IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay Para la Identificación del Linfoma del Manto y de otros Linfomas y Leucemias Para Diagnóstico In Vitro

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1 Servicio Técnico: Servicio al Cliente (EUA): Servicio al Cliente (UE): IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay Para la Identificación del Linfoma del Manto y de otros Linfomas y Leucemias Para Diagnóstico In Vitro Simbología utilizada Para Diagnóstico In Vitro Número de Catálogo Volumen de Reactivo Número de Lote Condiciones de Almacenamiento Fecha de Vencimiento Representante Autorizado en la Unión Europea Fabricante Consulte las Instrucciones para su Uso Condiciones de almacenamiento: -65 C a -85ºC (Los controles de ADN pueden separarse del resto de los materiales del ensayo y mantenerse a una temperatura entre 2 C y 8 C) Nro. de Catálogo Productos Cantidad IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay Gel Detection 33 Reacciones IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay MegaKit Gel Detection 330 Reacciones

2 Página 2 de 14 Contenidos 1. MARCA REGISTRADA USO PREVISTO RESUMEN Y DESCRIPCIÓN DEL ENSAYO PRINCIPIOS DEL PROCEDIMIENTO REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA (PCR) DETECCIÓN EN GELES REACTIVOS COMPONENTES PRECAUCIONES Y ADVERTENCIAS ALMACENAMIENTO Y MANIPULACIÓN INSTRUMENTOS TERMOCICLADOR UNIDAD DE ELECTROFORESIS UNIDAD DE ILUMINACIÓN UV RECOGIDA Y PREPARACIÓN DE LA MUESTRA PRECAUCIONES SUSTANCIAS QUE INTERFIEREN REQUERIMIENTOS DE LA MUESTRA Y SU MANIPULACIÓN PREPARACIÓN DE LA MUESTRA CONSERVACIÓN DE LA MUESTRA PROCEDIMIENTO DEL ENSAYO MATERIALES SUMINISTRADOS EN EL KIT MATERIALES REQUERIDOS PERO NO SUMINISTRADOS EN EL KIT PREPARACIÓN DE LOS REACTIVOS AMPLIFICACIÓN DETECCIÓN EN GELES GELES DE AGAROSA TBE CONTROL DE CALIDAD CONTROLES POSITIVOS RECOMENDADOS INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS ANÁLISIS INTERPRETACIÓN DE LA MUESTRA PROBLEMA LIMITACIONES DEL ENSAYO VALORES ESPERADOS TAMAÑO ESPERADO DE LOS PRODUCTOS AMPLIFICADOS RESULTADOS DE LA MUESTRA CARACTERÍSTICAS ANALÍTICAS BIBLIOGRAFÍA SERVICIO TÉCNICO Y AL CLIENTE ASPECTOS LEGALES... 14

3 Página 3 de Marca Registrada IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay Gel Detection IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay MegaKit Gel Detection 2. Uso Previsto El IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay, es una prueba diagnóstica in vitro basada en la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), diseñada para la identificación de las translocaciónes genéticas BCL1/JH t(11;14)(q13;q32) en pacientes con sospechas de enfermedades linfoproliferativas. Específicamente, el BCL1/JH Translocation Assay puede utilizarse con los siguientes fines: Identificar translocaciónes genéticas BCL1/JH altamente sugestivas de linfoma del manto. Distinguir linfoma de células del manto de otras neoplasias o proliferaciones benignas de células B. Monitorizar y evaluar recurrencias de la enfermedad. 3. Resumen y descripción del ensayo La translocación genética BCL1/JH t(11;14)(q13;q32) está presente principalmente en el linfoma del manto (LCM) (50-70%), pero también suele presentarse en la leucemia prolinfocítica B (LPL-B) (10-20%), en la leucemia de células plasmáticas (LCP), en el linfoma esplénico con linfocitos vellosos (LELV), en la leucemia linfocítica crónica (LLC) (2-5%) y en el mieloma múltiple (MM) (20-25%) 1. La hibridación in situ fluorescente (FISH) con sondas flanqueantes de la región del cluster de puntos de rotura de la translocación BCL1/JH (Bcr) en la banda q13 del cromosoma 11, reveló que todos los linfomas de células del manto (definidos de acuerdo a la clasificacion REAL) tienen la translocación t(11;14)(q13;q32) 2-3. Los puntos de rotura BCL1/JH están dispersos a lo largo de una región de 350 kilobases (kb). Aproximadamente 41% de estos puntos de rotura se agrupan en un locus de solo 1kb de tamaño conocido como la región del Cluster Mayor de Translocación (MTC) BCL1 3. Esta translocación genética aberrante yuxtapone genes de la región de unión (JH) de la cadena pesada de las inmunoglobulinas (IGH) en el cromosoma 14q32 con el gen de la ciclina D1 en el cromosoma 11q13. La yuxtaposición de las secuencias IGH JH resulta en la activación transcripcional de la ciclina D La ciclina D1 está involucrada en la regulación de la progresión de G1 y de la transición G1/S del ciclo celular. La translocación no lleva a la expresión de una proteína de fusión. De hecho, la oncogénesis es debida a un intercambio promotor/potenciador, mientras que el potenciador de los genes de las inmunoglobulinas estimula la expresión de ciclina D1. La sobre-expresión de ciclina D1, en cambio, acelara el pasaje de células transformadas a través de la fase G1. En la clasificación revisada de la OMS la presencia de la translocación t(11;14)(q13;q32)m y/o la sobre-expresión de ciclina D1 fue agregada como una de las características del linfoma del manto. Los puntos de rotura BCL1/JH agrupados en el locus de 1kb BCL1-MTC pueden ser detectados por la metodología de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Sin embargo, debe enfatizarse que los puntos de rotura que ocurren fuera del locus BCL1-MTC no serán identificados por este ensayo en particular. Por lo tanto, un resultado negativo no excluye completamente la presencia de un reordenamiento genético BCL1/JH en la muestra. Los resultados de este ensayo deben ser siempre interpretados en el contexto de datos morfológicos y otros datos relevantes, y no como única herramienta para el diagnóstico de una neoplasia. Este ensayo es sumamente útil cuando se lo confronta con un diagnóstico diferencial dificultoso que incluye al linfoma del manto. Por ejemplo, una proliferación neoplásica de células B en tejido, sangre, o medula ósea que es difícil de categorizar como una leucemia linfocítica crónica/linfoma de linfocitos pequeños, linfoma folicular, linfoma de tejido linfático asociado a mucosas, o linfoma del manto pueden ser fácilmente clasificados como este útlimo si se detecta la translocación genética BCL1/JH. Esto tiene implicancias clínicas importantes, ya que los linfomas del manto son típicamente más agresivos y tienen, en general, un peor pronóstico que otros linfomas de células B de bajo grado. Debido a que esta anormalidad molecular es también un marcador tumoral específico, puede utilizarse para determinar las diferentes etapas en las que puede encontrarse el linfoma y para monitorizar recurrencias luego del tratamiento en un paciente, si su linfoma original fue caracterizado y evidenció tener un reordenamiento BCL1/JH. El ensayo IdentiClone de InVivoScribe Technologies representa una nueva propuesta para la determinación diagnóstica de clonalidad basada en la PCR. Estos ensayos estandarizados fueron rigurosamente optimizados analizando muestras controles positivas y negativas empleando múltiples master mixes (mezclas de reacción). El desarrollo del ensayo fue IdentiClone BCL1/JH Gene Translocation Assay Gel Detection

4 Página 4 de 14 seguido por un extenso proceso de validación que incluía la determinación analítica de más de 400 muestras clínicas clasificadas según la Clasificación Revisada Europea/Americana de Linfomas (REAL). Las determinaciones fueron hechas en más de 30 centros de diagnóstico destacados e independientes diseminados a través de toda Europa en el marco de un estudio de colaboración conocido como la Acción Concertada BIOMED-2. Los resultados del estudio BIOMED-2 se encuentran publicados en Leukemia, una revista especializada líder en el área 6. Los ensayos basados en la detección en geles no son capaces de detectar de manera fiable poblaciones clonales que representen menos del 0.1% de la población total de linfocitos. Debe enfatizarse que los resultados de los ensayos moleculares de clonalidad deben interpretarse siempre en un contexto conjunto de datos clínicos, histológicos e inmunofenotípicos. El presente ensayo incluye 2 mezclas de reacción. La mezcla de reacción del Tubo BCL1/JH (BCL1/JH Tube) hibrida en el cluster mayor de translocación (MTC) del locus BCL1 y en la región de unión del locus de la cadena pesada de las inmunoglobulinas. La otra mezcla de reacción, la mezcla de reacción Specimen Control Size Ladder (control de muestra con marcador de tamaño) hibrida con varios genes amplificando una serie de productos de aproximadamente 100, 200, 300, 400 y 600 pares de bases para asegurar que la calidad y cantidad de ADN inicial es la adecuada para generar un resultado válido. En todos nuestros ensayos de clonalidad se utiliza un único programa de termociclador y metodologías de detección similares con lo que se mejora la consistencia interna y facilita el entrenamiento en una gama amplia de ensayos diferentes. 4. Principios del Procedimiento 4.1. Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) Los ensayos de PCR son utilizados de manera rutinaria para la identificación de translocaciones genéticas. Estos ensayos apuntan a la región MTC de la translocación BCL1/JH y amplifican ADN genómico situado entre los cebadores que hibridan en el gen BCL1 y en las regiones conservadas de unión (JH) del gen IGH (BCL1/JH Tube). Los puntos de rotura que ocurren por fuera del MTC no serán identificados por este ensayo en particular. Por lo tanto, un resultado negativo no excluye completamente la presencia de un reordenamiento genético BCL1/JH en la muestra 6. ADN de una población normal de linfocitos también arrojará un resultado negativo. Figura 1. Representación de un diagrama esquemático de la translocación BCL1/JH t(11;14) mostrando el gen de la ciclina D1 (CCND1) a la izquierda y el gen de la cadena pesada de las inmunoglobulinas (IGH) a la derecha. Las flechas negras indican las posiciones relativas y orientaciones del cebador BCL1/MTC y del cebador JH, que estan incluidos en la mezcla de reaccion del Tubo BCL1/JH Detección en Geles La electroforesis en geles, como la electroforesis en geles de agarosa o en geles de poliacrilamida en condiciones no desnaturalizantes (PAGE), normalmente se utiliza para resolver los amplicones de diferentes tamaños de acuerdo a su tamaño, carga y estructura conformacional. Debido a que el ADN está cargado negativamente, cuando se aplica una diferencia de potencial eléctrico (voltaje) a través del gel que contiene los productos de amplificación por PCR, el campo eléctrico impulsa la migración de los amplicones a través del gel. Los fragmentos de ADN de menor tamaño son capaces de migrar fácilmente a través de la matriz del gel, mientras que los fragmentos de ADN más grandes migran más lentamente. Esto ocasiona la separación de los productos de amplificación de acuerdo a su tamaño. El bromuro de etidio, u otro colorante que se intercale en las hebras del ADN, puede ser luego utilizado para teñir y detectar estos productos en el gel.

5 Página 5 de Reactivos 5.1. Componentes IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay Gel Detection 33 Reacciones IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay MegaKit Gel Detection 330 Reacciones Tabla 1 Reactivo Mezcla de Reacción (Master Mix) Mezcla Control de Amplificación de la Muestra Control Positivo de ADN Control Negativo (Normal) de ADN Número de Catálogo Componentes del reactivo (ingredientes activos) Cantidad Nro. de unidades Nro. de unidades BCL1/JH Tube Unlabeled Oligonucleótidos que hibridan en la región MTC del gen BCL1 y en la región J del gen IGH en solución salina tamponada. Specimen Control Size Ladder Unlabeled Múltiples oligonucleótidos que hibridan en diferentes genes endógenos. IVS-0010 Clonal Control DNA 200 μg/ml de ADN en solución TE 1/ µl 1 5 IVS-0000 Polyclonal Control DNA 200 μg/ml de ADN en solución TE 1/10 Nota: No se ha utilizado conservante alguno en la fabricación de este producto. T de Conservación 1500 µl to -85 C 1500 µl to -85 C 100 µl to 8 C or -65 to -85 C 2 to 8 C or -65 to -85 C 5.2. Precauciones y Advertencias 1. Este producto es para Uso en Diagnóstico In Vitro 2. El kit de ensayo será usado como un conjunto. Ningún reactivo debe sustituirse por otro reactivo similar proveniente de otro fabricante. El realizar diluciones, reducir los volúmenes de las mezclas de amplificación o cualquier otra desviación del protocolo original pueden afectar la eficacia de este ensayo y/o anular cualquier sublicencia limitada que se adquiera con la compra de este ensayo. 3. Los materiales son estables hasta la fecha de caducidad que se indica en la etiqueta cuando son manipulados, conservados y almacenados de acuerdo a las instrucciones. No utilizar los productos una vez sobrepasada la fecha de caducidad 4. El cumplimiento riguroso de las instrucciones de uso y el seguimiento del protocolo asegurará un funcionamiento analítico y reproducibilidad óptimos. Debe asegurarse de que el programa del termociclador usado sea el correcto, ya que el uso de otros programas puede dar lugar a datos erróneos o inexactos, como resultados falsos positivos y falsos negativos. 5. No mezclar o combinar los reactivos procedentes de kits con diferentes números de lote. 6. Se recuerda al personal del laboratorio que deben usar todos los equipos de protección personal adecuados y trabajar de acuerdo a las buenas prácticas de laboratorio y a las recomendaciones universales para el trabajo con muestras biológicas. Las muestras deben ser manipuladas en instalaciones homologadas de contención de seguridad biológica y abiertas solamente en cabinas de seguridad biológica certificadas. Se recomienda el uso de agua destilada de grado biología molecular en la preparación del ADN de la muestra. 7. Debido a la sensibilidad analítica de este ensayo, se debe tener un cuidado extremo para prevenir la contaminación de los reactivos o de las mezclas de amplificación con las muestras, controles o materiales amplificados. Todos los reactivos deben ser cuidadosamente examinados para detectar cualquier signo de contaminación (por ej. Controles negativos que generen señales positivas). Se debe descartar inmediatamente cualquier reactivo con sospecha de contaminación. 8. Para minimizar las posibilidades de contaminación, se deben utilizar guantes limpios cuando se manipulen las muestras y los reactivos. Las áreas de trabajo y las pipetas se deben limpiar de forma rutinaria antes de empezar a realizar cualquier reacción de PCR. 9. El proceso de esterilización en autoclave no elimina la contaminación con ADN. El flujo de trabajo en el laboratorio de PCR debe ir siempre en una sola dirección entre las diferentes áreas de trabajo separadas; comenzando en el área de Preparación de las Mezclas de Reacción; siguiendo en el de la Preparación de la Muestra, pasando a continuación al de la Amplificación, y finalmente al de la Detección. No introducir ADN amplificado en las áreas designadas para la preparación de la muestra o de las mezclas de reacción. 10. Todas las pipetas, puntas y cualquier otro equipamiento utilizado en un área particular debe ser utilizado y mantenido dentro de esa área del laboratorio. IdentiClone BCL1/JH Gene Translocation Assay Gel Detection

6 Página 6 de Con el objetivo de prevenir la contaminación cruzada, y/o con RNasas y DNasas, siempre que sea posible, se debe utilizar material plástico estéril y desechable Almacenamiento y Manipulación Si el producto no es usado de forma inmediata, el kit debe ser almacenado entre -65 C y -85 C. La temperatura de almacenamiento óptima para los controles de ADN es entre 2 C y 8 C, aunque también pueden ser almacenados entre -65 C y -85 C. Todos los reactivos y controles deben ser descongelados y agitados vigorosamente antes de usarse para asegurar que se han resuspendido completamente. La agitación excesiva puede causar roturas en el ADN. Los materiales son estables hasta la fecha de caducidad indicada cuando son manipulados y almacenados de acuerdo a las instrucciones. No deben utilizarse pasada su fecha de caducidad. Debido a su alta concentración salina, las mezclas de reacción de PCR son sensibles a los ciclos de congelado/descongelado. En caso necesario, las mezclas de reacción se deben alicuotar en tubos estériles y herméticos, con tapa de rosca y junta de goma. 6. Instrumentos 6.1. Termociclador Uso ó Función: Amplificación de muestras de ADN Especificaciones y Características de Funcionamiento: Rango Térmico Mínimo: de 15 C a 96 C Velocidad Mínima de la Rampa: 0.8 C/seg Seguir los protocolos de instalación, operación, calibración y mantenimiento del fabricante. Ver la sección 8.4 Amplificación para el programa del termociclador Unidad de Electroforesis Uso ó Función: Separación de fragmentos de ADN Especificaciones y Características de Funcionamiento: Capaz de aplicar una diferencia de potencial desde 35V hasta 135V durante tiempos prolongados Seguir los protocolos de instalación, operación, calibración y mantenimiento del fabricante Unidad de Iluminación UV Uso o Función: Detección de ADN Especificaciones y Características de Funcionamiento: Capaz de emitir luz a una longitud de onda de ~302 nm Seguir los protocolos de instalación, operación, calibración y mantenimiento del fabricante. 7. Recogida y Preparación de la Muestra 7.1. Precauciones Las muestras biológicas humanas pueden contener materiales potencialmente infecciosos. Todas las muestras deben manipularse de acuerdo con las normas estándar OSHA sobre patógenos de transmisión sanguínea o las normas de bioseguridad de nivel Sustancias que Interfieren Se sabe que las siguientes sustancias interfieren en la reacción de PCR: 1. Quelantes de cationes divalentes 2. Puntas de pipetas de retención baja 3. EDTA (no significativo a bajas concentraciones) 4. Heparina 7.3. Requerimientos de la Muestra y su manipulación Este ensayo analiza ADN genómico proveniente de las siguientes fuentes: 1. 5 ml de sangre periférica, biopsia de médula ósea, o aspirado de médula ósea anticoagulado con heparina o EDTA (conservado entre 2 C y 8 C y transportado a temperatura ambiente) 2. Un mínimo de 5mm cuadrados (5mm 3 ) de tejido (conservado y transportado congelado; o conservado y transportado en RPMI 1640 a temperatura ambiente o en hielo) 3. 2μg de ADN genómico (conservado entre 2 C y 8 C y transportado a temperatura ambiente)

7 Página 7 de Muestras o cortes de tejido fijados en formol y embebidos en parafina (conservados y transportados a temperatura ambiente) 7.4. Preparación de la Muestra Extraer el ADN genómico de las muestras de los pacientes tan pronto como sea posible. Resuspender el ADN a una concentración final de 100 μg a 400 μg por ml en TE 1/10 (1 mm Tris-HCl, ph 8.0; 0.1 mm EDTA) o en agua grado biología molecular o grado USP. Este ensayo es un sistema robusto. Un amplio rango de concentraciones de ADN será capaz de generar un resultado válido. Por lo tanto, generalmente no son necesarios la cuantificación y el ajuste de las concentraciones de ADN. El análisis de la muestra problema de ADN con el Specimen Control Size Ladder asegurará que existe ADN en cantidad y calidad suficientes para generar un resultado válido Conservación de la Muestra El ADN genómico debe conservarse entre 2 C y 8 C o entre -65 C y -85 C hasta el momento de su uso. 8. Procedimiento del Ensayo 8.1. Materiales Suministrados en el Kit Tabla 2 Número de Catálogo Descripción BCL1/JH Tube Unlabeled Specimen Control Size Ladder Unlabeled IVS-0010 Clonal Control DNA IVS-0000 Polyclonal Control DNA 8.2. Materiales Requeridos pero No Suministrados en el Kit Tabla 3 Reactivo/Material Reactivos/Materiales y Proveedores Recomendados Notas ADN Polimerasa Agua Bi-Destilada Grado Biología Molecular o Agua Grado USP Pipetas Calibradas Termociclador Applied Biosystems: AmpliTaq Gold DNA Polymerase (Cat# N ) Rainin: Pipetas P-2, P-20, P-200, y P-1000 O pipetas SL-2, SL-20, SL-200, y SL-1000 Bio-Rad: MJ Research PTC-100 o PTC-200, PTC-220, PTC-240 Perkin-Elmer PE 9600 o PE 9700 El agua debe ser estéril y libre de DNasas y RNasas. Deben ser capaces de medir volúmenes exactos entre 1μl y 1000μl. Mezcladores Vortex Placas o tubos para PCR Estériles Puntas de pipetas con Estériles, libres de filtro Pirógenos/RNasas/DNasas Tubos para microcentrífuga Estériles Unidad de Electroforesis en Geles Para geles de poliacrilamida Agarosa Cambrex: MetaPhor Agarose (Cat# 50180) NuSieve 3:1 Agarose (Cat# 50090) Bromuro de Etidio Invitrogen: UltraPure 10 mg/ml Ethidium Bromide (Cat# ) Buffer de Corrida TBE Invitrogen: Novex TBE Running Buffer (5X) (Cat# LC6675) Diluir 1:5 antes de usar IdentiClone BCL1/JH Gene Translocation Assay Gel Detection

8 Página 8 de 14 Reactivo/Material Reactivos/Materiales y Proveedores Recomendados Notas Buffer de Siembra en el Gel Marcadores de tamaño de ADN 100 bp InVivoScribe Technologies: 6X Loading Buffer (No Dyes) (Cat# ) 6X Loading Dye I (Light Dyes) (Cat# ) 6X Loading Dye II (Very Light Dyes) (Cat# ) Invitrogen: 10X BlueJuice Gel Loading Buffer (Cat# ) Novex Hi-Density TBE Sample Buffer (5X) (Cat# LC6678) Invitrogen: TrackIt 100 bp DNA Ladder (Cat# ) 8.3. Preparación de los Reactivos Todas las muestras desconocidas deben ser analizadas usando la mezcla de reacción del Specimen Control Size Ladder. Esto se hace para asegurar que no están presentes inhibidores de la amplificación y que hay ADN en cantidad y calidad suficientes para generar un resultado válido. Los resultados generados con un análisis único son válidos; no obstante, se recomienda realizar el análisis de cada muestra por duplicado siempre que sea posible. Si el análisis por duplicado genera resultados inconsistentes, es necesario volver a ensayar o analizar la muestra. Los controles positivo, negativo y blanco deben ser analizados para cada una de las mezclas de reacción. 1. Usando guantes, sacar las mezclas de reacción de reacción del congelador. Dejar que los tubos se descongelen completamente y entonces mezclar suavemente. 2. En una cabina de contención tomar una alícuota suficiente de cada mezcla de reacción y transferirla a tubos de microcentrífuga individuales, limpios y estériles. Los volúmenes de las alícuotas deben ser de 45μl para cada reacción. Se recomienda añadir una reacción extra por cada 15 reacciones, para compensar los errores de pipeteo. De esta manera, para cada mezcla de reacción (excepto para el Specimen Control Size Ladder), el número de reacciones (n) debe ser: n = 2 # de muestras (correr cada muestra por duplicado) + 1 control positivo de ADN (Ver sección 8.7 Controles Positivos Recomendados) + 1 control negativo de ADN (IVS-0000 Polyclonal Control DNA) + 1 control sin templado o blanco (agua) + 1 para compensar los errores de pipeteo n = 2 # de muestras + 4 Total Por lo tanto el volumen total de alícuota para cada mezcla de reacción debería ser n 45μl. Para la mezcla de reacción del Specimen Control Size Ladder, el número de reacciones (m) debería ser: m = # de muestras (correr cada muestra por duplicado) + 1 control negativo de ADN (IVS-0000 Polyclonal Control DNA) + 1 control sin templado o blanco (agua) + 1 para compensar los errores de pipeteo m = # de muestras + 3 Total Por lo tanto el volumen total de alícuota para la mezcla de reacción del Specimen Control Size Ladder debería ser m 45μl. 3. Añadir 1.25 unidades (o 0.25μl a 5 unidades/μl) de ADN polimerasa AmpliTaq Gold por reacción a cada mezcla de reacción. El total de polimerasa AmpliTaq Gold que es necesaria añadir a cada mezcla maestra de reacción deberá ser n 0.25μl, y m 0.25μl para la mezcla de reacción del Specimen Control Size Ladder. Mezclar suavemente con vortex. 4. Para cada reacción, alicuotar 45μl de la respectiva mezcla de reacción + ADN polimerasa en cada pocillo de una placa de PCR o tubo. 5. Añadir 5μl de la muestra correspondiente (muestra problema de ADN, control positivo de ADN, control negativo de ADN, o agua) en cada pocillo que contenga las respectivas mezclas de reacción. Mezclar suavemente con la pipeta varias veces. 6. Tapar los tubos o cubrir la placa de PCR. 7. Las muestras están ahora listas para ser amplificadas en un termociclador.

9 Página 9 de 14 Si la amplificación no puede realizarse inmediatamente después de la preparación de los reactivos, la placa de PCR o los tubos pueden ser conservados entre 2 C y 8 C por un período de hasta 24 horas. Guía Rápida: Para cada mezcla de reacción de reacción y n reacciones, mezclar: n 45μl Mezcla de Reacción n 0.25μl ADN polimerasa AmpliTaq Gold Vorterear suavemente para mezclar. Alicuotar 45μl de mezcla de reacción + solución de ADN polimerasa en cada reservorio de reacción. Agregar 5μl del respectivo Templado a cada reservorio. Volumen total de reacción = 50μl 8.4. Amplificación 1. Amplificar las muestras usando el siguiente programa de PCR: (Nota: Se recomienda usar la opción calculada para la medición de la temperatura con los termocicladores PTC BioRad MJ Research.) Programa Estándar para AmpliTaq Gold Paso 1: 95 C por 7 minutos Paso 2: 95 C por 45 segundos Paso 3: 60 C por 45 segundos Paso 4: 72 C por 90 segundos Paso 5: Ir a paso 2; repetir 34 veces Paso 6: 72 C por 10 minutos Paso 7: 15 C por tiempo indefinido 2. Retirar los tubos o la placa de amplificación del termociclador. Aunque el ADN amplificado es estable a temperatura ambiente durante largos períodos de tiempo, los productos de PCR deben almacenarse entre 2 C y 8 C hasta la detección. La detección debe realizarse dentro de los 30 días posteriores a la amplificación Detección en Geles Geles de Agarosa TBE 1. Preparar un gel de agarosa MetaPhor o NuSieve 3:1 al 2% en solución tampón TBE 1X. 2. Colocar el gel en la unidad de electroforesis y cubrirlo con solución tampón TBE. 3. Mezclar 20μl de cada producto de PCR con 4μl de buffer de siembra 6X. 4. Sembrar todos estos 20μl de la mezcla en cada reservorio individual del gel y sembrar 4μl de Marcadores de tamaño de ADN 100 bp flanqueando las muestras. 5. Correr el gel a 100V durante 90 minutos. El voltaje y el tiempo de corrida dependen del tamaño del amplicón de PCR, de la longitud del gel y del porcentaje de agarosa en el gel. El voltaje y el tiempo de corrida pueden ser adaptados de acuerdo a estos últimos. 6. Teñir los geles con Bromuro de Etidio u otro colorante equivalente. 7. Colocar el gel sobre la unidad de ilumincación UV para visualizar las bandas. 8. Fotografiar e interpretar los resultados. (Ver secciones 9 Interpretación de los Resultados y 11 Valores Esperados debajo.) 8.6. Control de Calidad En el kit se suministran controles positivos y negativos (o normales) y deben ser analizados cada vez que se desarrolla el ensayo para asegurar el desarrollo apropiado del mismo. Adicionalmente, se debe incluir un control sin ADN (por ej. agua) para controlar la posible contaminación de la mezcla de reacción o la contaminación cruzada de las reacciones de PCR debidas al empleo de técnicas asépticas inadecuadas. También se debe incluir un control de la solución tampón para asegurar que el tampón utilizado para resuspender las muestras no ha sido contaminado. Los valores de los controles positivos se encuentran en la sección 11.1 Tamaño Esperado de los Productos Amplificados. Controles adicionales y controles de sensibilidad (diluciones de los controles positivos en el control negativo) se encuentran disponibles en InVivoScribe Technologies. IdentiClone BCL1/JH Gene Translocation Assay Gel Detection

10 Página 10 de Controles Positivos Recomendados Los tamaños de los productos amplificados mostrados en la tabla se obtuvieron usando una plataforma ABI 3100 o por electroforesis en geles. Tabla 4 Mezcla de reacción BCL1/JH Tube Secuencia Blanco MTC de BCL1/JH Genes Múltiples ADN Control Número de Catálogo Tamaño del Producto en pares de bases a 202, ~600 b 100, 200, 300, 400, 600 c 100, 200, 300, 400, 600 c Rango de Tamaños Válido IVS-0010 Clonal Control DNA Specimen Control Rango de Tamaños Válido Size Ladder IVS-0000 Polyclonal Control DNA Nota a : En condiciones sub-óptimas una banda débil inespecífica de ~550bp puede ser detectada. Para discriminar entre específica e inespecífica, el control negativo de ADN no debe mostrar esta banda. Si una banda está presenten en el control negativo, entonces es inespecífica. Nota b : La banda de ~600bp es un producto inespecífico. Nota c : Debido a que los fragmentos de PCR de menor tamaño son preferencialmente amplificados, no es inusual que el fragmento de 600pb presente una señal disminuida o que se pierda completamente. 9. Interpretación de los Resultados Aunque un resultado positivo es altamente sugestivo de un proceso neoplásico, tanto los resultados positivos como los negativos deben interpretarse en un contexto global con toda la información clínica y los resultados de los ensayos del laboratorio. El rango de tamaños para cada una de las mezclas de reacción ha sido determinado analizando muestras control positivas y negativas. Para una interpretación exacta y significativa es importante tener en cuenta que se deben ignorar las bandas que aparezcan fuera del rango de tamaños válido para cada una de las mezclas de reacción Análisis 1. Muestras que no amplifican después de ser ensayadas repetidamente deber ser informadas como No se puede informar un resultado de esta muestra debido a que no se obtiene ADN en cantidad o calidad suficiente para su análisis. 2. Muestras que generan un resultado negativo deben ser repetidas si el control positivo de la reacción no amplificó. 3. Si las muestras analizadas por duplicado generan resultados diferentes, el ensayo debe ser repetido o vuelto a evaluar para aclarar un posible cambio de muestras. 4. Todos los controles del ensayo deben ser examinados previamente a la interpretación de los resultados de la muestra problema. Si los controles no generan los resultados correctos, el ensayo no es válido y las muestras no deben ser interpretadas. La siguiente tabla describe el análisis de cada uno de los controles y las acciones a seguir basándose en los resultados obtenidos. Tabla 5 Tipo de Control Resultado Esperado Resultado Aberrante Control Sin Templado No presenta amplificación, continuar con el análisis. Amplificación presente, repetir el ensayo. Control Policlonal Control Positivo (Este también puede ser un control de extracción si se añade un material control positivo a través de los procesos de extracción) El tamaño del producto es consistente con el tamaño esperado de acuerdo a la lista de la sección 11.1 Tamaño Esperado de los Productos Amplificados. No hay reordenamientos clonales presentes. Continuar con el análisis. El tamaño del producto es consistente con el tamaño esperado de acuerdo a la lista de la sección 11.1 Tamaño Esperado de los Productos Amplificados. Continuar con el análisis. Presenta reordenamientos clonales, repetir el ensayo. Repetir el ensayo.

11 Tipo de Control Resultado Esperado Resultado Aberrante Specimen Control Size Ladder (Este control de amplificación es esencial para muestras de calidad y cantidad desconocida.) Si todas las bandas de 100, 200, 300, 400, y 600pb están presentes, continuar con el análisis. Debido a que los fragmentos de PCR de menor tamaño son preferencialmente amplificados, es normal que el fragmento de 600pb presente una señal disminuida o que se la pierda completamente. Continuar con el análisis. Página 11 de 14 Si no se observan bandas, repetir el ensayo a menos que la muestra resulte positiva. Si sólo se observan 1, 2, o 3 bandas, re-evaluar la muestra para determinar una posible degradación del ADN a menos que la muestra resulte positiva Interpretación de la Muestra Problema Cuando los controles generan los resultados esperados, las muestras clínicas deben ser interpretadas como se detalla a continuación: Una o dos bandas positivas prominentes a dentro del rango de tamaños válido se informa como: Positivo para la detección de una translocación BCL1/JH t(11;14) consistente con la presencia de una población célular clonal. En un contexto global de criterios diagnósticos, las poblaciones célulares clonales pueden indicar la presencia de una neoplasia hematológica. La ausencia de bandas positivas a dentro del rango de tamaños válido se informa como: Negativo para la detección de una translocación BCL1/JH t(11;14). Nota a : Los criterios para definir una banda positiva son los siguientes: Los productos generados de muestras que caen dentro del rango de tamaños válido y presentan bandas discretas y definidas son consistentes con una banda positiva. 10. Limitaciones del Ensayo Este ensayo no identifica el 100% de las poblaciones célulares clonales. Este ensayo no puede detectar de manera fiable una cantidad menor de 1 célula positiva por cada 1000 células normales. Los resultados de las pruebas moleculares de clonalidad siempre deben ser interpretados en el contexto global de datos clínicos, histológicos e inmunofenotípicos. Los ensayos basados en la técnica de PCR están sujetos a interferencia por la degradación del ADN o por la inhibición de la PCR debida a EDTA, heparina y otros agentes. 11. Valores Esperados Tamaño Esperado de los Productos Amplificados Los tamaños de los productos amplificados mostrados en la tabla se obtuvieron usando una plataforma ABI 3100 o por electroforesis en geles. Tabla 6 Mezcla de Reacción BCL1/JH Tube Secuencia Blanco MTC de BCL1/JH Genes Múltiples ADN Control Número de Catálogo Tamaño del Producto en Pares de Bases a 202, ~600 b 100, 200, 300, 400, 600 c 100, 200, 300, 400, 600 c Rango de Tamaños Válido IVS-0010 Clonal Control DNA Specimen Control Rango de Tamaños Válido Size Ladder IVS-0000 Polyclonal Control DNA Nota a : En condiciones sub-óptimas una banda débil inespecífica de ~550bp puede ser detectada. Para discriminar entre específica e inespecífica, el control negativo de ADN no debe mostrar esta banda. Si una banda está presenten en el control negativo, entonces es inespecífica. Nota b : La banda de ~600bp es un producto inespecífico. Nota c : Debido a que los fragmentos de PCR de menor tamaño son preferencialmente amplificados, no es inusual que el fragmento de 600pb presente una señal disminuida o que se pierda completamente. IdentiClone BCL1/JH Gene Translocation Assay Gel Detection

12 Página 12 de Resultados de la Muestra Los resultados que se muestran a continuación fueron generados utilizando las mezclas de reacción indicadas. Los productos amplificados fueron corridos en un gel de agarosa al 2%. Para la mezcla de reacción BCL1/JH: El carril 1 muestra los datos generados al ensayar el control recomendado de ADN 100% clonal. El carril 2 muestra los datos generados al ensayar una dilución al 10% del control recomendado de ADN clonal. El carril 3 muestra los datos generados al ensayar una dilución al 1% del control recomendado de ADN clonal. El carril 4 muestra los datos generados al ensayar una dilución al 0.1% del control recomendado de ADN clonal. El carril 5 muestra los datos generados al ensayar el control de ADN policlonal, IVS-0000 Polyclonal Control DNA. Figura 2 Para la mezcla de reacción del Specimen Control Size Ladder: El carril 1 muestra un marcador de tamaños de ADN de 100pb. El carril 2 muestra un marcador de tamaños de ADN de 50pb. Los carriles 3 y 4 muestran los datos generados al ensayar dos muestras diferentes de ADN genómico. Figura 3

13 Página 13 de Características Analíticas Estudios iniciales de 5 muestras positivas y 2 negativas mostraron una concordancia de un 100% con un ensayo casero de PCR. Un estudio mas grande, conducido en tres laboratorios, determinó a 25 casos como postivos y a 18 casos como negativos para la translocación BCL1/JH utilizando ensayos caseros. Para las muestras negativas, la concordancia fue de un 100% utilizando ambos formatos, detección en geles y detección de fluorescencia. Para las muestras positivas, la concordancia fue de un 100% (25 de 25 muestras) utilizando detección de fluorescencia, y de un 88% (22 de 25 casos) utilizando detección en geles. La especificidad para ambos formatos fue de un 100% y la sensibilidad fue determinada como de entre 10-3 y Nosotros concluímos que la sensibilidad del IdentiClone BCL1/JH Translocation Assay es de entre 1 célula positiva en 10 3 células normales y 1 célula positiva en 10 4 células normales y es suficientemente alta para la detección de los puntos de rotura BCL1/JH en material al diagnóstico. No obstante, solamente el 40-50% de los puntos de rotura t(11;14) en el linfoma del manto (LCM) serán detectados utilizando solamente técnicas de PCR. 13. Bibliografía 1. Huret, JL. t(11;14)(q13;q32). Atlas Genet. Cytogenet. Oncol. Haematol. May Coignet, LJA et al. Detection of 11q13 rearrangements in hematologic neoplasias by double color Fluorescence In Situ Hybridization. Blood 1996, 87: Vaandrager, J et al. Direct visualization of dispersed 11q13 chromosomal translocations in mantle cell lymphoma by multicolor DNA fiber fluorescence in situ hybridization. Blood 1996, 88: De Boer, CJ et al. Cyclin D1 messenger RNA overexpression as a marker for mantle cell lymphoma. Oncogene 1995, 10: De Boer, CJ et al. Cyclin D1 protein overexpression as a marker for mantle cell lymphoma. Blood 1995, 86: Van Dongen, JJM et al. Design and standardization of PCR primers and protocols for detection of clonal immunoglobulin and T-cell receptor gene recombinations in suspect lymphoproliferations: Report of the BIOMED-2 Concerted Action BMH4-CT Leukemia 2003, 17(12): Servicio Técnico y al Cliente Fabricante Representante Autorizado y Asistencia Técnica en la UE InVivoScribe Technologies, Inc. InVivoScribe Technologies, SARL 6330 Nancy Ridge Drive, Suite 106 Le Forum Bât B San Diego, California Avenue de la Tramontane USA ZI Athelia IV La Ciotat, France Teléfono: Teléfono: +33 (0) Fax: Fax: +33 (0) Servicio Técnico: support@invivoscribe.com Servicio Técnico: support@invivoscribe.com Servicio al cliente: sales@invivoscribe.com Servicio al Cliente: sales-eu@invivoscribe.com Sitio Web: Sitio Web: Horario de atención: 7:00AM 5:00PM PST/PDT Horario de atención: 9:00AM 5:00PM CET/CEST Los representantes técnicos y de atención al cliente están disponibles de lunes a viernes para responder a todas sus preguntas, mediante consultas telefónicas, por correo electrónico o en la web. IdentiClone BCL1/JH Gene Translocation Assay Gel Detection

14 Página 14 de Aspectos Legales Este es un producto de diagnóstico in vitro. La metodología empleada está protegida por las patentes número 5,296,351 y 5,418,134 de los Estados Unidos de América; por la patente número 626,601 de Australia y por la patente número 2,781,438 de Japón, todas las cuales están bajo licencia exclusiva de InVivoScribe Technologies ( IVS ). Esta metodología también requiere métodos de amplificación de ácidos nucleicos como la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR). En determinados países, esta tecnología está o puede estar cubierta por derechos bajo patente de Hoffmann-LaRoche, Inc. y de F. Hoffmann-LaRoche Ltd. Ninguna licencia para el uso de la metodología de PCR cubierta por alguna de estas últimas patentes es otorgada al comprador, expresamente o por implicación, por la simple compra de estos productos. Como lo es para cualquier uso dentro de los Estados Unidos de América, Australia y Japón (incluyendo el envío de resultados a estos países): La adquisición de este producto incluye una sublicencia limitada para la práctica no comercial y sin fines de lucro de esta tecnología si, y solo si, el comprador está registrado en IVS exclusivamente como un usuario de productos IVS sin fines de lucro. Ninguna licencia para tal uso es otorgada por la simple compra de estos productos. Para solicitar un formulario de registro de usuario exclusivo de productos sin fines de lucro, para discutir los términos de una potencial sublicencia para realizar una práctica más amplia de estos métodos, o por otras inquietudes, por favor contacte con IVS mediante correo electrónico a: legal@invivoscribe.com, o por teléfono al número IdentiClone es una marca registrada de InVivoScribe Technologies. P/N Revisión B 2009/05