El desafío de identificar correctamente Enterobacterias. María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
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- Rafael Moreno Valverde
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1 El desafío de identificar correctamente Enterobacterias. María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
2 CARACTERÍSTICAS COCOBACILOS : 0,4-0,6 µm x 2-3 µm GRAM NEGATIVOS NO ESPORULADOS, ANAEROBIOS FACULTATIVOS, MÓVILES O INMÓVILES FERMENTAN GLUCOSA, CATALASA POSITIVOS, OXIDASA NEGATIVOS
3 TAXONOMÍA SECCIÓN 5, 2 da EDICIÓN BERGEY 41 GÉNEROS Y CIENTOS DE ESPECIES CLASIFICACIÓN POR CRITERIOS BIOQUÍMICOS Y ANTIGÉNICOS ACTUALMENTE CRITERIOS GENÉTICOS: HIBRIDACIÓN ADN, SECUENCIACIÓN ADN Y ARNr 16S
4 Familia Enterobacteriaceae 8 Tribus con los correspondientes géneros en cada una de ellas Tribu I: ESCHERICHIEAE: Género I: Escherichia / Género II: Shigella Tribu II: EDWARSIELLEAE : Género I: Edwarsiella Tribu III: SALMONELLEAE: Género I : Salmonella Tribu IV: CITROBACTEREAE : Género I : Citrobacter Tribu V: KLEBSIELLEAE: Género I: Klebsiella / Género II: Enterobacter Género III: Hafnia/ Género IV: Serratia Tribu VI: PROTEEAE: Género I: Proteus / Género II: Morganella Género III: Providencia Tribu VII: YERSINIEAE : Género I : Yersinia Tribu VIII: ERWINIEAE : Género I: Erwinia
5 PODER PATÓGENO ALREDEDOR DE 28 ESPECIES TIENEN IMPORTANCIA CLÍNICA CAUSANTES DE DIVERSOS CUADROS CLÍNICOS PATÓGENAS VERDADERAS O PRIMARIAS PATÓGENAS OPORTUNISTAS O POTENCIALES
6 TIPIFICACIÓN BIOTIPIFICACIÓN: CARACTERES BIOQUÍMICOS SEROTIPIFICACIÓN: ANTÍGENOS O (SOMÁTICOS), K ó Vi (CAPSULARES) y H (FLAGELARES) SEROGRUPOS Y SEROTIPOS
7 TIPIFICACIÓN FAGOTIPIFICACIÓN: DE VALOR EN Salmonella y E. coli PATRÓN DE RESISTENCIA A LOS ANTIMICROBIANOS GENOTIPIFICACIÓN MOLECULAR: GRUPOS CLONALES, etc.
8 Antígenos de Enterobacteriaceae K Ag
9
10 Enterobacterias frecuentes con significación clínica Citrobacter freundii, Citrobacter koserí Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae Escheríchia coli Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca Morganella morganii Proteus mirabilis, Complejo Proteus vulgarís Salmonella entérica Serratia marcescens Shigella sonnei, Shigella flexneri Yersinia pestis, Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis
11 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MEDIOS COMUNES MEDIOS SELECTIVOS/DIFERENCIALES INHIBEN CRECIMIENTO DE GRAM POSITIVAS Y OTRAS GRAM NEGATIVAS NO ENTÉRICAS CITRATO SÓDICO, EOSINA, SALES BILIARES, CRISTAL VIOLETA, etc.
12 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MUESTRAS EXTRAINTESTINALES (sangre, orina, material de abscesos y heridas,tracto respiratorio) Medios enriquecidos/ Cromogénicos Agar Mac Conkey, EMB. MUESTRAS INTESTINALES: Selectivos- diferenciales Enriquecimiento previo
13 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? Oxidasa
14 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? 1- Shigella 2- Grupo KES 3- E.coli
15 TSI
16 TRIBU I : ESCHERICHIEAE
17 Mac Conkey Sorbitol Mac Conkey
18 Cómo diferenciamos Shigella de E.coli? Pruebas E.coli Shigella Indol + (96,3) - ó + (37,8) Lisina decarboxilasa D (80,6) - (0) Ornitina decarbox. D (57,8) - ó + (20) Lactosa + (91,6) - (0,3) Acetato de sodio + (83,3) - (0) Gas de glucosa + (92) - (2,1) Motilidad + ó (62,1) - (0)
19 RM VP
20
21 Diferenciación de Shigella
22 E.coli Shigella
23 TSI LIA Acetato
24 MIO ONPG
25 Clasificación Serológica Especie Serogrupo Serotipo S. dysenteriae A 1-12 S. flexneri B 1-6 S. boydii C 1-18 S. sonnei D 1
26
27 TRIBU II: EDWARDSIELLEAE Indol Trehalosa (fermentación) Manitol, sacarosa (ferm) Arabinosa (fermentación) Malonato (utilización) Movilidad a 37ºC Habitad Prueba bioquímica E.tarda Lactosa (fermentación) - SH /+ - + Hombre y animales
28 TRIBU III:SALMONELLEAE GÉNERO I: Salmonella Salmonella entérica Salmonella bongori
29 Salmonella enterica subesp. enterica (I) Prueba bioquímica Sal.subesp.(I) Lactosa (fermentación)*** - ONPG - SH2 + Glucosa (fermentación)*** +/ con gas Rojo de Metilo* + Voges Proskauer* - Lisina decarboxilasa** + Ornitina decarboxilasa** + Arginina dehidrolasa** + Urea (hidrólisis)** - Malonato (utilización)* - Citrato Simmons** + *Lectura a los 2días **Lectura hasta los 4 días ***Lectura hasta los 7 días Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
30 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Proteus mirabilis Prueba bioquímica Salmonella entérica subesp.enterica(i) Proteus mirabilis SH2 + + Urea (hidrólisis) - + Fenilalaninadeaminasa - + Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + + Lactosa (fermentación) - - Dulcita (fermentación) + - ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
31 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Citrobacter freundii Prueba bioquímica Salm entérica subesp.enterica(i) Citrobacter freundii SH2 + + Urea (hidrólisis) - d Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + d Lactosa (fermentación) - d Sacarosa (fermentación) - d Dulcita (fermentación) + d Malonato (utilización) - d ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
32 Diferencias entre Salmonella enterica subesp.enterica (I), Edwarsiella tarda y Escherichia coli SH2 + Pruebas bioquímicas Salmonella entérica subesp. enterica(i) E.Tarda E.coli SH2+ Indol Citrato Simmosns Lisina decarboxilasa Arginina dehidrolasa + - -/+ Manita (fermentación) Dulcita (fermentación) + - +/- Ramnosa (fermentación) Xylosa (fermentación) ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
33
34 AGAR SS
35 AGAR RAMBACH TSI de Salmonella LIA de Salmonella
36 S.Paratyphi A
37 S. Typhi
38 AGAR XLD
39 TRIBU IV: CITROBACTEREAE
40 Prueba bioquímica Citrobacter spp Movilidad + Citrobacter freundii Manitol (fermentación) + Lisina decarboxilasa - ONPG + Citrato de Simmons + Rojo de Metilo + Voges- Proskauer - Para diferenciar especies, recurrir a las siguientes pruebas: H2S Indol Malonato (fermentación) ODC Adonitol (fermentación) Melibiosa (fermentación) Sacarosa Dulcitol
41 En cepas de Citrobacter freundii pueden ocurrir reacciones atípicas como: ONPG: - ( diferenciar con Salmonella) O clasificadas como S. arizonae por compartir los siguientes caracteres: SH2 +/ ONPG +/ y un perfil de H de carbono muy parecidos También hay cepas SH2:- y Citrato: -
42 TRIBU V: KLEBSIELLEAE
43 GRUPO KES Klebsiella
44 Brock Biología de los Microorganismos 10ª edic.
45
46 Enterobacter aerogenes Pantoea agglomerans
47 Prueba bioquímica E. cloacae E. aerogenes Movilidad + + Lisina decarboxilasa - + Arginina dehidrolasa + -
48 Serratia marcescens D-xylosa(-) D-manosa (+)
49
50 (+) DNAsa (-)
51 Prueba bioquímica Serratia marcescens Serratia liquefaciens Arabinosa (fermentación) - + Xilosa (fermentación) - + Melibiosa (fermentación) - + Rafinosa (fermentación) - + Pigmento rojo d - Se han descripto cepas de S.marcescens excepcionalmente atípicas: lactosa +,o lactosa y rafinosa +, nitrato reductasa -, mucosas y V P -
52 Hafnia alvei ONPG:+, Movilidad:- (37ºC) y +(22ºC), Lisina decarboxilasa:+, ODC:+,ADH:-, Lactosa :- Hay cepas ONPG:- se pueden confundir con Salmonella: Citrato:-, SH2:- Cepas Urea+ (5%) se pueden confundir con Yersinia enteroclotica: diferenciar con LIA:+, Sorbitol:-, Sacarosa:-
53 TRIBU VI: PROTEEAE
54 Proteus
55 Diferenciación entre los géneros Proteus, Providencia y Morganella Test Bioquímicos Proteus a Providencia a Morganella a Citrato V + - Ferm de D- Manosa Liquefacción de gelatina 22ºC H2S en TSI + - V Ferm myo-inositol - V - Ornitina decarboxilasa V - (+) Swarmming Hidrólisis de urea + V + a reacciones dentro de las 48 hs +: % de positivo (+): 75 89,9% de positivo (-) 10,1 a 25 5 de positivo -: 0 10% de positivo O Hara y col Clin Microb Rev
56 Proteus
57 TRIBU VI: YERSINIEAE Género: Yersinia Prueba bioquímica Y.enterocolitica TSI Urea (hidrólisis a 35ºC,1-4 días) Lactosa (fermentación) Fenil alanita deaminasa Rammonsa (fermentación a 25ºC) VP (22º-25ºC) K/A sin gas SH
58
59 Medios cromogénicos- BD CHROMagar Orientation Medium Grupo KES Grupo PMP/ Pae E.coli
60 CPSID3
61
62
63 E.coli
64
65 VITEK
66 María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
67 El desafío de identificar correctamente Enterobacterias. María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
68 CARACTERÍSTICAS COCOBACILOS : 0,4-0,6 µm x 2-3 µm GRAM NEGATIVOS NO ESPORULADOS, ANAEROBIOS FACULTATIVOS, MÓVILES O INMÓVILES FERMENTAN GLUCOSA, CATALASA POSITIVOS, OXIDASA NEGATIVOS
69 TAXONOMÍA SECCIÓN 5, 2 da EDICIÓN BERGEY 41 GÉNEROS Y CIENTOS DE ESPECIES CLASIFICACIÓN POR CRITERIOS BIOQUÍMICOS Y ANTIGÉNICOS ACTUALMENTE CRITERIOS GENÉTICOS: HIBRIDACIÓN ADN, SECUENCIACIÓN ADN Y ARNr 16S
70 Familia Enterobacteriaceae 8 Tribus con los correspondientes géneros en cada una de ellas Tribu I: ESCHERICHIEAE: Género I: Escherichia / Género II: Shigella Tribu II: EDWARSIELLEAE : Género I: Edwarsiella Tribu III: SALMONELLEAE: Género I : Salmonella Tribu IV: CITROBACTEREAE : Género I : Citrobacter Tribu V: KLEBSIELLEAE: Género I: Klebsiella / Género II: Enterobacter Género III: Hafnia/ Género IV: Serratia Tribu VI: PROTEEAE: Género I: Proteus / Género II: Morganella Género III: Providencia Tribu VII: YERSINIEAE : Género I : Yersinia Tribu VIII: ERWINIEAE : Género I: Erwinia
71 PODER PATÓGENO ALREDEDOR DE 28 ESPECIES TIENEN IMPORTANCIA CLÍNICA CAUSANTES DE DIVERSOS CUADROS CLÍNICOS PATÓGENAS VERDADERAS O PRIMARIAS PATÓGENAS OPORTUNISTAS O POTENCIALES
72 TIPIFICACIÓN BIOTIPIFICACIÓN: CARACTERES BIOQUÍMICOS SEROTIPIFICACIÓN: ANTÍGENOS O (SOMÁTICOS), K ó Vi (CAPSULARES) y H (FLAGELARES) SEROGRUPOS Y SEROTIPOS
73 TIPIFICACIÓN FAGOTIPIFICACIÓN: DE VALOR EN Salmonella y E. coli PATRÓN DE RESISTENCIA A LOS ANTIMICROBIANOS GENOTIPIFICACIÓN MOLECULAR: GRUPOS CLONALES, etc.
74 Antígenos de Enterobacteriaceae K Ag
75
76 Enterobacterias frecuentes con significación clínica Citrobacter freundii, Citrobacter koserí Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae Escheríchia coli Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca Morganella morganii Proteus mirabilis, Complejo Proteus vulgarís Salmonella entérica Serratia marcescens Shigella sonnei, Shigella flexneri Yersinia pestis, Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis
77 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MEDIOS COMUNES MEDIOS SELECTIVOS/DIFERENCIALES INHIBEN CRECIMIENTO DE GRAM POSITIVAS Y OTRAS GRAM NEGATIVAS NO ENTÉRICAS CITRATO SÓDICO, EOSINA, SALES BILIARES, CRISTAL VIOLETA, etc.
78 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MUESTRAS EXTRAINTESTINALES (sangre, orina, material de abscesos y heridas,tracto respiratorio) Medios enriquecidos/ Cromogénicos Agar Mac Conkey, EMB. MUESTRAS INTESTINALES: Selectivos- diferenciales Enriquecimiento previo
79 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? Oxidasa
80 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? 1- Shigella 2- Grupo KES 3- E.coli
81 TSI
82 TRIBU I : ESCHERICHIEAE
83 Mac Conkey Sorbitol Mac Conkey
84 Cómo diferenciamos Shigella de E.coli? Pruebas E.coli Shigella Indol + (96,3) - ó + (37,8) Lisina decarboxilasa D (80,6) - (0) Ornitina decarbox. D (57,8) - ó + (20) Lactosa + (91,6) - (0,3) Acetato de sodio + (83,3) - (0) Gas de glucosa + (92) - (2,1) Motilidad + ó (62,1) - (0)
85 RM VP
86
87 Diferenciación de Shigella
88 E.coli Shigella
89 TSI LIA Acetato
90 MIO ONPG
91 Clasificación Serológica Especie Serogrupo Serotipo S. dysenteriae A 1-12 S. flexneri B 1-6 S. boydii C 1-18 S. sonnei D 1
92
93 TRIBU II: EDWARDSIELLEAE Indol Trehalosa (fermentación) Manitol, sacarosa (ferm) Arabinosa (fermentación) Malonato (utilización) Movilidad a 37ºC Habitad Prueba bioquímica E.tarda Lactosa (fermentación) - SH /+ - + Hombre y animales
94 TRIBU III:SALMONELLEAE GÉNERO I: Salmonella Salmonella entérica Salmonella bongori
95 Salmonella enterica subesp. enterica (I) Prueba bioquímica Sal.subesp.(I) Lactosa (fermentación)*** - ONPG - SH2 + Glucosa (fermentación)*** +/ con gas Rojo de Metilo* + Voges Proskauer* - Lisina decarboxilasa** + Ornitina decarboxilasa** + Arginina dehidrolasa** + Urea (hidrólisis)** - Malonato (utilización)* - Citrato Simmons** + *Lectura a los 2días **Lectura hasta los 4 días ***Lectura hasta los 7 días Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
96 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Proteus mirabilis Prueba bioquímica Salmonella entérica subesp.enterica(i) Proteus mirabilis SH2 + + Urea (hidrólisis) - + Fenilalaninadeaminasa - + Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + + Lactosa (fermentación) - - Dulcita (fermentación) + - ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
97 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Citrobacter freundii Prueba bioquímica Salm entérica subesp.enterica(i) Citrobacter freundii SH2 + + Urea (hidrólisis) - d Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + d Lactosa (fermentación) - d Sacarosa (fermentación) - d Dulcita (fermentación) + d Malonato (utilización) - d ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
98 Diferencias entre Salmonella enterica subesp.enterica (I), Edwarsiella tarda y Escherichia coli SH2 + Pruebas bioquímicas Salmonella entérica subesp. enterica(i) E.Tarda E.coli SH2+ Indol Citrato Simmosns Lisina decarboxilasa Arginina dehidrolasa + - -/+ Manita (fermentación) Dulcita (fermentación) + - +/- Ramnosa (fermentación) Xylosa (fermentación) ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
99
100 AGAR SS
101 AGAR RAMBACH TSI de Salmonella LIA de Salmonella
102 S.Paratyphi A
103 S. Typhi
104 AGAR XLD
105 TRIBU IV: CITROBACTEREAE
106 Prueba bioquímica Citrobacter spp Movilidad + Citrobacter freundii Manitol (fermentación) + Lisina decarboxilasa - ONPG + Citrato de Simmons + Rojo de Metilo + Voges- Proskauer - Para diferenciar especies, recurrir a las siguientes pruebas: H2S Indol Malonato (fermentación) ODC Adonitol (fermentación) Melibiosa (fermentación) Sacarosa Dulcitol
107 En cepas de Citrobacter freundii pueden ocurrir reacciones atípicas como: ONPG: - ( diferenciar con Salmonella) O clasificadas como S. arizonae por compartir los siguientes caracteres: SH2 +/ ONPG +/ y un perfil de H de carbono muy parecidos También hay cepas SH2:- y Citrato: -
108 TRIBU V: KLEBSIELLEAE
109 GRUPO KES Klebsiella
110 Brock Biología de los Microorganismos 10ª edic.
111
112 Enterobacter aerogenes Pantoea agglomerans
113 Prueba bioquímica E. cloacae E. aerogenes Movilidad + + Lisina decarboxilasa - + Arginina dehidrolasa + -
114 Serratia marcescens D-xylosa(-) D-manosa (+)
115
116 (+) DNAsa (-)
117 Prueba bioquímica Serratia marcescens Serratia liquefaciens Arabinosa (fermentación) - + Xilosa (fermentación) - + Melibiosa (fermentación) - + Rafinosa (fermentación) - + Pigmento rojo d - Se han descripto cepas de S.marcescens excepcionalmente atípicas: lactosa +,o lactosa y rafinosa +, nitrato reductasa -, mucosas y V P -
118 Hafnia alvei ONPG:+, Movilidad:- (37ºC) y +(22ºC), Lisina decarboxilasa:+, ODC:+,ADH:-, Lactosa :- Hay cepas ONPG:- se pueden confundir con Salmonella: Citrato:-, SH2:- Cepas Urea+ (5%) se pueden confundir con Yersinia enteroclotica: diferenciar con LIA:+, Sorbitol:-, Sacarosa:-
119 TRIBU VI: PROTEEAE
120 Proteus
121 Diferenciación entre los géneros Proteus, Providencia y Morganella Test Bioquímicos Proteus a Providencia a Morganella a Citrato V + - Ferm de D- Manosa Liquefacción de gelatina 22ºC H2S en TSI + - V Ferm myo-inositol - V - Ornitina decarboxilasa V - (+) Swarmming Hidrólisis de urea + V + a reacciones dentro de las 48 hs +: % de positivo (+): 75 89,9% de positivo (-) 10,1 a 25 5 de positivo -: 0 10% de positivo O Hara y col Clin Microb Rev
122 Proteus
123 TRIBU VI: YERSINIEAE Género: Yersinia Prueba bioquímica Y.enterocolitica TSI Urea (hidrólisis a 35ºC,1-4 días) Lactosa (fermentación) Fenil alanita deaminasa Rammonsa (fermentación a 25ºC) VP (22º-25ºC) K/A sin gas SH
124
125 Medios cromogénicos- BD CHROMagar Orientation Medium Grupo KES Grupo PMP/ Pae E.coli
126 CPSID3
127
128
129 E.coli
130
131 VITEK
132 María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
133 El desafío de identificar correctamente Enterobacterias. María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
134 CARACTERÍSTICAS COCOBACILOS : 0,4-0,6 µm x 2-3 µm GRAM NEGATIVOS NO ESPORULADOS, ANAEROBIOS FACULTATIVOS, MÓVILES O INMÓVILES FERMENTAN GLUCOSA, CATALASA POSITIVOS, OXIDASA NEGATIVOS
135 TAXONOMÍA SECCIÓN 5, 2 da EDICIÓN BERGEY 41 GÉNEROS Y CIENTOS DE ESPECIES CLASIFICACIÓN POR CRITERIOS BIOQUÍMICOS Y ANTIGÉNICOS ACTUALMENTE CRITERIOS GENÉTICOS: HIBRIDACIÓN ADN, SECUENCIACIÓN ADN Y ARNr 16S
136 Familia Enterobacteriaceae 8 Tribus con los correspondientes géneros en cada una de ellas Tribu I: ESCHERICHIEAE: Género I: Escherichia / Género II: Shigella Tribu II: EDWARSIELLEAE : Género I: Edwarsiella Tribu III: SALMONELLEAE: Género I : Salmonella Tribu IV: CITROBACTEREAE : Género I : Citrobacter Tribu V: KLEBSIELLEAE: Género I: Klebsiella / Género II: Enterobacter Género III: Hafnia/ Género IV: Serratia Tribu VI: PROTEEAE: Género I: Proteus / Género II: Morganella Género III: Providencia Tribu VII: YERSINIEAE : Género I : Yersinia Tribu VIII: ERWINIEAE : Género I: Erwinia
137 PODER PATÓGENO ALREDEDOR DE 28 ESPECIES TIENEN IMPORTANCIA CLÍNICA CAUSANTES DE DIVERSOS CUADROS CLÍNICOS PATÓGENAS VERDADERAS O PRIMARIAS PATÓGENAS OPORTUNISTAS O POTENCIALES
138 TIPIFICACIÓN BIOTIPIFICACIÓN: CARACTERES BIOQUÍMICOS SEROTIPIFICACIÓN: ANTÍGENOS O (SOMÁTICOS), K ó Vi (CAPSULARES) y H (FLAGELARES) SEROGRUPOS Y SEROTIPOS
139 TIPIFICACIÓN FAGOTIPIFICACIÓN: DE VALOR EN Salmonella y E. coli PATRÓN DE RESISTENCIA A LOS ANTIMICROBIANOS GENOTIPIFICACIÓN MOLECULAR: GRUPOS CLONALES, etc.
140 Antígenos de Enterobacteriaceae K Ag
141
142 Enterobacterias frecuentes con significación clínica Citrobacter freundii, Citrobacter koserí Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae Escheríchia coli Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca Morganella morganii Proteus mirabilis, Complejo Proteus vulgarís Salmonella entérica Serratia marcescens Shigella sonnei, Shigella flexneri Yersinia pestis, Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis
143 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MEDIOS COMUNES MEDIOS SELECTIVOS/DIFERENCIALES INHIBEN CRECIMIENTO DE GRAM POSITIVAS Y OTRAS GRAM NEGATIVAS NO ENTÉRICAS CITRATO SÓDICO, EOSINA, SALES BILIARES, CRISTAL VIOLETA, etc.
144 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MUESTRAS EXTRAINTESTINALES (sangre, orina, material de abscesos y heridas,tracto respiratorio) Medios enriquecidos/ Cromogénicos Agar Mac Conkey, EMB. MUESTRAS INTESTINALES: Selectivos- diferenciales Enriquecimiento previo
145 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? Oxidasa
146 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? 1- Shigella 2- Grupo KES 3- E.coli
147 TSI
148 TRIBU I : ESCHERICHIEAE
149 Mac Conkey Sorbitol Mac Conkey
150 Cómo diferenciamos Shigella de E.coli? Pruebas E.coli Shigella Indol + (96,3) - ó + (37,8) Lisina decarboxilasa D (80,6) - (0) Ornitina decarbox. D (57,8) - ó + (20) Lactosa + (91,6) - (0,3) Acetato de sodio + (83,3) - (0) Gas de glucosa + (92) - (2,1) Motilidad + ó (62,1) - (0)
151 RM VP
152
153 Diferenciación de Shigella
154 E.coli Shigella
155 TSI LIA Acetato
156 MIO ONPG
157 Clasificación Serológica Especie Serogrupo Serotipo S. dysenteriae A 1-12 S. flexneri B 1-6 S. boydii C 1-18 S. sonnei D 1
158
159 TRIBU II: EDWARDSIELLEAE Indol Trehalosa (fermentación) Manitol, sacarosa (ferm) Arabinosa (fermentación) Malonato (utilización) Movilidad a 37ºC Habitad Prueba bioquímica E.tarda Lactosa (fermentación) - SH /+ - + Hombre y animales
160 TRIBU III:SALMONELLEAE GÉNERO I: Salmonella Salmonella entérica Salmonella bongori
161 Salmonella enterica subesp. enterica (I) Prueba bioquímica Sal.subesp.(I) Lactosa (fermentación)*** - ONPG - SH2 + Glucosa (fermentación)*** +/ con gas Rojo de Metilo* + Voges Proskauer* - Lisina decarboxilasa** + Ornitina decarboxilasa** + Arginina dehidrolasa** + Urea (hidrólisis)** - Malonato (utilización)* - Citrato Simmons** + *Lectura a los 2días **Lectura hasta los 4 días ***Lectura hasta los 7 días Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
162 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Proteus mirabilis Prueba bioquímica Salmonella entérica subesp.enterica(i) Proteus mirabilis SH2 + + Urea (hidrólisis) - + Fenilalaninadeaminasa - + Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + + Lactosa (fermentación) - - Dulcita (fermentación) + - ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
163 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Citrobacter freundii Prueba bioquímica Salm entérica subesp.enterica(i) Citrobacter freundii SH2 + + Urea (hidrólisis) - d Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + d Lactosa (fermentación) - d Sacarosa (fermentación) - d Dulcita (fermentación) + d Malonato (utilización) - d ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
164 Diferencias entre Salmonella enterica subesp.enterica (I), Edwarsiella tarda y Escherichia coli SH2 + Pruebas bioquímicas Salmonella entérica subesp. enterica(i) E.Tarda E.coli SH2+ Indol Citrato Simmosns Lisina decarboxilasa Arginina dehidrolasa + - -/+ Manita (fermentación) Dulcita (fermentación) + - +/- Ramnosa (fermentación) Xylosa (fermentación) ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
165
166 AGAR SS
167 AGAR RAMBACH TSI de Salmonella LIA de Salmonella
168 S.Paratyphi A
169 S. Typhi
170 AGAR XLD
171 TRIBU IV: CITROBACTEREAE
172 Prueba bioquímica Citrobacter spp Movilidad + Citrobacter freundii Manitol (fermentación) + Lisina decarboxilasa - ONPG + Citrato de Simmons + Rojo de Metilo + Voges- Proskauer - Para diferenciar especies, recurrir a las siguientes pruebas: H2S Indol Malonato (fermentación) ODC Adonitol (fermentación) Melibiosa (fermentación) Sacarosa Dulcitol
173 En cepas de Citrobacter freundii pueden ocurrir reacciones atípicas como: ONPG: - ( diferenciar con Salmonella) O clasificadas como S. arizonae por compartir los siguientes caracteres: SH2 +/ ONPG +/ y un perfil de H de carbono muy parecidos También hay cepas SH2:- y Citrato: -
174 TRIBU V: KLEBSIELLEAE
175 GRUPO KES Klebsiella
176 Brock Biología de los Microorganismos 10ª edic.
177
178 Enterobacter aerogenes Pantoea agglomerans
179 Prueba bioquímica E. cloacae E. aerogenes Movilidad + + Lisina decarboxilasa - + Arginina dehidrolasa + -
180 Serratia marcescens D-xylosa(-) D-manosa (+)
181
182 (+) DNAsa (-)
183 Prueba bioquímica Serratia marcescens Serratia liquefaciens Arabinosa (fermentación) - + Xilosa (fermentación) - + Melibiosa (fermentación) - + Rafinosa (fermentación) - + Pigmento rojo d - Se han descripto cepas de S.marcescens excepcionalmente atípicas: lactosa +,o lactosa y rafinosa +, nitrato reductasa -, mucosas y V P -
184 Hafnia alvei ONPG:+, Movilidad:- (37ºC) y +(22ºC), Lisina decarboxilasa:+, ODC:+,ADH:-, Lactosa :- Hay cepas ONPG:- se pueden confundir con Salmonella: Citrato:-, SH2:- Cepas Urea+ (5%) se pueden confundir con Yersinia enteroclotica: diferenciar con LIA:+, Sorbitol:-, Sacarosa:-
185 TRIBU VI: PROTEEAE
186 Proteus
187 Diferenciación entre los géneros Proteus, Providencia y Morganella Test Bioquímicos Proteus a Providencia a Morganella a Citrato V + - Ferm de D- Manosa Liquefacción de gelatina 22ºC H2S en TSI + - V Ferm myo-inositol - V - Ornitina decarboxilasa V - (+) Swarmming Hidrólisis de urea + V + a reacciones dentro de las 48 hs +: % de positivo (+): 75 89,9% de positivo (-) 10,1 a 25 5 de positivo -: 0 10% de positivo O Hara y col Clin Microb Rev
188 Proteus
189 TRIBU VII: YERSINIEAE Género: Yersinia Prueba bioquímica Y.enterocolitica TSI Urea (hidrólisis a 35ºC,1-4 días) Lactosa (fermentación) Fenil alanita deaminasa Rammonsa (fermentación a 25ºC) VP (22º-25ºC) K/A sin gas SH
190
191 Medios cromogénicos- BD CHROMagar Orientation Medium Grupo KES Grupo PMP/ Pae E.coli
192 CPSID3
193
194
195 E.coli
196
197 VITEK
198 María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
199 El desafío de identificar correctamente Enterobacterias. María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
200 CARACTERÍSTICAS COCOBACILOS : 0,4-0,6 µm x 2-3 µm GRAM NEGATIVOS NO ESPORULADOS, ANAEROBIOS FACULTATIVOS, MÓVILES O INMÓVILES FERMENTAN GLUCOSA, CATALASA POSITIVOS, OXIDASA NEGATIVOS
201 TAXONOMÍA SECCIÓN 5, 2 da EDICIÓN BERGEY 41 GÉNEROS Y CIENTOS DE ESPECIES CLASIFICACIÓN POR CRITERIOS BIOQUÍMICOS Y ANTIGÉNICOS ACTUALMENTE CRITERIOS GENÉTICOS: HIBRIDACIÓN ADN, SECUENCIACIÓN ADN Y ARNr 16S
202 Familia Enterobacteriaceae 8 Tribus con los correspondientes géneros en cada una de ellas Tribu I: ESCHERICHIEAE: Género I: Escherichia / Género II: Shigella Tribu II: EDWARSIELLEAE : Género I: Edwarsiella Tribu III: SALMONELLEAE: Género I : Salmonella Tribu IV: CITROBACTEREAE : Género I : Citrobacter Tribu V: KLEBSIELLEAE: Género I: Klebsiella / Género II: Enterobacter Género III: Hafnia/ Género IV: Serratia Tribu VI: PROTEEAE: Género I: Proteus / Género II: Morganella Género III: Providencia Tribu VII: YERSINIEAE : Género I : Yersinia Tribu VIII: ERWINIEAE : Género I: Erwinia
203 PODER PATÓGENO ALREDEDOR DE 28 ESPECIES TIENEN IMPORTANCIA CLÍNICA CAUSANTES DE DIVERSOS CUADROS CLÍNICOS PATÓGENAS VERDADERAS O PRIMARIAS PATÓGENAS OPORTUNISTAS O POTENCIALES
204 TIPIFICACIÓN BIOTIPIFICACIÓN: CARACTERES BIOQUÍMICOS SEROTIPIFICACIÓN: ANTÍGENOS O (SOMÁTICOS), K ó Vi (CAPSULARES) y H (FLAGELARES) SEROGRUPOS Y SEROTIPOS
205 TIPIFICACIÓN FAGOTIPIFICACIÓN: DE VALOR EN Salmonella y E. coli PATRÓN DE RESISTENCIA A LOS ANTIMICROBIANOS GENOTIPIFICACIÓN MOLECULAR: GRUPOS CLONALES, etc.
206 Antígenos de Enterobacteriaceae K Ag
207
208 Enterobacterias frecuentes con significación clínica Citrobacter freundii, Citrobacter koserí Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae Escheríchia coli Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca Morganella morganii Proteus mirabilis, Complejo Proteus vulgarís Salmonella entérica Serratia marcescens Shigella sonnei, Shigella flexneri Yersinia pestis, Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis
209 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MEDIOS COMUNES MEDIOS SELECTIVOS/DIFERENCIALES INHIBEN CRECIMIENTO DE GRAM POSITIVAS Y OTRAS GRAM NEGATIVAS NO ENTÉRICAS CITRATO SÓDICO, EOSINA, SALES BILIARES, CRISTAL VIOLETA, etc.
210 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MUESTRAS EXTRAINTESTINALES (sangre, orina, material de abscesos y heridas,tracto respiratorio) Medios enriquecidos/ Cromogénicos Agar Mac Conkey, EMB. MUESTRAS INTESTINALES: Selectivos- diferenciales Enriquecimiento previo
211 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? Oxidasa
212 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? 1- Shigella 2- Grupo KES 3- E.coli
213 TSI
214 TRIBU I : ESCHERICHIEAE
215 Mac Conkey Sorbitol Mac Conkey
216 Cómo diferenciamos Shigella de E.coli? Pruebas E.coli Shigella Indol + (96,3) - ó + (37,8) Lisina decarboxilasa D (80,6) - (0) Ornitina decarbox. D (57,8) - ó + (20) Lactosa + (91,6) - (0,3) Acetato de sodio + (83,3) - (0) Gas de glucosa + (92) - (2,1) Motilidad + ó (62,1) - (0)
217 RM VP
218
219 Diferenciación de Shigella
220 E.coli Shigella
221 TSI LIA Acetato
222 MIO ONPG
223 Clasificación Serológica Especie Serogrupo Serotipo S. dysenteriae A 1-12 S. flexneri B 1-6 S. boydii C 1-18 S. sonnei D 1
224
225 TRIBU II: EDWARDSIELLEAE Indol Trehalosa (fermentación) Manitol, sacarosa (ferm) Arabinosa (fermentación) Malonato (utilización) Movilidad a 37ºC Habitad Prueba bioquímica E.tarda Lactosa (fermentación) - SH /+ - + Hombre y animales
226 TRIBU III:SALMONELLEAE GÉNERO I: Salmonella Salmonella entérica Salmonella bongori
227 Salmonella enterica subesp. enterica (I) Prueba bioquímica Sal.subesp.(I) Lactosa (fermentación)*** - ONPG - SH2 + Glucosa (fermentación)*** +/ con gas Rojo de Metilo* + Voges Proskauer* - Lisina decarboxilasa** + Ornitina decarboxilasa** + Arginina dehidrolasa** + Urea (hidrólisis)** - Malonato (utilización)* - Citrato Simmons** + *Lectura a los 2días **Lectura hasta los 4 días ***Lectura hasta los 7 días Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
228 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Proteus mirabilis Prueba bioquímica Salmonella entérica subesp.enterica(i) Proteus mirabilis SH2 + + Urea (hidrólisis) - + Fenilalaninadeaminasa - + Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + + Lactosa (fermentación) - - Dulcita (fermentación) + - ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
229 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Citrobacter freundii Prueba bioquímica Salm entérica subesp.enterica(i) Citrobacter freundii SH2 + + Urea (hidrólisis) - d Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + d Lactosa (fermentación) - d Sacarosa (fermentación) - d Dulcita (fermentación) + d Malonato (utilización) - d ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
230 Diferencias entre Salmonella enterica subesp.enterica (I), Edwarsiella tarda y Escherichia coli SH2 + Pruebas bioquímicas Salmonella entérica subesp. enterica(i) E.Tarda E.coli SH2+ Indol Citrato Simmosns Lisina decarboxilasa Arginina dehidrolasa + - -/+ Manita (fermentación) Dulcita (fermentación) + - +/- Ramnosa (fermentación) Xylosa (fermentación) ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
231
232 AGAR SS
233 AGAR RAMBACH TSI de Salmonella LIA de Salmonella
234 S.Paratyphi A
235 S. Typhi
236 AGAR XLD
237 TRIBU IV: CITROBACTEREAE
238 Prueba bioquímica Citrobacter spp Movilidad + Citrobacter freundii Manitol (fermentación) + Lisina decarboxilasa - ONPG + Citrato de Simmons + Rojo de Metilo + Voges- Proskauer - Para diferenciar especies, recurrir a las siguientes pruebas: H2S Indol Malonato (fermentación) ODC Adonitol (fermentación) Melibiosa (fermentación) Sacarosa Dulcitol
239 En cepas de Citrobacter freundii pueden ocurrir reacciones atípicas como: ONPG: - ( diferenciar con Salmonella) O clasificadas como S. arizonae por compartir los siguientes caracteres: SH2 +/ ONPG +/ y un perfil de H de carbono muy parecidos También hay cepas SH2:- y Citrato: -
240 TRIBU V: KLEBSIELLEAE
241 GRUPO KES Klebsiella
242 Brock Biología de los Microorganismos 10ª edic.
243
244 Enterobacter aerogenes Pantoea agglomerans
245 Prueba bioquímica E. cloacae E. aerogenes Movilidad + + Lisina decarboxilasa - + Arginina dehidrolasa + -
246 Serratia marcescens D-xylosa(-) D-manosa (+)
247
248 (+) DNAsa (-)
249 Prueba bioquímica Serratia marcescens Serratia liquefaciens Arabinosa (fermentación) - + Xilosa (fermentación) - + Melibiosa (fermentación) - + Rafinosa (fermentación) - + Pigmento rojo d - Se han descripto cepas de S.marcescens excepcionalmente atípicas: lactosa +,o lactosa y rafinosa +, nitrato reductasa -, mucosas y V P -
250 Hafnia alvei ONPG:+, Movilidad:- (37ºC) y +(22ºC), Lisina decarboxilasa:+, ODC:+,ADH:-, Lactosa :- Hay cepas ONPG:- se pueden confundir con Salmonella: Citrato:-, SH2:- Cepas Urea+ (5%) se pueden confundir con Yersinia enteroclotica: diferenciar con LIA:+, Sorbitol:-, Sacarosa:-
251 TRIBU VI: PROTEEAE
252 Proteus
253 Diferenciación entre los géneros Proteus, Providencia y Morganella Test Bioquímicos Proteus a Providencia a Morganella a Citrato V + - Ferm de D- Manosa Liquefacción de gelatina 22ºC H2S en TSI + - V Ferm myo-inositol - V - Ornitina decarboxilasa V - (+) Swarmming Hidrólisis de urea + V + a reacciones dentro de las 48 hs +: % de positivo (+): 75 89,9% de positivo (-) 10,1 a 25 5 de positivo -: 0 10% de positivo O Hara y col Clin Microb Rev
254 Proteus
255 TRIBU VII: YERSINIEAE Género: Yersinia Prueba bioquímica Y.enterocolitica TSI Urea (hidrólisis a 35ºC,1-4 días) Lactosa (fermentación) Fenil alanita deaminasa Rammonsa (fermentación a 25ºC) VP (22º-25ºC) K/A sin gas SH
256
257 Medios cromogénicos- BD CHROMagar Orientation Medium Grupo KES Grupo PMP/ Pae E.coli
258 CPSID3
259
260
261 E.coli
262
263 VITEK
264 María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
265 El desafío de identificar correctamente Enterobacterias María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
266 CARACTERÍSTICAS COCOBACILOS : 0,4-0,6 µm x 2-3 µm GRAM NEGATIVOS NO ESPORULADOS, ANAEROBIOS FACULTATIVOS, MÓVILES O INMÓVILES FERMENTAN GLUCOSA, CATALASA POSITIVOS, OXIDASA NEGATIVOS
267 TAXONOMÍA SECCIÓN 5, 2 da EDICIÓN BERGEY 41 GÉNEROS Y CIENTOS DE ESPECIES CLASIFICACIÓN POR CRITERIOS BIOQUÍMICOS Y ANTIGÉNICOS ACTUALMENTE CRITERIOS GENÉTICOS: HIBRIDACIÓN ADN, SECUENCIACIÓN ADN Y ARNr 16S
268 Familia Enterobacteriaceae 8 Tribus con los correspondientes géneros en cada una de ellas Tribu I: ESCHERICHIEAE: Género I: Escherichia / Género II: Shigella Tribu II: EDWARSIELLEAE : Género I: Edwarsiella Tribu III: SALMONELLEAE: Género I : Salmonella Tribu IV: CITROBACTEREAE : Género I : Citrobacter Tribu V: KLEBSIELLEAE: Género I: Klebsiella / Género II: Enterobacter Género III: Hafnia/ Género IV: Serratia Tribu VI: PROTEEAE: Género I: Proteus / Género II: Morganella Género III: Providencia Tribu VII: YERSINIEAE : Género I : Yersinia Tribu VIII: ERWINIEAE : Género I: Erwinia
269 PODER PATÓGENO ALREDEDOR DE 28 ESPECIES TIENEN IMPORTANCIA CLÍNICA CAUSANTES DE DIVERSOS CUADROS CLÍNICOS PATÓGENAS VERDADERAS O PRIMARIAS PATÓGENAS OPORTUNISTAS O POTENCIALES
270
271 Enterobacterias frecuentes con significación clínica Citrobacter freundii, Citrobacter koserí Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae Escheríchia coli Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca Morganella morganii Proteus mirabilis, Complejo Proteus vulgarís Salmonella entérica Serratia marcescens Shigella sonnei, Shigella flexneri Yersinia pestis, Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis
272 TIPIFICACIÓN BIOTIPIFICACIÓN: CARACTERES BIOQUÍMICOS SEROTIPIFICACIÓN: ANTÍGENOS O (SOMÁTICOS), K ó Vi (CAPSULARES) y H (FLAGELARES) SEROGRUPOS Y SEROTIPOS
273 TIPIFICACIÓN FAGOTIPIFICACIÓN: DE VALOR EN Salmonella y E. coli PATRÓN DE RESISTENCIA A LOS ANTIMICROBIANOS GENOTIPIFICACIÓN MOLECULAR: GRUPOS CLONALES, etc.
274 Antígenos de Enterobacteriaceae K Ag
275 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MEDIOS COMUNES MEDIOS SELECTIVOS/DIFERENCIALES INHIBEN CRECIMIENTO DE GRAM POSITIVAS Y OTRAS GRAM NEGATIVAS NO ENTÉRICAS CITRATO SÓDICO, EOSINA, SALES BILIARES, CRISTAL VIOLETA, etc.
276 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MUESTRAS EXTRAINTESTINALES (sangre, orina, material de abscesos y heridas,tracto respiratorio) Medios enriquecidos/ Cromogénicos Agar Mac Conkey, EMB. MUESTRAS INTESTINALES: Selectivos- diferenciales Enriquecimiento previo
277 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? Oxidasa
278 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? 1- Shigella 2- Grupo KES 3- E.coli
279 TSI
280 TRIBU I : ESCHERICHIEAE
281 Mac Conkey Sorbitol Mac Conkey
282 Cómo diferenciamos Shigella de E.coli? Pruebas E.coli Shigella Indol + (96,3) - ó + (37,8) Lisina decarboxilasa D (80,6) - (0) Ornitina decarbox. D (57,8) - ó + (20) Lactosa + (91,6) - (0,3) Acetato de sodio + (83,3) - (0) Gas de glucosa + (92) - (2,1) Motilidad + ó (62,1) - (0)
283 RM VP
284
285 Diferenciación de Shigella
286 E.coli Shigella
287 TSI LIA Acetato
288 MIO ONPG
289 Clasificación Serológica Especie Serogrupo Serotipo S. dysenteriae A 1-12 S. flexneri B 1-6 S. boydii C 1-18 S. sonnei D 1
290
291 TRIBU II: EDWARDSIELLEAE Prueba bioquímica E.tarda Lactosa (fermentación) - SH 2 + Indol + Trehalosa (fermentación) - Manitol, sacarosa (ferm) - Arabinosa (fermentación) -/+ Malonato (utilización) - Movilidad a 37ºC + Habitad Hombre y animales
292 TRIBU III:SALMONELLEAE GÉNERO I: Salmonella Salmonella entérica Salmonella bongori
293 Salmonella enterica subesp. enterica (I) Prueba bioquímica Sal.subesp.(I) Lactosa (fermentación)*** - ONPG - SH2 + Glucosa (fermentación)*** +/ con gas Rojo de Metilo* + Voges Proskauer* - Lisina decarboxilasa** + Ornitina decarboxilasa** + Arginina dehidrolasa** + Urea (hidrólisis)** - Malonato (utilización)* - Citrato Simmons** + *Lectura a los 2días **Lectura hasta los 4 días ***Lectura hasta los 7 días Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
294 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Proteus mirabilis Prueba bioquímica Salmonella entérica subesp.enterica(i) Proteus mirabilis SH2 + + Urea (hidrólisis) - + Fenilalaninadeaminasa - + Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + + Lactosa (fermentación) - - Dulcita (fermentación) + - ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
295 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Citrobacter freundii Prueba bioquímica Salm entérica subesp.enterica(i) Citrobacter freundii SH2 + + Urea (hidrólisis) - d Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + d Lactosa (fermentación) - d Sacarosa (fermentación) - d Dulcita (fermentación) + d Malonato (utilización) - d ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
296 Diferencias entre Salmonella enterica subesp.enterica (I), Edwarsiella tarda y Escherichia coli SH2 + Pruebas bioquímicas Salmonella entérica subesp. enterica(i) E.tarda E.coli SH2+ Indol Citrato Simmosns Lisina decarboxilasa Arginina dehidrolasa + - -/+ Manita (fermentación) Dulcita (fermentación) + - +/- Ramnosa (fermentación) Xylosa (fermentación) ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
297
298 AGAR SS
299 AGAR RAMBACH TSI de Salmonella LIA de Salmonella
300 ODC + LIA - S.Paratyphi A
301 ODC - LIA + S. Typhi
302 AGAR XLD
303 TRIBU IV: CITROBACTEREAE
304 Prueba bioquímica Citrobacter spp Movilidad + Citrobacter freundii Manitol (fermentación) + Lisina decarboxilasa - ONPG + Citrato de Simmons + Rojo de Metilo + Voges- Proskauer - Para diferenciar especies, recurrir a las siguientes pruebas: H2S Indol Malonato (fermentación) ODC Adonitol (fermentación) Melibiosa (fermentación) Sacarosa Dulcitol
305 En cepas de Citrobacter freundii pueden ocurrir reacciones atípicas como: ONPG: - ( diferenciar con Salmonella) O clasificadas como S. arizonae por compartir los siguientes caracteres: SH2 +/ ONPG +/ y un perfil de H de carbono muy parecidos También hay cepas SH2:- y Citrato: -
306 TRIBU V: KLEBSIELLEAE Géneros: KES y Hafnia
307 GRUPO KES Klebsiella
308 Brock Biología de los Microorganismos 10ª edic.
309
310 Enterobacter aerogenes Pantoea agglomerans
311 Prueba bioquímica E. cloacae E. aerogenes Movilidad + + Lisina decarboxilasa - + Arginina dehidrolasa + -
312 Serratia marcescens D-xylosa(-) D-manosa (+)
313
314 (+) DNAsa (-)
315 Prueba bioquímica Serratia marcescens Serratia liquefaciens Arabinosa (fermentación) - + Xilosa (fermentación) - + Melibiosa (fermentación) - + Rafinosa (fermentación) - + Pigmento rojo d - Se han descripto cepas de S.marcescens excepcionalmente atípicas: lactosa +,o lactosa y rafinosa +, nitrato reductasa -, mucosas y V P -
316 Hafnia alvei ONPG:+, Movilidad:- (37ºC) y +(22ºC), Lisina decarboxilasa:+, ODC:+,ADH:-, Lactosa :- Hay cepas ONPG:- se pueden confundir con Salmonella: Citrato:-, SH2:- Cepas Urea+ (5%) se pueden confundir con Yersinia enteroclotica: diferenciar con LIA:+, Sorbitol:-, Sacarosa:-
317 TRIBU VI: PROTEEAE Géneros: Proteus, Morganella y Providencia
318 Proteus
319 Diferenciación entre los géneros Proteus, Providencia y Morganella Test Bioquímicos Proteus a Providencia a Morganella a Citrato V + - Ferm de D- Manosa Liquefacción de gelatina 22ºC H2S en TSI + - V Ferm myo-inositol - V - Ornitina decarboxilasa V - (+) Swarmming Hidrólisis de urea + V + a reacciones dentro de las 48 hs +: % de positivo (+): 75 89,9% de positivo (-) 10,1 a 25 5 de positivo -: 0 10% de positivo O Hara y col Clin Microb Rev
320 Proteus
321 TRIBU VII: YERSINIEAE Género: Yersinia Prueba bioquímica Y.enterocolitica TSI K/A sin gas SH2 - Urea (hidrólisis a 35ºC,1-4 días) + Lactosa (fermentación) - Fenil alanita deaminasa - Rammonsa (fermentación a 25ºC) - VP (22º-25ºC) +
322
323 Medios cromogénicos- BD CHROMagar Orientation Medium Grupo KES Grupo PMP/ Pae E.coli
324 CPSID3
325
326
327 E.coli
328
329 VITEK
330 María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
331 Para consultas y derivaciones Laboratorio Central de la Provincia de Córdoba Tránsito Cáceres de Allende Córdoba Te: Biología Molecular María Emilia Suárez mevsuarez@yahoo.com.ar Cel:
332 El desafío de identificar correctamente Enterobacterias María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
333 CARACTERÍSTICAS COCOBACILOS : 0,4-0,6 µm x 2-3 µm GRAM NEGATIVOS NO ESPORULADOS, ANAEROBIOS FACULTATIVOS, MÓVILES O INMÓVILES FERMENTAN GLUCOSA, CATALASA POSITIVOS, OXIDASA NEGATIVOS
334 TAXONOMÍA SECCIÓN 5, 2 da EDICIÓN BERGEY 41 GÉNEROS Y CIENTOS DE ESPECIES CLASIFICACIÓN POR CRITERIOS BIOQUÍMICOS Y ANTIGÉNICOS ACTUALMENTE CRITERIOS GENÉTICOS: HIBRIDACIÓN ADN, SECUENCIACIÓN ADN Y ARNr 16S
335 Familia Enterobacteriaceae 8 Tribus con los correspondientes géneros en cada una de ellas Tribu I: ESCHERICHIEAE: Género I: Escherichia / Género II: Shigella Tribu II: EDWARSIELLEAE : Género I: Edwarsiella Tribu III: SALMONELLEAE: Género I : Salmonella Tribu IV: CITROBACTEREAE : Género I : Citrobacter Tribu V: KLEBSIELLEAE: Género I: Klebsiella / Género II: Enterobacter Género III: Hafnia/ Género IV: Serratia Tribu VI: PROTEEAE: Género I: Proteus / Género II: Morganella Género III: Providencia Tribu VII: YERSINIEAE : Género I : Yersinia Tribu VIII: ERWINIEAE : Género I: Erwinia
336 PODER PATÓGENO ALREDEDOR DE 28 ESPECIES TIENEN IMPORTANCIA CLÍNICA CAUSANTES DE DIVERSOS CUADROS CLÍNICOS PATÓGENAS VERDADERAS O PRIMARIAS PATÓGENAS OPORTUNISTAS O POTENCIALES
337
338 Enterobacterias frecuentes con significación clínica Citrobacter freundii, Citrobacter koserí Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae Escheríchia coli Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca Morganella morganii Proteus mirabilis, Complejo Proteus vulgarís Salmonella entérica Serratia marcescens Shigella sonnei, Shigella flexneri Yersinia pestis, Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis
339 TIPIFICACIÓN BIOTIPIFICACIÓN: CARACTERES BIOQUÍMICOS SEROTIPIFICACIÓN: ANTÍGENOS O (SOMÁTICOS), K ó Vi (CAPSULARES) y H (FLAGELARES) SEROGRUPOS Y SEROTIPOS
340 TIPIFICACIÓN FAGOTIPIFICACIÓN: DE VALOR EN Salmonella y E. coli PATRÓN DE RESISTENCIA A LOS ANTIMICROBIANOS GENOTIPIFICACIÓN MOLECULAR: GRUPOS CLONALES, etc.
341 Antígenos de Enterobacteriaceae K Ag
342 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MEDIOS COMUNES MEDIOS SELECTIVOS/DIFERENCIALES INHIBEN CRECIMIENTO DE GRAM POSITIVAS Y OTRAS GRAM NEGATIVAS NO ENTÉRICAS CITRATO SÓDICO, EOSINA, SALES BILIARES, CRISTAL VIOLETA, etc.
343 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN MUESTRAS EXTRAINTESTINALES (sangre, orina, material de abscesos y heridas,tracto respiratorio) Medios enriquecidos/ Cromogénicos Agar Mac Conkey, EMB. MUESTRAS INTESTINALES: Selectivos- diferenciales Enriquecimiento previo
344 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? Oxidasa
345 Qué medios usamos y que aspecto presentan las colonias? 1- Shigella 2- Grupo KES 3- E.coli
346 TSI
347 TRIBU I : ESCHERICHIEAE
348 Mac Conkey Sorbitol Mac Conkey
349 Cómo diferenciamos Shigella de E.coli? Pruebas E.coli Shigella Indol + (96,3) - ó + (37,8) Lisina decarboxilasa D (80,6) - (0) Ornitina decarbox. D (57,8) - ó + (20) Lactosa + (91,6) - (0,3) Acetato de sodio + (83,3) - (0) Gas de glucosa + (92) - (2,1) Motilidad + ó (62,1) - (0)
350 RM VP
351
352 Diferenciación de Shigella
353 E.coli Shigella
354 TSI LIA Acetato
355 MIO ONPG
356 Clasificación Serológica Especie Serogrupo Serotipo S. dysenteriae A 1-12 S. flexneri B 1-6 S. boydii C 1-18 S. sonnei D 1
357
358 TRIBU II: EDWARDSIELLEAE Prueba bioquímica E.tarda Lactosa (fermentación) - SH 2 + Indol + Trehalosa (fermentación) - Manitol, sacarosa (ferm) - Arabinosa (fermentación) -/+ Malonato (utilización) - Movilidad a 37ºC + Habitad Hombre y animales
359 TRIBU III:SALMONELLEAE GÉNERO I: Salmonella Salmonella entérica Salmonella bongori
360 Salmonella enterica subesp. enterica (I) Prueba bioquímica Sal.subesp.(I) Lactosa (fermentación)*** - ONPG - SH2 + Glucosa (fermentación)*** +/ con gas Rojo de Metilo* + Voges Proskauer* - Lisina decarboxilasa** + Ornitina decarboxilasa** + Arginina dehidrolasa** + Urea (hidrólisis)** - Malonato (utilización)* - Citrato Simmons** + *Lectura a los 2días **Lectura hasta los 4 días ***Lectura hasta los 7 días Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
361 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Proteus mirabilis Prueba bioquímica Salmonella entérica subesp.enterica(i) Proteus mirabilis SH2 + + Urea (hidrólisis) - + Fenilalaninadeaminasa - + Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + + Lactosa (fermentación) - - Dulcita (fermentación) + - ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
362 Diferencias entre Salmonella subesp.enterica (I) y Citrobacter freundii Prueba bioquímica Salm entérica subesp.enterica(i) Citrobacter freundii SH2 + + Urea (hidrólisis) - d Lisina decarboxilasa + - Ornitina decarboxilasa + d Lactosa (fermentación) - d Sacarosa (fermentación) - d Dulcita (fermentación) + d Malonato (utilización) - d ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
363 Diferencias entre Salmonella enterica subesp.enterica (I), Edwarsiella tarda y Escherichia coli SH2 + Pruebas bioquímicas Salmonella entérica subesp. enterica(i) E.tarda E.coli SH2+ Indol Citrato Simmosns Lisina decarboxilasa Arginina dehidrolasa + - -/+ Manita (fermentación) Dulcita (fermentación) + - +/- Ramnosa (fermentación) Xylosa (fermentación) ONPG % o más de los resultados positivos, - 90% o más de los resultados negativos, d: diferentes reacciones Servicio Enterobacterias. ANLIS.INEI. Carlos G.Malbrán 2008
364
365 AGAR SS
366 AGAR RAMBACH TSI de Salmonella LIA de Salmonella
367 ODC + LIA - S.Paratyphi A
368 ODC - LIA + S. Typhi
369 AGAR XLD
370 TRIBU IV: CITROBACTEREAE
371 Prueba bioquímica Citrobacter spp Movilidad + Citrobacter freundii Manitol (fermentación) + Lisina decarboxilasa - ONPG + Citrato de Simmons + Rojo de Metilo + Voges- Proskauer - Para diferenciar especies, recurrir a las siguientes pruebas: H2S Indol Malonato (fermentación) ODC Adonitol (fermentación) Melibiosa (fermentación) Sacarosa Dulcitol
372 En cepas de Citrobacter freundii pueden ocurrir reacciones atípicas como: ONPG: - ( diferenciar con Salmonella) O clasificadas como S. arizonae por compartir los siguientes caracteres: SH2 +/ ONPG +/ y un perfil de H de carbono muy parecidos También hay cepas SH2:- y Citrato: -
373 TRIBU V: KLEBSIELLEAE Géneros: KES y Hafnia
374 GRUPO KES Klebsiella
375 Brock Biología de los Microorganismos 10ª edic.
376
377 Enterobacter aerogenes Pantoea agglomerans
378 Prueba bioquímica E. cloacae E. aerogenes Movilidad + + Lisina decarboxilasa - + Arginina dehidrolasa + -
379 Serratia marcescens D-xylosa(-) D-manosa (+)
380
381 (+) DNAsa (-)
382 Prueba bioquímica Serratia marcescens Serratia liquefaciens Arabinosa (fermentación) - + Xilosa (fermentación) - + Melibiosa (fermentación) - + Rafinosa (fermentación) - + Pigmento rojo d - Se han descripto cepas de S.marcescens excepcionalmente atípicas: lactosa +,o lactosa y rafinosa +, nitrato reductasa -, mucosas y V P -
383 Hafnia alvei ONPG:+, Movilidad:- (37ºC) y +(22ºC), Lisina decarboxilasa:+, ODC:+,ADH:-, Lactosa :- Hay cepas ONPG:- se pueden confundir con Salmonella: Citrato:-, SH2:- Cepas Urea+ (5%) se pueden confundir con Yersinia enteroclotica: diferenciar con LIA:+, Sorbitol:-, Sacarosa:-
384 TRIBU VI: PROTEEAE Géneros: Proteus, Morganella y Providencia
385 Proteus
386 Diferenciación entre los géneros Proteus, Providencia y Morganella Test Bioquímicos Proteus a Providencia a Morganella a Citrato V + - Ferm de D- Manosa Liquefacción de gelatina 22ºC H2S en TSI + - V Ferm myo-inositol - V - Ornitina decarboxilasa V - (+) Swarmming Hidrólisis de urea + V + a reacciones dentro de las 48 hs +: % de positivo (+): 75 89,9% de positivo (-) 10,1 a 25 5 de positivo -: 0 10% de positivo O Hara y col Clin Microb Rev
387 Proteus
388 TRIBU VII: YERSINIEAE Género: Yersinia Prueba bioquímica Y.enterocolitica TSI K/A sin gas SH2 - Urea (hidrólisis a 35ºC,1-4 días) + Lactosa (fermentación) - Fenil alanita deaminasa - Rammonsa (fermentación a 25ºC) - VP (22º-25ºC) +
389
390 Medios cromogénicos- BD CHROMagar Orientation Medium Grupo KES Grupo PMP/ Pae E.coli
391 CPSID3
392
393
394 E.coli
395
396 VITEK
397 María Emilia Suárez Bioq.Bacterióloga
398 Para consultas y derivaciones Laboratorio Central de la Provincia de Córdoba Tránsito Cáceres de Allende Córdoba Te: Biología Molecular María Emilia Suárez mevsuarez@yahoo.com.ar Cel:
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