (200) ist die Serrania von Churumbelos, eine kleine Liste von 23 Arten an orten, zwischen 350 und 450 meter über dem Meeresspiegel gefangen Berichterstattung. Schließlich Salazar et al., (200) aufgezeichnet 40 Arten von Ithomiinae in einer Liste von 605 Arten von Schmetterlingen gesichtet für Centro Experimental Amazónico (CEA), ein Ort, neben den Becken der Mocoa und Pepino Rios in der Mittle Putumayo. Darüber hinaus wird es in Betracht ziehen, die Arbeit von Brown (977, 980, 987), die spezies Ithomiinae für Putumayo, decken alle neotropical Fauna und zum Teil auf 7

8 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Sammlungen im Bereich der Ernesto W. Schmidt-Mumm definiert und al. Dazu gehören Inserate der oben genannten Autoren und einem aktuellen Material zur Verfügung. Biogeographische notes der putumayo gebiet Für Kolumbien (Karte ) mehrere Pleistozän Refugien, die hohe endemism Hafen bekannt sind, in die biogeographische Provinz des Amazonas gehört, und einer von ihnen ist der Putumayo. Tatsächlich Ramirez - Chavez et al., (203 ), einer Studie von Säugetieren in der Region und auch auf der Grundlage Hernandez-Camacho et al., (992) schlagen vor, mehrere verwandte Bezirke : Teile Florencia, Caguan, Huitoto, Kofan, Ticuna und Bezirk hohe Putumayo. Letzterer autor erklärt, dass der Fuß der Berge von Putumayo und Caqueta sind muiy und die Heimat der größten Artenvielfalt der kolumbianischen Amazonas zusammen. Endemism ist das Ergebnis der Situation nicht nur Mosaik von Pflanzenarten, aber auch von Tieren und Schmetterlinge sind keine Ausnahme. Für Ithomiinae Brown (977), die Muster der Differenzierung aller neotropical Fauna, sieht die Putumayo zwei prominente für Zentren von endemism und Evolution Subregionen studieren zu sein: untere Putumayo (Pt) und hohe Putumayo (Pt2 ) (Karte 2). Der erste von ihnen eher dem Schutz des Napo einschließlich Vorberg Dschungelgebiet des südlichen Kolumbien und nordöstlichen Ecuador (Brown, 987; Haffer, 987; Prance, 987). Aufgrund der obigen Ausführungen und basiert auf Studien von mehreren Agenturen Morrone (2002, 204) enthält die verschiedenen Bezirke von Putumayo vorgeschlagen von 8

9 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN SM: Santa Marta DA: Darién Nc: Nechí Ct: Catatumbo Ch: Choco Va: Veatuari Mg: Magdalena Vl: Villavicencio Pt: Putumayo Np: Napo Im: Imeri Le: Loreto Ca: Cauca Mapa 3. Refugios cuaternarios de Colombia. Mapa: Guillermo Linero Karte. Pleistozän Refugien von Kolumbien 9

10 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Hernandez-Camacho et al., (992) in die Provinz Napo. Ebenso andere Autoren mit der Familie Schmetterlinge Riodinidae arbeiten, zum beispiel (Callaghan, 985), bevorzugen die Putumayo vorläufig als Teil der östlichen Hängen der Anden gehören, mangels intensiver Sammlungen ihre endemism nach rechts propip zu rechtfertigen. Obwohl die Fauna der Berge vor allem von Arten in den tropischen Anden beschränkt besteht, angewendet Faktor der hohen Anden Schmetterlinge: Pieridae, Satyrinae - Pronophilini, Ithomiinae, Heliconiinae (Kattan et al., 2004; Rosser et al., 202), bestimmte niedrig gelegenen Gebieten der östlichen Cordillera in Putumayo als caucana Boot, zeigen den Artenaustausch zwischen den östlichen Anden und der Amazonas Ebene ( m). Biologische Putumayo Region für seine komplexen bergiges Gelände und Dschungel Schluchten hat auch llamdo, Orobioma durch die Anden Abdeckung der mittleren Bereiche der östlichen Cordillera der Departements Meta, Caqueta, Cauca, Nariño und Putumayo (Garcia et al., 202). Ihre besondere Form von Wasserregime vegetationsgürtel Tatsache Erhöhung als eines senkt sich auf den mittleren und unteren Putumayo in einem kontinuierlichen Streifen.In diesem papier schlagen wir die Putumayo und Napo Biom durch die Anwesenheit differenziert von stark lokalisierten Arten von Schmetterlingen, zu der Unterfamilie gehör Ithomiinae. Diese Hypothese wird durch Vitale y Bollino (2000) betrachtet, die behaupten, dass die Region ist ein Gebiet von neotropical endemism kurz nach Ecuador erweitert, mit der Nähe der Provinz Sucumbíos, wo es klar faunal Austausch ist (Mechanitis mazaeus messenoides Felder, typische unterart von Kolumbien und M. massaeus deceptus Butler von ecuadorianischen Napo), sowie andere eigene Fauna Elemente von Ecuador und Peru. Methode und untersuchungsgebiet Die Arten, die hier aufgenommen wurden, mit entomologischen Netze in mehreren Besuchen in Putumayo und Diskriminierung in zwei Hauptbereiche erfasst: I.- Mittleren putumayo Es deckt die unteren Teile des Berges und Dschungelwanderung hügeligen Gebieten benachbarten sich zwischen den 300 und 800 meter über dem Meeresspiegel. Es enthält entsprechende östlich von Cauca und Nariño Putumayo Orte. Die Vegetation beobachtet gehören grundsätzlich Tropenwald und sehr feucht zu benetzen (Espinal y Montenegro, 963). Die Sampling- Stationen waren : a.- Rio Guamues-Orito ( m) b.- C.E.A.- Rio Pepino (530 m) c.- Rio Mocoa-Canalendre (580 m) d.- Rio Mocoa- Afán ( m) d.- Condagua-Rio Villalobos ( m) II.- Oberen putumayo Es besteht aus dem bergigen Dschungelgebiet, sowie Sibundoy Tal zwischen 300 und 2500 meter über dem Meeresspiegel. Es ist die hohe Andenregion der Departements 0

11 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Putumayo, Cauca und Nariño. Die Pflanzengemeinschaften entsprechen feuchten und sehr feuchten subtropischen Wald, subtropischen regen Wald und unteren montanen feuchten Wald steilen Hängen (Espinal y Montenegro, 963). Die Sampling- Stationen waren: a.- Monopamba-El Carmen, Nariño ( m) b.- alto Rio Villalobos, bota caucana ( m) c.- Straße Mocoa-Sibundoy, sektor los cristales ( m) d.- San Francisco-schlucht La Honda ( m) e.- Santiago-alto Rio Putumayo ( m) Expeditionen in Sammlung gerichtet waren an den folgenden Tagen und Jahren: 24 bis 3 Dezember 985, 24 bis 28 Februar 986, von 4 bis 24 September 987, 2 bis zum 28 September 990, 7 bis 2 August 993, 5 bis 3 Januar 998, 2 bis 22 September 2006, 4 bis 9 Januar 2009, 6 bis 29 Februar 200, 5 bis 8 Januar 20, 9 bis 3 März 20, 3 bis 20 Mai. Das Material wird in den Sammlungen des Museum of Natural History Universität Caldas (MHN-UC), der entomologischen Sammlung Programm Biologia, Universidad de Caldas (CEBUC), Herr Julian Salazar Sammlung (CJASE) und das Institut für Forschung hinterlegt Alexander von Humboldt, Villa de Leyva (IiAVH) von ejemplars zusammengestellt von E.W.Schmidt-Mumm. Für die Identität der Spezies wurden folgende Autoren herangezogen: Haensch (905, 909), Niepelt (928), Fox (956, 967), D`Almeida (978), Takahashi (978), Mielke y Brown (979), Brown (980), Lamas (980, 986, 999), D`Abrera (984), Brown y Freitas (994), Vitale y Bollino (999, 2000a, 2000 b, 200a, 200b) und Willmott y Lamas (2008). Zum Zwecke der Darstellung finden Sie hier Fotos von verschiedenen Lebensräume und Arten Auswahl aus den beiden Bereichen enthalten sucht. Ergebnisse I.- Ithomiinae von Mittleren Putumayo gebiet (Liste von Salazar et al., (200) gennomen erweitert und überarbeitet) Taf. I Abbildung 390 m 650 m Aeria eurimedia (Cr., 777) Athesis acrisione deflavata Niepelt, 928 Brevioleria aelia (Hew., 852) Callithomia lenea (Cr., 775) Ceratinia tutia poecila (Bates, 862) Aeria eurimedia (Cr., 777)

12 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Ceratinia tutia callichroma (Stgr., 885) Dircenna adina xanthophane (Hpffr., 874) Godyris zavaleta matronalis Weymer, Heterosais giulia (Hew., (855)) Hyposcada anchiala anchiala (Hew., 868) 2 Hyposcada illinissa ssp. 9 Hyposcada illinissa ssp.2 Hyposcada illinissa adina (Weymer, 905) Hypoleria sarepta cidonia (Hew., (857) Hypothyris euclea intermedia (Btlr., 877) Hypothyris ninonia diphes Fox, 97 Hypothyris anastasia honesta (Weymer, 883) 4 Hyaliris coeno norellana (Haensch, 903) 3 Hyaliris oulita lurida (Btlr., 873) Ithomia agnosia agnosia (Hew.,, 855) Ithomia salapia salapia (Hew., (853) Ithomia salapia derasa (Hew., 855) Mechanitis polymnia doryssides (Stgr., 884) Mechanitis lysimnia roqueensis Bryk, Mechanitis mazaeus deceptus Btlr., Mechanitis mazaeus messenoides (Fldr., 865) Melinaea marsaeus messenina (Fldr., 865) Melinaea marsaeus mothone (Hew., 860) 5 Melinaea menophilus menophilus (Hew., 856) 8 Melinaea menophilus zaneka Btlr., 870 Methona curvifascia (Weymer, 883) 3 Methona confusa psamathe (G & S., 898) Napeogenes achaea nicolayi Fox & real, 97 7 Napeogenes inachia pozziana (Oberth., 875) Oleria ilerdina lerida (Kirby, 875) Oleria gunilla lota (Hew., 872) 5 Oleria sexmaculata ssp. Pseudoscada florula aureola Bates, 862 Scada zibia perpuncta Kaye, 98 2 Scada reckia ethica (Hew.,(86) Tithorea tarricina hermias (G.&.S., 898) Tyridia psidii ino (Fldr., 862) 2

13 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN II.- Ithomiinae von Oberen Putumayo gebiet (Liste von Salazar (995) gennomen erweitert und überarbeitet) Taf. II Abbildung 200 m 2500 m Dircenna adina lorica Weymer, 875 Elzunia humboldt (Latr. (809) Episcada mira (Hew., 877) 9 Godyris duillia (Hew., 854) 8 Godyris panthyale (Fldr., 862) Godyris nepos hewitsoni Haensch, Greta libethris (Fldr.,865) 30 Greta alphesiboea (Hew., 869) Greta andromica andania Hpffr., 874 Greta theudelina bonita Vitale. & Boll., Hyaliris antea antea (Hew., 869) 7 Hyalenna paradoxa praestigiosa Haensch, Ithomia terra ssp. Ithomia agnosia (Hew., 855) Megoleria susiana susiana (Fldr., 862) 2 Megoleria orestilla polylla (Lam. & Willm.,2008) 20 Napeogenes larilla larilla (Hew., 877) 25 Oleria estella estella (Hew., 868) Oleria athalina banjana Haensch, 903 Oleria makrena (Hew., 854) Oleria sp. Oleria athalina ssp. Pagyris cymothoe sylvella (Hew., 868) Pagyris ulla ssp. Patricia dercyllidas hazalea Fox, Pteronymia oneida ssp. 24 Pteronymia teresita thabena (Hew., 869) Pteronymia alida zabina (Hew (857) Tithorea tarricina bonita Hanesch, 903 Veladyris pardalis aurea Lamas, Velamysta phengites ssp. 29 3

14 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Abb. 2 Rio Afán (580 m) Abb. Rio Mocoa-Canalendre (520 m) Abb. 4 Alto Villalobos (600 m) Abb. 3 Rio Villalobos (200 m) 4

15 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Abb. 5 Mocoa Sibundoy (sektor Los Cristales) (940 m) Abb 6. San Francisco Quebrada la Honda (2340 m) 5

16 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Abbildung. Athesis acrisione deflavata (Niep.), 2. Hyposcada anchiala anchiala (Hew.), 3. Methona curvifascia (Weym.), 4. Hypothyris anastasia honesta (Weym.), 5. Melinaea marsaeus mothone (Hew.), 6. Mechanitis mazaeus deceptus (Btlr.), 7. Napeogenes achaea nicolayi (Fox & Real), 9. Hyposcada illinissa ssp., 0. Mechanitis lysimnia roqueensis (Bryk),. Ithomia salapia derasa (Hew.), 2. Scada zibia perpuncta (Kaye), 3. Hyaliris coeno norellana (Haensch), 4. Godyris zavaleta matronalis (Weym), 5. Oleria gunilla lota (Hew.) 6

17 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Abbildung 6. Godyris nepos hewitsoni (Hanesch), 7. Hyaliris antea antea (Hew.), 8. Godyris duillia (Hew.), 9. Episcada mira (Hew.), 20. Megoleria orestilla polylla (Lam. & Willm), 2. Megoleria susiana susiana (Fldr.), 22.Veladyris pardalis aurea (Lam.), 23. Hyalenna paradoxa praestigiosa (Haensch), 24. Pteronymia oneida ssp. 25. Napeogenes larilla larilla (Hew.), 26. Patricia dercyllidas hazalea (Fox), 27. Greta theudelina bonita (Vitale & Boll.), 28. Oleria athalina ssp., 29. Velamysta phengites ssp., 30. Greta libethris (Fldr.) 7

18 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Danksagungen Der Autor dankt den Menschen, die zu der Zeit arbeitete teilweise mit der Registrierung und Erfassung von Arten, die hier im Zusammenhang mit ( in alphabetischer Reihenfolge) zu danken : David Acosta, Yesid Calvo, Luis Constantino, Antonio Fajardo, Efrain Henao, Natalia Mojhana Bernal, Angie Ortega Moreno, Miguel Rodriguez, Ernesto W. Schmidt Mumm (+), Gimena Ospina, Vaclav PacI, Leda Valdez, Jesús Velez, Jose I. Vargas und vor allem Greg Nielsen für ihre großzügige Unterstützung in preparaciópn der Blätter mit ausgestopften Exemplaren. Literatur Ackery P. J, Systematic and Faunistic studies on Butterflies: 9-2. (in) Biology of Butterflies, Academic pores, London. Arias J. y Huertas B, Mariposas diurnas de la Serrania de los Churumbelos, Cauca. Distribución altitudinal y diversidad de especies (Lep.). Rev. Col. Ent., 27 (34): figs. Baumann H, Die Ithomiidae der Küstenkordillere in Nord-Venezuela (Lep. Rhop.). Beitrag zur Systematik und Faunistik der Ithomiidae. Mitt.Münch.ent. Gesell., 64: Beccaloni G and Gaston K Predicting the spcies richness of Neotropical forest butterflies: Ithomiinae (Lep. Nymph) as indicators. Biol. Conserv., 7: figs. Boppré M, Chemically mediated interactions between butterflies: figs. (in) The Biology of Butterflies, Academic press, London. Brown K S A review of the genus Hypothyris Hübner (Nymph.) with desciptions of three new subspecies and early stages of H. daphnis. J. Lepid. Soc., 34 (2): figs. Brown K S Centros de Evolucao, refugios quaternarios e conservacao do Patrimonios ge neticos na Regiao Neotropical: padroes de diferenciacao en Ithomiinae (Lep. Nymph.). Acta Amazonica, 7 (): figs. Brown K S Biogeography and evolution of Neotropical Butterflies: figs. (in) Whitmore & Prance (eds.) Biogeography and Quaternary History in Tropical America. Clarendon press, Oxford. Brown K S and Freitas V Juvenile stages of Ithomminae: overview and systematics (Lep. Nymph.). Trop. Lepid., 5 (): figs. 8

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21 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Salazar J A, Vargas J, Mora A y Benavides J Identificación preliminar de los Rhopalocera que habitan el Centro Experimental Amazónico (CEA), Mocoa, Putumayo y algunas especies aptas para criar en cautiverio (Lep.). Bol. Cient, Mus. Hist. Nat. U. de Caldas, 4 (): figs. Schulz S, Beccaloni G, Brown K S, Boppré M, Freitas V, Ockenfels R y Trigo J R Semiochemicals derived from pyrrolizidine alkaloids in male Ithomiine butterflies (Lep. Nymph. Ith.). Bio. Syst. and Ecol.,32 (8): figs. Takahashi M The list of the subfamily Ithomiinae (Lep. Dan.) collected durin La Expedición Japonesa a las Zonas Amazónicas, 973. Trans. Lep. Soc. Japan, 29 (2): figs. Vitale F y Bollino M Patricia dercyllidas (Hew., 864) in Ecuador: note colorogiche e descrizione di due nouve taxa (Lep. Ith.). Lambillionea, 99 (): figs. Vitale F y Bollino M Ithomiidae de Ecuador, terzo contributo. Il Genere Ithomia Hbn. Descrizione di quattro nouve sottospecie. Lambillionea, 00 83): figs. Vitale F y Bollino M. 2000b.- Ithomiidae dell Ecuador. Secondo contributo, su alcune specie del genere Hyaliris Bsd., 870 con descrizione di nouve taxa (Lep. Ith.). Lambillionea, 00 (): figs. Vitale F y Bollino M Descrizione di due nouve sotospecie di Napeogenes cranto Fldr (Lep. Ith.). Lambillionea, 0 (3): figs. Vitale F y Bollino M. 200b.- Note sul genere Hypomenitis Fox, 945. Elementi di determinazione e descrizione di nouvi taxa (Lep. Ith.). Lambillionea, 0 (4): figs. Vélez J y Salazar J Mariposas de Colombia: 67 pp. + figs. Villegas ed. Bogotá. Willmott, K y Lamas, G., A Revision of the genus Megoleria Const. (Lep. Nymph. Ith.). Trop. Lep. Res., 8 (): figs. 2

22 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN NOTA CORTA Distribución espacial de las poblaciones de insectos: Modelos probabilísticos, índices de agregación y herramientas estadísticas para el análisis Diego Esteban Martínez Revelo *, Adelaida María Gaviria Rivera 2 Grupo de investigación en sistemática molecular, Universidad Nacional de Colombia, sede. 2 Grupo de investigación Interacciones Biológicas, Universidad Nacional de Colombia, sede. * Autor para correspondencia: diemartinezre@unal.edu.co Determinar la distribución espacial de las poblaciones de insectos en agroecosistemas, es fundamental para el diseño de planes de monitoreo y toma de decisiones de control en el manejo integrado de plagas. Un plan de muestreo confiable y rentable requiere un conocimiento integral de los atributos ecológicos de la plaga objetivo como densidad, distribución espacial, dinámica poblacional, ciclos de vida y distribución de edades, entre otras (Binns and Nyrop 992, Pedigo and Rice 2006). La distribución espacial de los individuos entendida como el esquema que adopta la población en un área geográfica, es decir, la ubicación de cada individuo como respuesta a las condiciones ambientales optimas, puede estar determinada por tres componentes: factores abióticos que afectan la tasa de crecimiento neto de las poblaciones; interacciones bióticas que pueden afectar la eficacia biológica o fitness de una manera reguladora; y los efectos del movimiento espacial de los individuos y poblaciones sobre la distribución de las especies (Soberón 2007, Pulliam 2000). A gran escala son más influyentes las condiciones abióticas y a escala local las interacciones bióticas (Soberón 200). Una población se distribuye de manera aleatoria cuando todos los espacios en el hábitat tienen la misma posibilidad de ser ocupados por los individuos, la probabilidad de encontrar un individuo no tiene relación con la de otro (independencia de probabilidades), se asocia a un hábitat continuo, sin variabilidad ni interacciones. La población presenta un patrón de distribución uniforme cuando todos los espacios en el hábitat tienen la misma posibilidad de ser ocupados por los individuos, sin embargo, la probabilidad de ocurrencia de un individuo disminuye la de otro, indicando fuertes interacciones de competencia y territorialidad. La distribución espacial agregada es uno de los patrones más comunes en la naturaleza y se caracteriza por que la probabilidad de ocurrencia de un individuo aumenta la de otro, indicando variabilidad ambiental y fenómenos ecológicos y etológicos como migración, oviposición agregada, respuesta de la población a características microclimáticas, comportamiento copulatorio o social, entre otras (Bliss and Fisher 953, Badii et al. 20, Davis 994, Taylor 984, Odum and Barret 2004). Como los datos necesarios para determinar la distribución espacial de una población, provienen de la cuantificación de la densidad del insecto en el agroecosistema, el número de individuos detectado en una serie de unidades de muestreo puede ser representado en un histograma de frecuencias. Una primera aproximación para evaluar el patrón espacial 22

23 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN de las especies, consiste en ajustar las frecuencias de densidad observadas a un modelo de distribución de probabilidad discreto. Para representar patrones aleatorios, uniformes o agregados se utiliza comúnmente las distribuciones de Poisson, binomial positiva y binomial negativa, respectivamente (Badii et al. 20, Bliss and Fisher 953, Cadahia 977, Cassie 962, Davis 994). Distribuciones de probabilidad discretas El procedimiento de ajuste de las frecuencias observadas al modelo, consiste en construir un histograma donde se establece el rango de los datos (densidad máxima y mínima), el número de clases de densidad (x i ) y el número de veces que el valor de la densidad aparece en cada clase (f o ). Posteriormente, se emplea la función de probabilidad del modelo teórico para calcular la probabilidad de ocurrencia del individuo de la clase x i (P x Poisson o P x binomial positiva) y la frecuencia esperada por el modelo en la clase x i (f e ). Por último, se realiza una prueba de bondad de ajuste para determinar la concordancia de las frecuencias observadas f o con las frecuencias esperadas por el modelo teórico f e, evaluando la siguiente hipótesis H o : f o = f e si 2 tabulado >2 o H calculado a : f o f e cuando 2 tabulado <2, grados de libertad: x -, con un nivel de confianza del calculado i 95%. La distribución binomial negativa fue un modelo propuesto para describir el grado de agregación de las poblaciones, definida por el promedio aritmético y un exponente K, como parámetros que describen la distribución de las frecuencias observadas (Bliss & Fisher 953). No existe un método generalmente aceptado para determinar el parámetro K, por lo tanto, se pueden aplicar tres procedimientos descritos en Badii et al 20. Taylor (96), menciona que este parámetro no siempre es independiente del promedio, limitando su uso debido a que un indicador de agregación debe ser estable a diferentes densidades poblacionales. Determinar la distribución espacial de las poblaciones con base en modelos de probabilidad teóricos, tiene algunos limitantes. El ajuste a un modelo de distribución de frecuencias, depende principalmente del grado en el que los datos de densidad estabilizan los estadísticos para ser utilizados como parámetros poblacionales, por lo tanto, su uso se ve restringido si el modelo cambia a diferentes densidades o tamaños de muestra. De la misma manera, La gran cantidad de datos necesarios para verificar cualquier distribución con cierto grado de confianza, hace difícil confirmar que estos modelos sean estables (Taylor et al. 978). Índices de hacinamiento y agregación Se recomienda usar índices de agregación basados en la relación entre el promedio, la varianza y el número de unidades de muestreo cuando el tamaño de muestra es relativamente pequeño (menos de 30) o el interés de la investigación es establecer el grado de agrupamiento, (Davis 994). Estos índices describen el patrón de distribución espacial de las poblaciones y permiten realizar comparaciones de una o dos especies en biotopos o tiempos diferentes, sin necesidad de limitarse a las rígidas y a veces improbables hipótesis de los modelos teóricos descritos (Cadahia 977). 23

24 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Algunos de los índices y sus derivaciones matemáticas, que incentivaron el desarrollo de otros estadísticos para medir el grado de agregación, se mencionan a continuación. La tasa varianza / promedio es ampliamente usada para determinar el patrón de distribución espacial; esta relación se basa en la premisa de que en una población distribuida aleatoriamente, la varianza (s 2 ) y el promedio (m) son iguales. La distribución de una población se puede clasificar de la siguiente manera: s 2 /m> representa una distribución agregada; s 2 /m= distribución aleatoria; y s 2 /m< indica una distribución uniforme. Con el fin de obtener una prueba de significancia de la desviación del resultado con respecto a la distribución aleatoria, la tasa se modifica para incluir el número de muestras (N), obteniéndose un índice de dispersión (I D ): I D = (-N)s 2 /m. Este índice se distribuye aproximadamente como un 2 con n- grados de libertad y se compara mediante una prueba de bondad de ajuste, según las hipótesis H o : I D = si 2 > tabulado 2 o H : I calculado a D cuando 2 < tabulado 2. La utilidad de este índice está limitada por su dependencia calculado del tamaño de la unidad de muestreo y porque diferentes combinaciones de varianza promedio pueden implicar el mismo resultado del índice. Green (966), desarrolló una modificación de la tasa varianza promedio que tiene la ventaja de ser independiente del tamaño de muestra y se expresa como C x = (s 2 /m) -/(n-), cuando C x = 0 se trata de una distribución aleatoria, C x < 0 indica distribución uniforme y cuando C x > 0 es agregada. Los índices de agregación o patchiness, son conceptos estadísticos que corresponden a la magnitud de la variación relativa de la densidad poblacional por unidad de muestreo. Morisita (959), planteó un índice que indica la probabilidad de que dos individuos seleccionados al azar, provengan de la misma unidad de muestreo I δ = n Ʃx i (x i - )/N(N -), donde x i es el número de individuos en todas las unidades de muestreo, n es el número de unidades de muestreo y N es el total de individuos. Sin embargo Lloyd (967), consideró que la confluencia de animales por área puede ser mayor a lo que representa su densidad promedio y para cuantificar qué tan aglomerado se encuentra un individuo con respecto a los demás planteó un promedio de hacinamiento (*) semejante a la relación densidad/promedio, pero incluye la cantidad en que la relación de varianza (s 2 ) promedio (m) excede a la unidad, mediante la expresión: * = m + (s 2 /m) -. El promedio de hacinamiento dividido por el promedio de individuos * /m, corrige la dependencia de la densidad (Kuno 99). La interpretación de los resultados obtenidos con los métodos de Morisita o Lloyd es similar a la tasa de varianza/promedio: si I δ < o * /m< el patrón de distribución es uniforme, si I δ = o * /m= es aleatoria y si I δ > o * /m> es agregada. Para determinar si los resultados del cálculo del índice de Morisita son significativamente diferentes a la aleatoriedad se puede realizar una prueba de significancia Z = (I δ - )/(2/n. m 2 ) /2 comparando los valores de Z con los valores de la distribución normal, cuando Z > (α/2), si el patrón de distribución es significativamente agregado (Davis 994). 24

25 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Regresiones lineales Dos técnicas de regresión fueron propuestas para normalizar los datos del promedio de densidad y la varianza y obtener coeficientes de agregación independientes: la regresión del promedio de hacinamiento de Iwao (968) y la ley de poder de Taylor (96). Las dos propuestas relacionan el promedio aritmético (m) o de hacinamiento ( * ) y la varianza (s 2 ), mediante el uso de una regresión lineal para estimar dos parámetros: en Iwao * = α+ βm; en Taylor Log (s 2 ) = log(a) + b.log (m). Los coeficientes β de Iwao y b de Taylor son índices de agregación que representan el tipo de distribución espacial. Cuando los valores son mayores, menores o iguales a la unidad, indican un patrón de distribución de tipo agregado, uniforme o aleatorio, respectivamente. Según Taylor (965), el coeficiente estabiliza los estadísticos y puede variar entre especies, y permanece constante para la misma especie en el mismo ambiente, aun cuando se realice un muestreo por diferentes métodos. En términos descriptivos las técnicas de Iwao y Taylor son recomendables y fueron probadas en una gran cantidad de conjuntos de datos con un alto grado de certeza; Kuno (99) resume las ventajas y desventajas de cada técnica. Un importante aporte de las técnicas de regresión fue la posibilidad de calcular el número óptimo de muestras que se debe implementar en un monitoreo, con el fin de determinar la densidad poblacional a partir de los coeficientes estadísticos. El tamaño de muestra puede ser calculado teniendo en cuenta el error estándar, los límites de confianza (Badii et al. 20) o involucrando criterios de precisión y certeza (Artur et al. 204, Cullen et al. 2000). Los modelos de probabilidad como los índices de hacinamiento y agregación tienen limitaciones, principalmente, porque las descripciones del patrón espacial dependen del tamaño de las unidades de muestreo y porque las técnicas no logran diferenciar entre patrones espaciales diferentes. Aunque algunos métodos como las regresiones corrigieron ciertas limitaciones en la estabilización de los parámetros estadísticos, ninguno incorpora la ubicación espacial de las unidades de muestreo, por lo que es necesaria una herramienta que utilice simultáneamente, tanto el valor como la ubicación de las unidades para cuantificar el patrón espacial (Liebhold et al. 993). Estadística espacial Con el desarrollo de herramientas informáticas para la captura y procesamiento de grandes cantidades de datos experimentales como los sistemas de geoposicionamento global, la teledetección, los sistemas de información geográfica y los enfoques estadísticos que incorporan el espacio, se obtuvo un marco metodológico para el análisis de los patrones espaciales en las poblaciones de insectos (Liebhold et al. 993). La geoestadística brindó el conjunto de métodos para analizar la dependencia espacial entre las muestras (autocorrelación) y la obtención de estimaciones de la variable de estudio en lugares que carecen de muestreo (Davis 994, Duarte et al. 205, Siarreta and Trematerra 205). 25

26 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN El procedimiento para la determinación de patrones espaciales de insectos con geoestadística, requiere un muestreo intensivo del área especificada y el número de muestras necesarias para un análisis espacial efectivo es de al menos 30 (Isaaks & Srivastava 989, Duarte et al 205). La determinación inicia con la implementación de un diseño experimental donde el universo de muestreo (en un agroecosistema corresponde al hábitat del insecto) se divide en una cuadrícula que a su vez se subdivide en una serie de parcelas, donde se obtienen los registros que incluyen las coordenadas geográficas de cada unidad de muestreo y la densidad de insectos. El método más utilizado para el análisis geoestadístico implica la construcción del semivariograma (Duarte et al 205, Liebhold et al. 993). El semivariograma representa la dependencia espacial de un organismo y permite el cálculo de la varianza de la muestra en función de la distancia entre los puntos de muestreo. El umbral o punto en el que la semivarianza o la varianza de la muestra ya no aumenta en el semivariograma, define el rango de dependencia espacial. Los semivariogramas de patrones espaciales aleatorios y uniformes, muestran una relación lineal entre la varianza de la muestra y la distancia entre las unidades de muestreo, la pendiente de la línea es aproximadamente cero, haciendo así que el valor de la discontinuidad localizada y el umbral sean iguales. La variabilidad de la línea de regresión es mayor para la distribución aleatoria que para las distribuciones uniformes. Los patrones espaciales agregados exhiben un amplio rango de dependencia espacial y pueden ser modelados mediante variogramas teóricos de tipo esférico o exponencial (Davis 994). Conclusiones Teniendo en cuenta la gran cantidad de herramientas para determinar la distribución espacial de las poblaciones de insectos y la cantidad de información disponible, sin duda, este parámetro ecológico es importante en la agricultura sostenible y su campo de investigación sigue en desarrollo. Los resultados que se pueden obtener aplicando las metodologías descritas tienen grandes implicaciones en el manejo integrado de plagas. Cuantificar la densidad de insectos plaga y establecer su variación a través del tiempo con cierto grado de precisión y certeza, es una condición básica para la definición de umbrales de acción como criterio de decisión para la aplicación de medidas de control. De esta información depende la creación de mapas de distribución espacial para tomar decisiones de manejo en sitios específicos del cultivo, que señalan la ubicación precisa mediante coordenadas geográficas de lugares con altas densidades poblacionales (Duarte et al 205). Estimar el número de muestras que se debe tomar para que el muestreo sea representativo es importante para analizar medidas de compensación entre los costos económicos y el tiempo efectivo que implica la toma de datos ecológicos en diferentes tipos y áreas de cultivo. 26

27 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Bibliografía Artur A L, Hoffmann A A y P A Umina Estimating densities of the pest Halotydeus destructor (Acari: Penthaleidae) in Canola. Journal of Economic Entomololgy. 07(6): Badii M H, Guillen A, Cerna E y J Landeros. 20. Dispersión Espacial: El Prerrequisito Esencial para el Muestreo. Daena: International Journal of Good Conscience. 6() Binns M R y J P Nyrop Sampling insect populations for the purpose of IPM decision making. Annual. Review of Entomololgy 37: Bliss C I y Fisher R A Fitting the negative binomial distribution to biological data. Biometrics, 9 (2): Cadahia D Repartición espacial de las poblaciones en Entomología aplicada. Boletin del Servicio de Plagas, 3: Cassie R Frequency Distribution Models in the Ecology of Plankton and Other Organisms. Journal of Animal Ecology, 3(): Cullen E M, Zalom F G, Flint M L y E E Zilbert Quantifying trade-offs between pest sampling time and precision in commercial IPM sampling programs. Agricultural Systems. 66: Davis P M Statistics for describing populations. En: Pedigo, P. L and G. D. Buntin (Eds.) Handbook of Sampling Methods for Arthropods in Agriculture. CRC Press. Boca Raton, London, New York, Washington, D. C Duarte F, Calvo M V, Borges A y I B Scatoni Geostatistics applied to the estudy of the spatial distribution of insects and its use in integrated pest management. Revista Agronómica del Noroeste Argentino. 35 (2): Green R H Measurement of non-randomness in spatial distributions. Researches on Population Ecology 8: -7. Iwao S A new regression method for analyzing the aggregation pattern of animal populations. Researches on Population Ecology. 0: -20. Isaaks E H, Srivastava R M. (989). Applied geostatistics. Oxford University Press, New York, USA Kuno E. 99. Sampling and analysis of insect populations. Annual Review of Entomology. 36:

28 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Liebhold A M, Rossi R E and Kemp W P Geoestatistics and geographic information systems in applied insect ecology. Annual Review of Entomology 38: Lloyd M Mean crowding. J. Anim. Ecol. 36: -30. Morisita M Measuring the dispersion of individuals and analysis of the distributional patterns. Mem. Fac. Sci. Kyushu Univ. Ser. E. 2: Odum E P, Barret G W Fundamentos de ecologia. São Paulo: Thomson Learning, 62. Pedigo L P y M E Rice Entomology and pest management. New Jersey: Prentice Hall. Pulliam H R On the relationship between niche and distribution. Ecol. Lett. 3: p. Sciarreta A and P Trematerra Geostatistical tools for the Study of Insect Spatial Distribution: Practical Implications in the Integrated Management of Orchard and Vineyard Pests. Plant Protection Science. 50 (2): Soberón J Grinnellian and Eltonian niches and geographic distributions of species. Ecol. Lett. 0: Soberón J Niche and area of distribution modeling: a population ecology perspective. Ecography 33: Taylor L R. 96: Aggregation, variance and the mean. Nature, Lond. 89: Taylor L R Assessing and interpreting the spatial distributions of insect populations. Ann. Rev. Entomol. 29: Taylor L R, Woiwod I P and J N Perry The density-dependence of spatial behaviour and the rarity of randomness. Journal of Animal Ecology. 47:

29 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN REPORTE DE LOS FONDOS DEL MEFLG Lista de Coleoptera: Lycidae del MEFLG Guillermo de Jesús Guarín-Candamil. John Alveiro Quiroz-Gamboa. Museo Entomológico Francisco Luís Gallego MEFLG Universidad Nacional decolombia, Sede. Introducción Los lícidos tienen forma de abanico, son de cuerpo blando, sus élitros están pobremente unidos y ensanchados apicalmente; su coloración varía entre amarillo, rojo y negro, cubiertos con una pilosidad escasa; tamaño de 2 a 22 mm, poseen antenas largas generalmente con segmentos, las cuales son filiformes serradas e insertadas entre los ojos. Pronoto cubriendo parcialmente la cabeza, algunas veces con presencia de carinas y expandidos lateralmente, superficie rugosa, proepisterno cóncavo y debajo del pronoto. Formula tarsal 5-5-5; tarsos a 4 con almohadillas plantares pubescentes; élitros paralelos o expandidos lateralmente, disco de los élitros con celdas y reticulaciones; esternitos abdominales visibles no fusionados, 8 en los machos y 7 en las hembras (Miller, 2002). Se cree que las larvas son carnívoras (Crowson 955, Arnett 968, Miller 988), probablemente muchas, no todas, se alimentan de mixomicetos y productos del metabolismo de los hongos (Lawrence 982). En la Colección Taxonómica Central (CTC) del MEFLG hay catalogados 242 individuos, 5 géneros, a saber: Caenia sp. ( sp.), Calodadon sp., Calopteron sp. (5 sp.), Emplectus sp., Errhacus sp., Falsocaenia sp., Leptoceletes sp., Linoptes sp., Lycomorphon sp., Lycostomus sp., Lycus sp., Macrolygistopterus sp., Mesopteron sp., Metapteron sp., y Plateros sp., (Tabla ; Fotografías -23). De la colección de Lycidae se destaca el especimen número del MEFLG, catalogado por Francisco Luis Gallego en julio 28 de 936, identificado como Calopteron palpale Kirsch por H. S. Barber del Smithsonian Institute en diciembre 5 de 936 (ver Portada del Boletín). 29

30 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN No. Catalogo MEFLG Especie Localidad Altura (m.s.n.m.) Hospedero Fecha Recolector Identificador Cant 325 Caenia loculata (Bourgeois, 878) Venecia IND IND Julio 939 Gallego, F.L. H.S. Barber Calopteron juvenile (Bourgeois, 879) Tres Palmas (Córdoba) IND En Vuelo Septiembre 972 R. Vélez E.R. Peacock Calopteron sp Calopteron porticum Kirsch,? Calopteron palpale (Kirsch, 63) Calopteron palpale (Kirsch, 63) Chigorodó Colombia IND Cacao Julio 970 D. Galeano IND Plantas de Algodón R.D. Gordon 97 Julio 969 H.S. Barber Colombia IND IND Julio 936 Gallego, F.L. IND IND Septiembre 94, Abril 945 Gallego, F.L Calopteron palpale (Kirsch, 63) Colombia IND IND IND Calopteron sp. Tres Palmas (Cord.) IND En vuelo Septiembre 972 R. Vélez Calopteron sp. Colombia IND En hoja Septiembre 968 Gallego, F.L Calopteron sp Calopteron serratum (L.) Calopteron serratum (L.) Calopteron serratum (L.) Calopteron serratum (L.) Calopteron serratum (L.) Calopteron serratum (L.) Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp. Atlántico (Colombia) Tarazá Termales Termales Termales Sopetrán Buga (Valle) Buga (Valle) Sopetrán Buga (Valle) Sopetrán Mutatá Mutatá Amagá IND En muro Agosto 968 Gallego, F.L. H.S. Barber 936 () () () () () IND Algodón Enero 938 Gallego, F.L. IND IND Maleza Agosto 946 Gallego, F.L. IND IND Maleza Julio 97 R. Vélez IND IND Maleza Julio 972 R. Vélez IND IND Maleza Julio 972 R. Vélez IND IND Maleza Julio 972 R. Vélez IND IND Maleza Septiembre 947 Gallego, F.L. IND IND Maleza Enero 953 Gallego, F.L. IND IND Maleza Enero 953 Gallego, F.L. IND IND Maleza Mayo 972 R. Vélez IND IND Maleza Septiembre 947 Gallego, F.L. IND IND Algodón Junio 962 Alcaraz, H. IND IND Algodón Junio 962 Alcaraz, H. IND IND Maleza Enero 953 Gallego, F.L. IND IND Maleza Mayo 972 R. Vélez IND IND Maleza Enero 953 Gallego, F.L. IND IND Algodón Junio 962 Alcaraz, H. IND IND Maleza Mayo 972 R. Vélez IND IND Maleza Enero 953 Gallego, F.L. IND IND Cítricos Septiembre 972 R. Vélez IND Maleza Septiembre 972 R. Vélez IND Maleza Junio 95 Gallego, F.L Calopteron sp. Quetame (Cundinamarca) IND Maleza Enero 947 Gallego, F.L Calopteron sp. Quetame (Cundinamarca) IND Maleza Junio 946 Gallego, F.L Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp. Quetame (Cundinamarca) Quetame (Cundinamarca) Mesitas (Cundinamarca) IND Maleza Julio 946 Gallego, F.L. IND Maleza Agosto 946 Gallego, F.L. IND Maleza Diciembre 949 Gallego, F.L. 30

31 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp. Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp. Caldas Tarazá Tarazá Tarazá Tarazá Alejandría Porce Santafé Tarazá Porce Turbo Bucaramanga (Santander) Bucaramanga (Santander) Calima (Valle) Tarazá Puerto Tejada (Cauca) Sopetrán Sierra Nevada (Sta Marta.) Alejandría IND Maleza Marzo 974 R. Vélez IND Maleza Julio 975 A. Madrigal IND Maleza Junio 975 A. Madrigal IND Maleza Junio 975 R. Vélez IND Maleza Julio 975 R. Vélez IND Maleza Noviembre 974 R. Vélez IND Fabaceae Octubre 976 G, Morales IND Pasto Mayo982 José A. Ramírez IND Maleza Julio 975 A. Madrigal IND Fabaceae Octubre 976 G, Morales IND Maleza Octubre 947 Gallego, F.L. IND Maleza Octubre 947 Gallego, F.L. IND Frijol Mayo 948 Gallego, F.L. IND Maleza Febrero 953 Gallego, F.L. IND Maleza Enero 95- Gallego, F.L. IND Maleza Diciembre 960 Gallego, F.L. IND Maleza Febrero 953 Gallego, F.L. IND Anón Abril 97 R. Vélez IND Cacaotal Julio 952 Gallego, F.L. IND Cacao Julio 945 Gallego, F.L IND Enero 947 Gallego, F.L. IND Maleza Abril 955 Gallego, F.L. IND Maleza Abril 972 R. Vélez IND Maleza Marzo 953 Gallego, F.L. () () () () () () () () () () () Calopteron sp. Calima (Valle) IND Bosque Diciembre 960 Gallego, F.L Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron tropicum (Linnaeus, 764) Calopteron tropicum (Linnaeus, 764) Calopteron tropicum (Linnaeus, 764) Calopteron tropicum (Linnaeus, 764) Calopteron tropicum (Linnaeus, 764) Calopteron tropicum (Linnaeus, 764) Calopteron tropicum (Linnaeus, 764) S. Ferd. M (Colombia) Encarnación Chinchiná (Caldas) Sierra Nevada (Sta Marta.) Venecia Tarazá Sopetrán Manizales (Caldas) IND IND Noviembre 946 Gallego, F.L. IND Verbenáceae Diciembre 980 A. Madrigal C. IND Café Julio 948 Gallego, F.L IND Enero 947 Gallego, F.L. IND 2 IND Maleza Abril 950 Gallego, F.L. IND IND Maleza Julio 972 R. Vélez IND IND Cacao Julio 945 Gallego, F.L. IND 2 IND Maleza Septiembre 94- Gallego, F.L. IND IND Azaleas Julio 938 Gallego, F.L. IND IND Maleza Mayo 955 Gallego, F.L. IND 3

32 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Calopteron sp. IND Café Agosto 947 Gallego, F.L Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calodadon sp Calodadon sp Calodadon sp Calodadon sp Leptoceletes sp Linoptes sp Lycomorphon sp. Piedras Blancas Puerto Tejada (Cauca) Chigorodó Pto. Araujo (Santander) Rionegro Puerto Araujo (Sant. Sur) Cocorná IND Piso Marzo 953 Gallego, F.L. IND Pasto Enero 969 Gallego, F.L. IND Cacaotal Julio 952 Gallego, F.L. IND Cacao Octubre 972 E. Urueta R. D. Gordon 3 IND IND Octubre 945 Gallego, F.L. IND Maleza Octubre 947 Gallego, F.L. IND Maleza Octubre 94- Gallego, F.L. IND En vuelo Febrero 982 M. T. Carmona IND En platanillo Septiembre 945 Gallego, F.L. IND Maleza Julio 977 R. Vélez Lycomorphon sp. Cocorná IND Maleza Julio 977 A. Madrigal C Lycus sp. Pto. Valdivia IND Guaquito Febrero 942 Gallego, F.L Lycostomus sp. Colombia IND IND IND IND A. Molina Mesopteron sp Mesopteron sp Metapteron sp Metapteron sp Plateros sp. Caldas Rionegro Chigorodó Apartadó Porce IND Maleza Marzo 974 R. Vélez IND Maleza Abril 953 Gallego, F.L. IND Cacao Febrero 970 E. Urueta IND Plantación de Cacao Noviembre 972 E. Urueta IND Maleza Julio 972 R. Vélez E. R. Peacock 2 Popayán Plateros sp. IND Agave Julio 952 Gallego, F.L. E. R. Peacock (Cauca) Puerto Araujo Plateros sp. IND Maleza Septiembre 945 Gallego, F.L. E. R. Peacock (Sant. Sur) Plateros sp. IND IND IND IND IND E. R. Peacock Atlántico Plateros sp. IND Maleza Diciembre 937 Gallego, F.L. E. R. Peacock (Colombia) Plateros sp Plateros sp. Plateros sp. Platerodini Platerodini Platerodini Platerodini Platerodini Platerodini Calopteron sp. Puerto Triunfo Puerto Triunfo Sierra Nevada (Sta Marta.) Caldas IND Búcaro Diciembre 970 R. Vélez IND Búcaro Diciembre 970 R. Vélez IND Café Junio 94 Gallego, F.L. IND Maleza Septiembre 973 R. Vélez IND Maleza Septiembre 947 Gallego, F.L. Platerodini Palmira (Val.) IND Algodón Abril 946 Gallego, F.L. Cocorná Caldas Cocorná Betania IND Maleza Abril 953 Gallego, F.L. IND Bosque Marzo 980 R. Vélez IND Maleza Octubre 973 R. Vélez IND Bosque Agosto 956 Gallego, F.L. 750 Potrero Julio 998 J. Cárdenas

33 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Calopteron sp. Concepción IND Rastrojo alto Diciembre 996 F. J. Serna C. J. G. Hurtado M Calopteron sp Calopteron sp. Arabia (Risaralda) Tarso IND Trampa de luz Junio 986 G. García IND Maleza Septiembre 988 R. Vélez Calopteron sp. Jardín IND Bosque Diciembre 99 G. Morales Calopteron sp. San Luis IND Bosque Agosto 983 G. Morales S Calopteron sp. Caldas (Colombia) 400 Bosque secundario Enero 2002 E. E. Martínez Calopteron sp. Prado IND Ciprés Octubre 973 R. Vélez Calopteron sp. San Luis IND Bosque Septiembre 988 R. Vélez Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp. Mompox (Bolívar) Caldas (Colombia) Bajo Calima (Valle) Turbo IND Trampa de luz Diciembre 994 A. Madrigal 500 Bosque secundario Enero 2002 E. E. Martínez IND Bosque Septiembre 995 G. Morales IND IND Septiembre 94- Gallego, F.L Calopteron sp. Antioquia (Colombia) IND Maleza Agosto 947 Gallego, F.L Calopteron sp. IND Maleza Septiembre 947 Gallego, F.L Calopteron sp. Mesitas (Cundinamarca) IND Maleza Enero 950 Gallego, F.L Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp. Caucasia Nariño (Colombia) Chintadó (Chocó) Yotó (Chocó) IND IND Diciembre 953 Gallego, F.L. IND Maleza Diciembre 953 Gallego, F.L. IND Trampa de luz Junio 944 Gallego, F.L. IND Bosque Noviembre 982 F. Serna IND Maleza Noviembre 983 F. Serna Calopteron sp. Yotó (Chocó) IND Maleza Septiembre 983 R. Vélez Calopteron sp. Caldas (Colombia) 500 Bosque secundario Enero 2002 E. E. Martínez Calopteron sp Calopteron sp. Caldas (Colombia) Santafé de Antioquia 380 IND Bosque secundario Canavalia enciformis Enero 2002 Junio 984 E. E. Martínez R. Vélez Calopteron sp. Santafé de Antioquia 600 IND Septiembre 2000 M. Trujillo Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp. Mompox (Bolívar) Santafé de Antioquia Caquetá (Colombia) Jardín Frontino Caldas Chintadó (Chocó) IND Maleza Junio 953 Gallego, F.L. IND Trampa de luz Diciembre 994 J. A. Quiroz 650 Maleza Julio 998 J. Cárdenas 460 En vuelo Enero 200 M. Trujillo IND Lulo Julio 980 V. Cañas IND Bosque Julio 983 G. Bolivar IND IND Abril 2009 S. Muchachasoy IND Bosque Noviembre 983 F. Serna

34 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Calopteron sp. Santafé de Antioquia IND En vuelo Febrero 984 G. Osorio Calopteron sp. Sopetrán IND Maleza Septiembre 984 A. Madrigal Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp Calopteron sp. Sopetrán Támesis Puerto Wilches (Bucaramanga) Santafé de Antioquia IND Maleza Marzo 986 A. Vallejo I. IND Cacaotal Febrero 990 R. Vélez IND Cacaotal Marzo 986 N. Serna IND En vuelo IND C. H. B. A Calopteron sp. Istmina (Chocó) IND Bosque Noviembre 983 F. Serna Calopteron sp. Istmina (Chocó) IND Bosque Noviembre 985 A. Saldarriaga Santafé de Canavalia 48 Calopteron sp. Antioquia IND Junio 984 R. Vélez enciformis Calopteron sp. San Luis IND Bosque Septiembre 988 G. Morales Calopteron sp. San Luis IND Bosque Junio 986 R. Vélez Calopteron sp. Sincelejo (Sucre) 200 Rastrojo Agosto 999 A. Navarro Calopteron sp. Copacabana IND Vegetación Enero 982 L. E. Tobón Calopteron sp. Frontino IND Bosque Junio 989 G. Morales C. Mantilla Calopteron sp. Frontino IND Bosque Junio 989 G. Morales C. Mantilla Calodadon sp. Frontino IND Bosque Junio 989 G. Morales C. Mantilla Emplectus sp. San Luis IND Bosque Septiembre 988 R. Vélez Errhacus sp. San Luis IND Bosque Agosto 983 R. Vélez Metapteron sp. Jericó IND Bosque Agosto 992 G. Morales Metapteron sp Metapteron sp Metapteron sp. San Luis Turbo Jardín IND Bosque Septiembre 988 R. Vélez IND Hevea Febrero 945 Gallego, F.L. IND Bosque Diciembre 99 G. Morales Metapteron sp. Tarazá IND Maleza Abril 97 A. Madrigal Mesopteron sp. Frontino IND Bosque Julio 989 G. Morales C. Mantilla Mesopteron sp. San Luis IND Bosque Septiembre 988 G. Morales Mesopteron sp Mesopteron sp Mesopteron sp Mesopteron sp Mesopteron sp Mesopteron sp Falsocaenia sp. La Estrella Palmas Concepción Jardín San Félix San Luis Arabia (Risaralda) IND Solanaceae Marzo 985 R. Hincapié V. IND Conifera Julio 983 Luis Fdo. Vélez IND Rastrojo bajo Febrero 997 F. J. Serna C. J. G. Hurtado M. IND Maleza Febrero 980 R. Vélez IND Vegetación Febrero 982 L. E. Tobón IND Bosque Julio 983 R. Vélez IND Trampa de Luz Junio 986 Gabriel García Falsocaenia sp. Puerto Triunfo IND Maleza- Bosque Junio 985 R. Vélez 34

35 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Lycomorphon sp. San Luis IND Bosque Septiembre 988 R. Vélez Caenia sp. El Retiro IND En vuelo Octubre 984 V. Hincapíe Leptolycini Lycus sp. Carriaño (Caldas) San Luis 400 En bosque Enero 2002 E. E. Martínez IND IND Julio 983 G. Morales Macrolygistopterus sp. Fredonia IND Suelo Abril 989 H. M. Trujillo Platerodini San Luis IND IND Julio 983 R. Vélez Platerodini Quetáme (Cundinamarca) IND IND Enero 947 Gallego, F.L Platerodini Platerodini Platerodini Platerodini Platerodini Carriaño (Caldas) Carriaño (Caldas) Carriaño (Caldas) Carriaño (Caldas) San Luis 290 Bosque Enero 2002 E. E. Martínez 500 Bosque Enero 2002 E. E. Martínez 400 Bosque Enero 2002 E. E. Martínez 380 Bosque Enero 2002 E. E. Martínez IND Bosque Septiembre 988 C. Mantilla Platerodini San Luis IND Bosque Septiembre 988 R. Vélez Platerodini Platerodini San Luis Santafé de Antioquia IND Bosque Septiembre 988 G. Morales 600 IND Octubre 2000 A. Botero Platerodini Chinchiná (Caldas) IND Café Julio 938 Gallego, F.L. 35

36 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Fotografía. Caenia sp. Fotografía 2. Calodadon sp. Fotografía 3. Calopteron juvenile Bourg. Fotografía 4. Calopteron palpale (Kirsch, 63) Fotografía 5. Calopteron porticum Kirsch.? Fotografía 6. Calopteron serratum (L.) Fotografía 7. Calopteron sp. Fotografía 8. Calopteron tropicum (Linnaeus, 764) Fotografía 9. Emplectus sp. Fotografía. Eurrhacus sp. Fotografía 2. Falsocaenia sp. Fotografía 3. Leptoceletes sp. 36

37 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Fotografía 4. Linoptes sp. Fotografía 6. Lycomorphon sp. Fotografía 7. Lycostomus bucolicus Gorth. Fotografía 8. Lycostomus sp. Fotografía 9. Lycus sp. Fotografía 20. Macrolygistopterus sp. Fotografía 2. Mesopteron sp. Fotografía 22. Metapteron sp. Fotografía 23. Plateros sp. Bibliografía Arnett R A The Beetles of the United States: A Manual for Identification. American Entomological Institute. Ann Arbor, Michigan. Crowson R A The Natural Classification of the Families of Coleoptera. Nathaniel Lloyd, London. 80 pp. Miller R S Behaviour of Calopteron reticulatum (F.) Larvae (Coleoptera: Lycidae). Ohio. Sci., 88 (3): Miller R S LYCIDAE Laporte 836. En R. H. Arnet Jr, M. C. Thomas, P. E. Skelley and J. H. Frank. AMERICAN BEETLES, Volume II: Polyphaga: Scarabaeoidea through Curculionoidea (págs. 7478). New York: CRC Press. Nichols S The Torre-Bueno Glossary of Entomology. Departament of Entomology, American Museum of Natural History New York 840 pp 37

38 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN NOTAS DEL MUSEO ENTOMÓLOGICO FRANCISCO LUIS GALLEGO Publicaciones con material del museo y/o depositado Huertas, B. Lamas, G. Fagua, G. Mallet, J. Nakahara, S. Willmott, K... A remarkable new butterfly species from western Amazonia (Lepidoptera: Nymphalidae: Satyrinae). Conservación Colombiana Número p. Abstract A distinctive new species of butterfly in the subtribe Euptychiina (Nymphalidae: Satyrinae), which is widespread throughout the upper Amazon in Colombia, Ecuador and Peru, is here described. The species is provisionally placed in the genus Magneuptychia Forster, 964, although this is likely to change as the higher level taxonomy of Euptychiina is resolved and the genus is reviewed in detail. Keywords: Systematics, Euptychiina, Colombia, Peru, Ecuador. Resumen Se describe una nueva especie de mariposa distintiva de la subtribu Euptychiina (Nymphalidae: Satyrinae), distribuida en la región amazónica de Colombia, Ecuador y Perú. La especie se ubica provisionalmente en el género Magneuptychia Forster, 964, lo que puede cambiar cuando se haya resuelto la sistemática de Euptychiina y el género se revise en detalle. Palabras clave: Sistemática, Euptychiina, Colombia, Perú, Ecuador. Pyrcz, T. W. Clavijo, A. Uribe, S. Marin, M. A. Alvarez, C. F. y Zubek, A.. Páramo de Belmira as an important centre of endemism in the northern Colombian Andes: new evidence from Pronophilina butterflies (Lepidoptera: Nymphalidae, Satyrinae, Satyrini). Zootaxa 479 (): p. DOI: zootaxa Abstract Páramo de Belmira (Páramo de Santa Inés) is the highest part of the Andean Central Cordillera in the Colombian department of Antioquia. It harbours a pocket of highlands grassland vegetation isolated from the nearest southerly other large paramo extensions by some 50 km. Butterflies sampling was carried out for over three years in the cloud forest paramo mosaic and open grassland at m. As a result, several new taxa of various butterflies groups were identified, including three species and two subspecies belonging to the Satyrinae subtribe Pronophilina, described herein: Lymanopoda casneri 38

39 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN n. sp., L. ionius, Lilliput n. ssp., Panyapedaliodes rojasi n. sp., Pedaliodes nutabe n. sp. and Apexacuta orsedice mariadelmarae n. ssp. L. casneri is particularly interesting from the biogeographical perspective as its nearest relative is L. hazelana Brown, found in south central Ecuador, some 000 km southwards. Overall, 48 species of Pronophilina were identified. Considering the occurrence of several endemic species and subspecies of butterflies in the extremely restricted paramo grasslands in the study area, and the anthropogenic pressure from surrounding locations, it is worth attributing the Páramo de Belmira a protection area status. Keywords: Lepidoptera, Apexacuta orsedice mariadelmarae n. ssp., Belmira, endemism, Lymanopoda casneri n. sp., L. ionius lilliput n. ssp., new taxa, Panyapedaliodes rojasi n. sp., paramo, Pedaliodes nutabe n. sp., integrative taxonomy. Muñoz, D. C. David, G. Yepes, F. Quiroz, J. A... Primer Registro de Amyelois transitella (Walker) en el Fruto del Tamarindo: El caso de Santa Fe de Antioquia. Revista Científica Sabia, vol. No p. Buenaventura Colombia. ISSN Resumen En el municipio de Santa Fe de Antioquia (Colombia), se halló por primera vez la polilla mayor de la vaina o la polilla Amyelois transitella Walker de la naranja ombligona, afectando gravemente frutos maduros de tamarindo (Tamarindus indica, Fabaceae). Esta leguminosa es una planta promisoria para el occidente antioqueño. Su demanda se ha incrementado en la última década, tanto a nivel local como en el ámbito nacional. Debido a la alta demanda y las posibilidades de crecimiento poblacional del insecto en las bodegas de almacenamiento durante el proceso de postcosecha, se considera muy importante registrar su presencia en los cultivos de los municipios en esta parte del país. De esta manera se contribuye a la generación de alertas sanitarias dirigidas a los productores y a los que procesan su pulpa para facilitar su mercadeo, ya que todos están sufriendo pérdidas por el desconocimiento de las recomendaciones sobre el manejo integrado de esta plaga. Palabras clave: Amyelois, Polilla del fruto, Phycitinae, occidente antioqueño. Abstract In the municipality of Santa Fe de Antioquia (Colombia) it was found for the first time the navel orangeworm, A. transitella (Walker), seriously affecting ripe tamarind fruit (Tamarindus indica, Fabaceae). This legume is a promising plant for the western Antioquia, Colombia, demand has increased in the last ten years, both locally and nationally. Due to high demand and growth potential of the insect population in the storage holds during postharvest, is considered very important to register their presence in crops of the municipalities of western Antioquia. This will contribute to the generation of sanitary alerts aimed at producers and the pulp processing to facilitate marketing, since they are all undergoing losses due to the lack of knowledge about the recommendations on integrated management for this pest. Keywords: Amyelois, navel orangeworm, Phycitinae, western Antioquia. 39

40 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Eventos VI Seminario Aconteceres Entomológicos, organizado por el Grupo de Entomología de la Universidad Nacional de Colombia, Sede GEUN, con la colaboración del Museo Entomológico Francisco Luis Gallego MEFLG. Fecha: de noviembre de. Lugar: Aula máxima de la Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia Sede. En el evento se certificó la asistencia de profesionales y estudiantes de instituciones como la Universidad Nacional de Colombia, el Politécnico Colombiano Jaime Isaza Cadavid y Universidad Católica de Oriente, entre otras (Ver Fotografías, afiche y programación del seminario). En este evento se conmemoró el Vigésimo aniversario del GEUN. Fotografías de algunos momentos del evento 40

41 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN Afiche del VI Seminario Aconteceres Entomológicos 4

42 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de -ISSN