MANEJO DE REPRODUCTORES PARA CAMARONES PENEIDOS DE TELICUM ABIERTO

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1 MANEJO DE REPRODUCTORES PARA CAMARONES PENEIDOS DE TELICUM ABIERTO Mario E. Aguirre Plaza Gerente de Productos de Acuicultura. Purina de Venezuela. Edif. Stemo. piso 4. Av. ppal Los Ruices. Apartado Sabana Grande, Caracas 1050 (Venezuela) El objetivo de desarrollar un programa de levantamiento de reproductores de camarones peneidos, de telicum abierto, en una Granja Camaronera; es asegurar un suministro confiable de la semilla para el engorde, en donde la calidad de la misma dependerá del manejo y selección de sus progenitores. Las recomendaciones indicadas en estas notas, se basan en experiencia comercial obtenida en el levantamiento de padrotes de las especies Penaeus vannamei, P. stilyrostris y P. schmitti, en aguas del Caribe Venezolano. 1. Características de un buen Padrote a. Libre de patologías: Efectuar un monitoreo patológico de la población en donde se descarte presencia de virus, patologías de origen bacteriano y alta incidencia de epibiontes. b. Características morfológicas: Cuerpo sin torsiones ni tumoraciones. Apéndices completos. Exoesqueleto sin puntos de necrosis y/o roturas. Branquias normales sin inflamación y/o coloración anormal. Rostrum completo y sin torceduras. Musculatura libre de invasión bacteriana. Sin necrosis a nivel de apéndices y/o escamas antenales. Los padrotes no pueden presentar opacidad y/o musculatura blanquecina. Sin presencia de melanización a nivel de espermatóforos.

2 2. Fuentes de Padrotes Cualquiera que sea la procedencia de los futuros padrotes, los mismos deben cumplir con las características morfológicas indicadas anteriormente Medio natural Cuando la especie cultivada es originaria de las zonas y/o del país en donde se cultiva, los mismos pueden provenir de capturas en el medio natural; en este sentido es importante efectuar descartes de la presencia de virus IHNNV, BP, TSV; para lo cual deben mantenerse los animales en periodo de cuarentena, hasta efectuar los exámenes correspondientes con ayudas de Kit o sondas genéticas. Es importante indicar que el sitio de cuarentena debe garantizar el tratamiento de los efluentes y la no dispersión de cualquier anomalía patológica, a través de posibles vectores. También en esta alternativa los reproductores pueden provenir del medio natural, mediante importaciones en aquellos países en donde la especie en cultivo no es natural. Entre las ventajas más importantes de esta alternativa esta la de una respuesta inmediata en salas de maduración y una alta tasa de nauplios por hembras, además del vigor genético del nauplio para un levantamiento larval. Como desventajas el riesgo a patologías, la no disponibilidad durante todo el año del recurso y en algunos casos escasez por sobrepesca Reclutamiento en granjas Ejemplares elites seleccionados directamente en lagunas de engorde, cuando la media de peso de la laguna oscila entre los 10 y 12 gr. Ejemplares elites seleccionados durante el momento de la cosecha.

3 Figura 1: Ejemplares Elites: Son aquellos ubicados en el extremo derecho de una distribución normal de peso, con la característica de presentar excelente fenotipo y crecimiento excepcional Reclutamiento a nivel de nauplios a. Reclutamiento a partir de nauplios procedentes de desoves de hembras salvajes, con los riegos indicados en el punto 2.1. b. Reclutamiento a partir de nauplios de maduración: En este caso puede presentarse la alternativa de nauplios procedentes de padrotes del medio natural, sometidos a procesos de maduración y reproducción. También de reproductores levantados en Granja, esta última alternativa ofrece una mejor oportunidad de prevenir y/o controlar patologías. En cualquiera de los casos indicados es recomendable proceder de la forma siguiente: Acorde al régimen cíclico de picos de apareo, estimar en la sala de maduración la fecha de mayor ocurrencia y programar los tanques necesarios para el desove individual de las hembras que se retiren impregnadas durante ese día. Seleccionar las hembras con el mayor número de huevos, mejores eclosiones y deformidad preferiblemente sin deformidad, en caso de lotes con índice de deformidad no mayor a 3 %. Proceder a seleccionar mediante luz (10 minutos) los nauplios de cada hembra y posteriormente mezclar todos los nauplios obtenidos mediante este proceso. En tanque de selección a luz proceder a una primera selección con tiempo no mayor a cinco minutos a flujo de 1 l/min. Los nauplios obtenidos en este paso se vuelven a someter a otro proceso de selección a la luz bajo las mismas condiciones indicadas anteriormente. Los nauplios resultantes se someten a los procesos de desinfección y prevención de usos normales en las salas de cría larval. El manejo de cría larval se efectúa en condiciones normales de una larvicultura. 3. Levantamiento de nauplios a postlarvas para padrotes

4 En este sentido se manejan diversos criterios, entre los de mayor uso se indican los siguientes: a. Selección de post-larvas del mejor tanque de larvicultura durante una corrida normal: Mejor índice de sobrevivencia, uniformidad del tamaño de la larva y con menores problemas de patologías. b. Levantamiento a partir de nauplios seleccionados a la luz y de los mejores desoves, fijando los siguientes criterios: Siembra a baja densidad procurando proyectar la cosecha del número de post-larvas deseado, en función a la sobrevivencia promedio de la sala de cría larval. Ejemplo: Si se desean post-larvas y la sobrevivencia estimada es de 50 % en la sala, sembrar solo nauplios rigurosamente seleccionados a la luz y con deformidad de 0 %. Esto implica una baja densidad de siembra. Mantener los niveles normales de alimentación: Algas en función a volumen, artemia y alimentos suplementarios en función a número de larvas procurando no deteriorar la calidad de agua por sobrecarga de alimento. Recambios de agua normales y rutinarios correspondientes al manejo común de la sala de cría larval. Evitar el uso de antibióticos y otras drogas de carácter preventivo, lo que obliga a un cuidadoso manejo de la calidad del agua del tanque de cría larval. Cosechar post-larvas a una edad no menor de PL-12, y hasta lograr una sobrevivencia del 80 % en prueba de resistencia térmico-salino: Colocar 100 larvas en un litro de agua del tanque por una hora con aireación, posteriormente transferirlas a salinidad 0 %., a la misma densidad y temperatura de 18ºC, mantenerlas en estas condiciones por una hora. Después del tiempo indicado transferirlas a salinidad y temperatura normal mantener por una hora y contar sobrevivientes. Es recomendable no cosechar las post-larvas si estas mantienen una longitud standard menor a 8 mm. Se debe llevar un registro de tallas tomando una muestra de 100 postlarvas del tanque y medirla longitud standard, estos datos se deben corresponder a una distribución normal (unimodal). En el mismo sentido, determinar el índice de covarianza; a medida que este se reduce en la población es un indicativo del aumento de la homogeneidad y es conveniente aumentar el pula de selección y/o incorporar sangre nueva. Nota bene: Cuando se mantiene un plan de levantamiento de reproductores de ciclo cerrado, (nuevos padrotes a partir de los existentes en Granjas) es conveniente evitar cualquier introducción de nuevos animales a Granja o al laboratorio si previamente no se han pasado por estación de cuarentena y se han descartados la incorporación de nuevas patologías. 4. Levantamiento de Post-larvas a Padrotes 4.1. Recomendaciones generales En esta fase se manejan los criterios siguientes: Densidad de siembra no mayor a 2 camarones/m2. Preparación de lagunas similar a un engorde normal de granja.

5 En el mismo sentido lo relacionado a recambios y manejo de la calidad del agua (Tabla I). Suministro de alimento en forma constante y ajustado la densidad poblacional de la laguna y con monitoreo por charolas. Se recomienda el esquema expuesto en la Tabla II. Tabla I: Rangos óptimos para calidad de agua en piscinas de reproductores PARAMETRO RANGO ph 7,5-8,5. Salinidad %. Temperatura 25-30ºC Turbidez Oxígeno disuelto Amoniaco (NH 3 ) Fosfato (PO 4 ) Nitrito (NO 2 ) Nitrato (NO 3 ) Silicatos Alcalinidad Hierro SH cm. 5-6 mg/l. 0,030 mg/l. Hasta 5 mg/l. Hasta 0,023 mg/l. 0,7-1,0 mg/l mg/l mg/l. 0,01-0,02 mg/l. < a 0,009 ppm. Tabla II: Regimen alimenticio según peso PESO Desde siembra a 20 gr. peso promedio Desde 20 gr de peso promedio a peso de cosecha REGIMEN ALIMENTICIO Suministro de alimento de alto desempeño; ejemplo: Camaronina (K-maron) 40 HP. Ajustado a las tablas de alimentación normal y consumo monitoreado mediante el uso de charolas. Combinación de alimento fresco con balanceado de alto desempeño (Ver ejemplo de calculo) Suministro de Alimento Fresco y Balanceado En relación a un programa de alimentación para procesos de maduración a nivel comercial, Browdy (1992) indica en lo que respecta a los requerimientos nutricionales involucrados en los procesos de maduración ovárica, apareo, desove y mecanismos de control endocrino; que los estudios realizados y el entendimiento de las posibles interrelaciones son incompletos. No obstante en forma rutinaria los resultados obtenidos en prácticas de maduración, provienen de esquemas de alimentación que involucran combinación de productos marinos congelados en fresco (calamar, moluscos bivalvos, gusanos poliquetos, etc.) con o sin inclusión de alimento balanceado como suplemento. Igualmente señala la obtención de resultados poco satisfactorios con el uso exclusivo de alimento balanceado.

6 La práctica a nivel comercial en emplear dietas que combinan productos marinos, es señalada por Kawahigashi (1992) en función a un estudio efectuado con 21 Hatcheries en las Américas, en donde el 100 % incluye gusanos poliquetos, calamar, ostras, mejillones y alimentos balanceados para maduración. La relación usual de productos en la dieta, se plasma en cuatro componentes (Tres productos en fresco y un balanceado) en una proporción de 1:1:1:1. El nivel de suministro se fija en valores entre 2,5-3,5 % de la biomasa en peso seco del alimento a suministrar, para lo cual es necesario conocer el peso seco de los diferentes componentes de la dieta. También es de consideración los costos de los diferentes ítems a suministrar, lo que limita el suministro de gusanos poliquetos y balanceados de maduración en la alimentación de padrotes en lagunas; sin embargo se recomienda una combinación : Calamar: Mejillón: Balanceado (2:1:1) y en caso de disponer de un solo ítem fresco Fresco:Balanceado (2:1). Ejemplo: Piscina de padrotes con: Tasa de alimentación: Peso seco Camaronina (K-maron) 40 HP: 125 Kg. de Biomasa. 3,3 % en peso seco. 90 %. Peso seco Calamar: 18 % Peso seco Mejillón: 17 %. Relación Calamar:Mejillón:Balanceado: 2:1:1 Proporción: 50 % Calamar :25 % Mejillón : 25 % Camaronina 40 HP (balanceado)

7 Recomendaciones sobre suministro de alimento fresco: a) Mantener un mínimo de 4 charolas por Ha. usando el mismo criterio de monitoreo de una laguna de engorde. b) Efectuar el suministro de alimento húmedo con frecuencia de tres veces a la semana, con un día intercalado (Lunes, Miércoles y Viernes). Los días restantes suministrar solamente alimento balanceado a la tasa normal del 2,5-3,5 % de la Biomasa húmeda. Distribuir el alimento un mínimo de cuatro veces al día. c) Durante el muestreo de población y calidad de animales, evaluar presencia de sobrantes de alimento fresco, esto debe corresponderse con las Charolas testigos. d) Es frecuente observar, a medida que el camarón aumenta de peso tiende a ubicarse hacia las zonas de mayor profundidad de la piscina; este comportamiento se puede aprovechar aumentando el número de Charolas y distribuyendo el alimento en su totalidad sobre las mismas, el camarón lo ingiere y esto facilita un mejor monitoreo del consumo. e) Se debe establecer un régimen de inventarios mínimos, de alta rotación y seguridad de suministro, para en esta forma garantizar la frescura y calidad del alimento húmedo Transferencias a. Características de camarones a seleccionar Seleccionar los camarones estimados en el plan de levantamiento en función de características fenotípicas y selección de camarones con tallas ubicadas al lado derecho de la media poblacional, con preferencia hacia los grupos de clases elites. Igualmente, el grupo seleccionado debe mostrar una distribución normal unimodal en donde destacan camarones nuevos camarones elites (Figura 2).

8 Figura 2. Representación de Distribución normal de grupos de transferencias b. Programa de requerimientos: A fin de ilustrar un programa de requerimiento de padrotes se consideran los siguientes parámetros: b.1. Sala de Maduración: funcionando en forma continua con 24 tanques de maduración y con los bioindicadores siguientes: Parámetros en salas de maduración Tanques de Maduración 24 Area/tanque m 2 20 Densidad cam/m 2 4 Cantidad camarones/tanque 80 Cantidad Camarones/sala 1920 Relación machos : hembras 1 a 1 Cantidad de machos sala 960 Cantidad de hembras sala 960 Reposición/tanques/semanal 2 Tiempo de vida tanque 3 meses b.2. Bioindicadores de levantamiento desde Post-larvas a consumo por maduración: Parámetro Final Fase IV Fase III Fase II Fase I Sobrevivencia % Camarones requeridos Peso inicio gr Peso final gr Piscina/ superf.m

9 Densidad camarón/m 2 0,34 0,49 0,8 1,4 2,3 Días de permanencia b.3. Bioindicadores del lote final para maduración: Parámetros en lagunas Sobrevivencia % 60 Relación machos:hembras 40:60 Aceptación 70 Hembras requeridas 960 Total hembras disponibles 2057 Total machos disponibles 1371 Total camarones disponibles 3429 Los indicadores anteriores se refieren al status del lote final, el cual se encuentra listo para iniciar su consumo por parte de las salas de maduración por un tiempo de 3 meses. 5. Referencias Browdy, C A Review of the reproductive biology of Penaeus species: Perspectives on controlled shrimp maturation systems for high quality nauplii production. Pág. : En Wyban. J, (Editor) Procceding of the special session on shrimp farming. World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA. USA Kawahisgashi, D A survey of commercial maturation technology in the western hemisphere. Pág.: En Wyban. J, (Editor) Procceding of the special session on shrimp farming. World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA. USA. Artículo publicado en la Revista AquaTIC nº 10, junio 2000