MATERIALES Y MÉTODOS Estandarización del Ensayo de Actividad Antiproliferativa de Propóleos sobre los Trofozoítos de G. lamblia

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1 MATERIALES Y MÉTODOS Estandarización del Ensayo de Actividad Antiproliferativa de Propóleos sobre los Trofozoítos de G. lamblia Cultivo de G. lamblia Para la realización del presente trabajo, se utilizaron trofozoítos de G. lamblia cepa GS/M-83-H7 (ATCC50581), los cuales se mantuvieron en medio de cultivo de TYI-S33 suplementado con suero de ternera recién nacida (NBCS. GIBCO. Invitrogen) al 10 %, a 37 C, Ceftriaxona 100 µg/ml y en condiciones microaerofilicas (Anexo 1) (Keister, 1983; Núñez Fernández, 2004). Uso del DMSO como Disolvente de Propóleos Para poder evaluar la actividad antiparasitaria de los propóleos fue necesario el uso de un solvente. Se eligió utilizar dimetil sulfóxido (DMSO) ya que ha sido probada su utilidad como disolvente de propóleos. Se establecieron las concentraciones óptimas de DMSO para el desarrollo y crecimiento del cultivo a experimentar. Para ello se realizaron ensayos de proliferación por triplicado a diferentes concentraciones seriadas en tubos de 2 ml de vidrio con tapadera de rosca (FISHER A) en medio de TYI-S33. Se utilizó una concentración de 1x10 5 trofozoítos/ml (2 ml) y se observó el crecimiento del cultivo durante 48 horas. Al término de este tiempo se evaluó la viabilidad celular utilizando un hematocitómetro mediante el colorante de azul de tripán (Sigma. St. Louis MO) (Anexo 2). 31

2 Uso de Albendazol como Control de Inhibición Para evaluar el ensayo de proliferación de los trofozoítos de G. lamblia fue necesario utilizar una droga antigiardiásica para funcionar como grupo control de inhibición. Se seleccionó albendazol, un antiparasitario con eficacia probada sobre G. lamblia. Se realizaron ensayos de proliferación celular por triplicado a diferentes concentraciones seriadas en tubos de 2 ml de vidrio con tapadera de rosca (Wheaton ) en medio de TYI-S33 con una concentración de 1x10 5 trofozoítos/ml (2 ml) y con seguimiento de 48 horas. Recolección y Obtención de los Propóleos Sonorenses Los propóleos se recolectaron durante los meses de junio del 2001 a febrero del 2003, a partir de varias colmenas colocadas en los alrededores de Pueblo de Álamos (N29 15 W ). El propóleo de Caborca (N30 46 W ), fue recolectado entre marzo y junio del 2006 mientras que en Ures (N29 27 W ), la recolección se realizó por temporadas, entre los meses de marzo del 2008 y marzo del 2009 (Figura 8) siendo almacenados a -20 C hasta su uso. Obtención de Extractos Metanólicos Se registró el peso total de cada uno de los propóleos recolectados (Tabla 3) y se procedió a molerlos hasta obtener una mezcla dispersa, a la cual se le adicionaron 300 ml de metanol grado reactivo (MeOH Sigma, proporción 1:9) y se mantuvo en agitación durante 4 horas para posteriormente ser conservada en reposo, en ausencia de luz y a temperatura ambiente por 24 h. Después del tiempo en reposo, se retiró el contenido que fue soluble en metanol y se colocó en un agitador mecánico durante 6 horas, para después pasar a reposo en oscuridad y a temperatura ambiente por 18 horas. Este proceso de agitación se repitió por 5 días consecutivos. Posteriormente, la solución 32

3 se filtró sobre una tela de algodón con la finalidad de eliminar restos sólidos como madera, tallos y piedras y enseguida se filtró con papel whatman de poro grueso para eliminar partículas de polvo. El filtrado se concentró en un Rotavapor-Buchi y un baño Rotavapor-Buchi-Heating-bath (B-490) a 56 C bajo presión reducida durante 30 minutos. Este procedimiento se repitió 3 veces hasta obtener el extracto metanólico con una consistencia viscosa de color café claro, con olor característico y sabor amargo. Al finalizar la extracción se almacena en frascos de 10 ml protegido de la luz envuelto en papel aluminio a temperatura ambiente. Evaluación de la Actividad Antiparasitaria de los Extractos Metanólicos de los Propóleos Sonorenses Para evaluar la actividad antiparasitaria de los extractos de los propóleos MeOH se utilizaron trofozoítos de G. lamblia cepa GS/M-H7 (ATCC50581). Se realizaron soluciones en medio de cultivo TYI S33 para obtener diluciones en concentraciones de 200, 100, 50 y 25 µg/ml de cada uno de los extractos. El ensayo se realizó en tubos de 2 ml con 1x10 5 trofozoítos/ml, incubados a 37 C por 12 horas en medio de cultivo TYI- S33. Los tubos fueron agrupados en conjuntos de 3 para facilitar su manejo, de tal forma que existía un set de 3 tubos para cada concentración de extracto. Se tomaron 100 µl de cada una de las concentraciones y se adicionaron por triplicado. A otro conjunto de estos tubos se les adicionó albendazol como control de inhibición. Así mismo se trabajó otro conjunto con DMSO como control de referencia y un último conjunto como control de crecimiento normal. Una vez adicionados, se incubaron a 37 C por 72 horas siendo monitoreados cada 24 horas. Una vez cumplido el tiempo de incubación, fueron colocados en agua con hielo por un periodo de 20 minutos para logar el desprendimiento de los trofozoítos de la pared del tubo para posteriormente ser evaluados utilizando una cámara de Neubauer. Los resultados fueron graficados en el programa Microsoft Excel

4 Figura 8. Mapa de Sonora. Lugar de recolección en las regiones de Caborca, Pueblo de Álamos y Ures. Fuente: INEGI. Marco Geoestadistico municipal

5 Evaluación de la actividad antiparasitaria del CAPE Uno de los constituyentes encontrados en los propóleos de Ures conocido como éster fenetílico del ácido caféico (CAPE, sintetizado por el laboratorio de biopolimeros del CIAD A. C.), ha sido probado por su actividad antiproliferativa ante las células de M12.A K. C3F6, los resultados (Figura 9) demuestran que el CAPE posee actividad antiproliferativa. Por tal motivo se ha determinado conocer si el CAPE es capaz de inhibir la proliferación celular de los trofozoítos de G. lamblia. Para ellos se realizaron ensayos de proliferación celular en cultivos axénicos de trofozoítos de G. lamblia haciendo uso de la misma técnica utilizada para los extractos metanólicos pero a concentraciones de 75, 150, 300 y 600 µm. Obtención del Extracto Hexánico, Etéreo y de Acetato de Etilo de Caborca Para obtener el extracto hexánico se tomaron 7.1 gr del extracto metanólico y se trataron con 100 ml de hexano manteniéndose en agitación constante durante 12 horas, tiempo tras el cual se almacenó en una campana de extracción y en oscuridad por 12 horas para después ser agitado nuevamente; este procedimiento se repitió en 3 ocasiones. La parte soluble se filtró sobre papel whatman de poro grueso utilizando una bomba de vacío. Un vez fliltrado, se concentró en un Rotavapor-Buchi bajo presión reducida a una temperatura aproximada de 40 C en donde se obtuvieron 0.4 gr de un sólido amarillo viscoso que fue etiquetado como Extracto Hexánico (EH). La parte insoluble en hexano se disolvió en éter etílico y se procesó de la misma forma que los demás extractos. Como resultado se obtuvieron 4.9 gr de extracto etéreo (EE). La porción insoluble en éter etílico se disolvió en acetato de etilo y se obtuvieron 0.6 gr de extracto de acetato de etilo (ATOE). 35

6 Figura 9. Evaluación del CAPE sobre la línea celular M12.A K. C3F6. La proliferación celular se evaluó a las 48 horas posteriores a la adición del solvente al cultivo celular. Como cultivo control (0) se utilizaron cultivos celulares en presencia de la máxima concentración del disolvente requerido para los compuestos (0.5 % de DMSO). Datos proporcionados por Q.B. Jesús Efraín Alday Noriega 36

7 Evaluación de la Actividad Antiparasitaria de los Extractos de Acetato de Etilo y Etéreo de Caborca La evaluación de la actividad antiparasitaria de los extractos de acetato de etilo y etéreo de Caborca se llevó a cabo utilizando el mismo procedimiento que se utilizó con los extractos metanólicos, trabajando siempre por triplicado. Purificación del Extracto Hexánico y Etéreo de Caborca Se sometieron 0.5 gr de extracto hexánico de Caborca a un estudio por cromatografía en columna de vidrio (65 x 3 cm), con una fase estacionaria de sílica gel 60, con tamaño de partícula mm, en la fase móvil se añadieron una mezcla de hexano/acetato de etilo en gradientes 95:5 y soluciones sucesivas de la misma mezcla de: 90:10, 80:20, hasta 100% de acetato de etilo. El avance en la purificación se evaluó por cromatografía en capa fina, usando cromatófilos de sílica gel 60 (0.2 mm grosor), F-254 (1x5 cm), los cuales fueron observados con luz UV de 254 y 365 nm, y revelados mediante exposición a vapores de yodo o soluciones de ácido sulfúrico al 10 %. Los compuestos se concentraron en viales de vidrio de 60 ml y fueron evaporados al vacío a 40 o C. Análisis Estadístico Los datos obtenidos se sometieron a un análisis de varianza (ANOVA) utilizando las pruebas de comparación múltiple de Duncan y Turkey-Kramer utilizando el paquete estadístico Number Cruncher Statistical Softwere (NCSS 2000). 37